4 juni 2020
Hier presenteren we een protocol voor in vitro isolatie van meerdere gliacelpopulaties van een muis CNS. Deze methode maakt de segregatie van regionale microglia, oligodendrocytenvoorlopercellen en astrocyten mogelijk om de fenotypen van elk in verschillende cultuursystemen te bestuderen.
Dit protocol is belangrijk omdat we leren dat gliacellen regionaal heterogeen zijn, morfologisch, functioneel en genetisch. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat je drie afzonderlijke gliacellensubsets van vier verschillende regio's van het centrale zenuwstelsel kunt bestuderen. Ik zal deze procedure demonstreren samen met Rachel Tinky, een afgestudeerde student in mijn lab.
Gebruik een fijne schaar om de cutane laag langs de middenlijn van het kopje van de pup te snijden, beginnend vanuit de staart en naar voren bewegend tot je de snuit bereikt. Vermijd diep in de schedel te snijden om weefselbeschadiging te voorkomen. Door de kop naar beneden te kantelen, trekt u de cutane laag naar elke kant van de schedel en gebruikt u een veerschaartje om een incisie langs de schedelmiddenlijn te maken, beginnend bij het foramen magnum.
Trek de schedelhelften uit elkaar met een fijne pincet en leg de cortex, het cerebellum en de hersenstam bloot. Eenmaal blootgelegd, tilt u de hersenen voorzichtig uit de schedel en plaatst u ze in een 10 centimeter petrischaal met 10 milliliter PBS en een antibioticaoplossing. Zorg ervoor dat de hersenen onbeschadigd blijven met de achterhersenen erop geplaatst.
Kneip het cerebellum af met een fijne, gebogen pincet. Plaats het in een aangewezen 15 milliliter conische buis op ijs. Scheid de middenhersenen van de cortex.
Verwijder de corticale hersenvliezen en plaats ze in een aangewezen conische buis. Het weefsel moet zorgvuldig worden onderzocht om ervoor te zorgen dat de hersenvliezen volledig zijn verwijderd. Als er hersenvliezencellen in de cultuur achterblijven, kunnen ze schadelijk zijn voor de groei van gliacellen.
Om het ruggenmerg te dissekeren, plaatst u het met de buikzijde naar boven en gebruikt u een fijne veerschaartje om de wervels te snijden, wisselend tussen de linker- en rechterkant totdat het ruggenmergweefsel is blootgelegd. Verwijder voorzichtig het ruggenmerg en de hersenvliezen en plaats ze in de aangewezen conische buis op ijs. Voeg één milliliter 0,05% trypsine met 0,53 millimolar EDTA toe aan elke buis met weefsel.
Tritureer het mengsel met een 10 milliliter pipette ongeveer 20 keer. Breng vervolgens de celsuspensie over naar een lege 50 milliliter conische buis. Incubeer de oplossing gedurende 15 minuten bij 37 graden Celsius en 5% koolstofdioxide.
Schud de lysaten voorzichtig na acht minuten. Na de incubatie, voegt u vijf milliliter MGM en 200 microliter DNase I toe aan elke buis voor een uiteindelijke concentratie van 50 microgram per milliliter. Tritureer elke lysate 10 keer met een 10 milliliter pipette.
Laat vervolgens de celsuspensie drie minuten op kamertemperatuur staan om niet-gedissocieerd weefsel zich op de bodem van de buis te laten bezinken. Breng de celsuspensies over naar nieuwe 50 milliliter conische buizen en laat het niet-gedissocieerde weefsel achter. Na centrifugatie, resuspendeer de celpellet in vijf milliliter MGM en tritureer deze 20 keer. Plaats de celsuspensies op gecoate T25 kolven en incubeer de cellen bij 37 graden Celsius en 5% koolstofdioxide.
Ververs het medium na 24 uur om celdebris te verwijderen. Om oligodendrocytvoorlopercellen te isoleren, schudt u de cellen gedurende 15 uur, verwijdert u vervolgens het supernatant uit de kolf en plaatst u het op een steriele petrischaal. Incubeer het supernatant gedurende 30 minuten bij 37 graden Celsius en 5% koolstofdioxide.
Zwiep na 15 minuten om resterende microglia te verwijderen. Verwijder niet-adhesief celsupernatant, tel de cellen en plaats ze op een Poly-D-Lysine gecoate oppervlakte op de gewenste concentratie. Breng de cellen terug naar de incubator gedurende minimaal één uur.
Aspireer vervolgens voorzichtig 95% van het medium en voeg langzaam warm OPC-medium toe, waarbij u het tegen de zijkant van de put pipet om verstoring van OPC's te minimaliseren. Deze methode werd gebruikt om aan te tonen dat interferon gamma-signalering de differentiatie en rijping van OPC's beïnvloedt. Zonder de interferon gamma-receptor ondergaan corticale OPC's geen differentiatie naar volwassen myeliniserende oligodendrocyten, wat blijkt uit de afwezigheid van MBP-kleuring.
De expressie van GFAP werd ook geanalyseerd. Interferon gamma-deficiënte cellen drukken GFAP sterk tot expressie, wat suggereert dat ze mogelijk een astrocytic fenotype aannemen. Regionale heterogeniteit in CNS-cellen wordt aangetoond door variërende astrocytenmorfologie in de cortex, cerebellum, hersenstam en ruggenmerg.
Astrocyten uit hetzelfde gebied kunnen ook morfologische heterogeniteit vertonen, wat het idee ondersteunt dat dit gliacellensubtype zeer dynamisch is. Regionale reacties van OPC's op differentiële cytokine-stimulatie werden ook onderzocht. Cytokine-signalering heeft significante invloed op het gedrag van stamcellen en immuuncellen en kan van invloed zijn op hoe de OPC's differentiëren tot volwassen myeliniserende oligodendrocyten.
Na isolatie van regionale gliacellen kunnen cellen worden gebruikt in verschillende experimentele omstandigheden en zuur met behulp van verschillende technieken, waaronder immunohistochemie, kwantitatieve real-time PCR en Western blotting.
Deze studie presenteert een protocol voor de in vitro isolatie van meerdere gliale celpopulaties uit het centrale zenuwstelsel (CZS) van de muis, waaronder regionale microglia, oligodendrocytaire precursorcellen en astrocyten. De methodologie maakt het mogelijk om de verschillende fenotypes van elk gliaal celtype te bestuderen onder diverse culturesystemen, waarbij hun regionale heterogeniteit wordt benadrukt.
Regionale heterogeniteit van gliale cellen heeft invloed op de validatie van targets en het mechanistisch beperken van risico's bij het ontdekken van geneesmiddelen voor het centraal zenuwstelsel (CZS). Dit protocol maakt de isolatie mogelijk van microglia, oligodendrogene progenitorcellen en astrocyten uit vier muizenregio's van het CZS ter ondersteuning van fenotypische screening en assayontwikkeling. Door ziekterelevante systemen met een gedefinieerde cellulaire samenstelling te bieden, wordt het voorspellend vertrouwen in preklinische modellen verbeterd en worden strategieën voor de identificatie van lead-verbindingen onderbouwd.
De methode kan worden geïntegreerd in vroege discovery-workflows door gevalideerde gliale populaties te leveren voor target-validatie, assay-ontwikkeling en mechanistische risicoanalyse voorafgaand aan de identificatie van lead-verbindingen.