13 juni 2020
Hier methoden worden gepresenteerd om te begrijpen anti-kanker effecten van Lactobacillus celvrije supernatant (LCFS). Colorectale kankercellijnen tonen celsterfte bij behandeling met LCFS in 3D-culturen. Het proces van het genereren van sferoïden kan worden geoptimaliseerd, afhankelijk van de steiger en de gepresenteerde analysemethoden zijn nuttig voor het evalueren van de betrokken signaleringsroutes.
Dit protocol is geoptimaliseerd om het onderzoek naar het antikankereffect van de cell-free supernatant van Lactobacillus bij meerdere typen colonkankercelsferoïden gemakkelijker te maken. Deze techniek is de eerste benadering die de antikankereffecten van LCFS op colonkankersferoïden onder in vivo-imitatieomgevingen onderzoekt. Begin door een autoclaaf gesteriliseerde MRS-agarplaat in een 37 graden Celsius waterstofanaerobe kamer met 20 delen per miljoen zuurstof te plaatsen en de plaat te inoculeren met vers ontdooid Lactobacillus-bacteriestok.
Voeg twee tot drie milliliter MRS-bouillon, aangevuld met l-cysteïne, toe aan de buis en sluit de buis af met de butylrubber stop en buiskoppeling. Gebruik vervolgens een loop om een enkele kolonie te verzamelen en plaats de kolonie in een 1,5 milliliter kweekbuis met 500 microliter PBS. Resuspendeer de kolonie homogeen in de zoutoplossing en laad de volledige bacteriesuspensie in een een milliliter spuit.
Steek de naald in het midden van het deksel van de kweekbuis en breng de kolonie in het medium. Plaats de kweek in een schudende incubator bij 37 graden Celsius, 5% koolstofdioxide en 200 omwentelingen per minuut. Na twee dagen meet u de OD620 van de kweek op een spectrofotometer.
Wanneer de OD620 gelijk is aan twee, sedimenteer de bacteriën door centrifugatie en was de bacteriepellet met PBS. Na de tweede centrifugatie, resuspendeer de bacteriën in vier milliliter RPMI 1640, aangevuld met 10% foetaal bovien serum zonder antibiotica en plaats de bacteriën in de schudde incubatie voor vier uur bij 100 omwentelingen per minuut. Aan het einde van de incubatie, pellet de bacteriën door centrifugatie en steriel filter de teruggewonnen supernatant door een 0,22 micron zeef voor opslag bij min 80 graden Celsius.
Om colorectale kankercellijnen voor sferoïdvorming voor te bereiden, kweek de cellen van belang als monolagen in 100 millimeter petrischalen in de celkweekincubator. Wanneer de cellen een 70 tot 80% confluentie bereiken, was de culturen twee keer met vier milliliter PBS per wasbeurt voordat u de cellen losmaakt met één milliliter 0,25% trypsin-EDTA per schaal. Controleer na twee minuten de dissociatie onder een lichtmicroscoop.
Als de cellen los zijn, neutraliseer de enzymatische reactie met vijf milliliter groeimedium. Verzamel de cellen door centrifugatie in één 15 milliliter conische buis per celkweek en resuspendeer de pellets voorzichtig met drie milliliter groeimedium per buis. Tel vervolgens het aantal levensvatbare cellen door trypaanblauw exclusie.
Na het tellen, verdun de cellen tot een concentratie van één tot twee keer 10 tot de vijfde cellen per milliliter in vers medium en voeg methylcellulose toe aan de cellen tot een uiteindelijke concentratie van 0,6%. Breng de cellen over naar een steriele reservoir en gebruik een multikanaals pipet om 200 microliter cellen in elke put van een ultra laag aanhechting 96-puts ronde bodem microplaat te doseren. Plaats vervolgens de plaat in de celkweekincubator gedurende 24 tot 36 uur voordat u controleert op de vorming van sferoïd door lichtmicroscopie.
Voor LCFS-behandeling, verdun de bereide ontdooid LCFS-stokoplossing serieel in vers groeimedium tot 25, 12,5 en 6% concentraties en gebruik een 200 microliter pipet om voorzichtig zoveel mogelijk supernatant uit elke put van de geplaatste colorectale kankercellijncultuur te verwijderen. Voeg vervolgens voorzichtig 200 microliter LCFS aangevuld groeimedium in drievoud toe aan elke set kankercellen en plaats de plaat terug in de incubatie voor een extra 24 tot 48 uur. Een methylcelluloseconcentratie van 0,6% transformeert de geteste kankercellijncellen in compacte sferoïd, wat aangeeft dat sferoïd kunnen worden gegenereerd uit verschillende typen colorectale kanker met behulp van dit protocol.
Sferoïd die gekweekt zijn met 25% LCFS vertonen verstoorde oppervlakken en een verminderde celviabiliteit op een dosisafhankelijke manier. Inderdaad, LCFS co-gekweekte cellen vertonen hogere niveaus van propidiumjodide expressie in vergelijking met levensvatbare controlecellen. Reverse transcriptase PCR-analyse, Western blotting en flow cytometrische annexine V/7-AAD-analyse kunnen ook worden uitgevoerd om de effecten van LCFS op kankercel apoptose te beoordelen.
Zorg ervoor dat u de sferoïd voorzichtig behandelt bij het verwijderen van het groeimedium, omdat de sferoïd gemakkelijk kunnen breken, waardoor het onmogelijk wordt om het effect van LCFS-behandeling waar te nemen. Na deze procedure kunnen celviabiliteitsassays, kwantitatieve real-time PCR, Western blotting en FACS-analyse worden uitgevoerd om het antikankereffect van LCFS in meer detail te karakteriseren.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een protocol voor het onderzoeken van de antikankereffecten van celvrij supernatant van Lactobacillus (LCFS) op colonkankersferoïden. De studie optimaliseert de generatie van sferoïden en evalueert de signaleringspaden die betrokken zijn bij celdood.
Dit protocol stelt biopharma R&D-teams in staat om probiotica-afgeleide supernatanten te evalueren op antikankeractiviteit in fysiologisch relevante 3D-colorectale kankermodellen. Door Lactobacillus fermentum celvrij supernatant (LCFS) te gebruiken in stabiele sferoïdeculturen, ondersteunt deze methode de mechanistische risicoreductie van natuurproductkandidaten en verbetert het het voorspellend vertrouwen bij inspanningen voor targetvalidatie. De aanpak slaat een brug tussen screening in de ontdekkingsfase en translationele relevantie door interacties in de darmmicro-omgeving te modelleren die de levensvatbaarheid van kankercellen beïnvloeden.
De methode wordt geïntegreerd in vroege discovery-workflows na de target-identificatie en voorafgaand aan de lead-optimalisatie, waardoor een ziekterelevant systeem ontstaat voor het evalueren van bioactieve supernatanten uit microbiële bronnen.