20 juni 2020
We presenteren een ECG-protocol dat technisch eenvoudig, goedkoop, snel en betaalbaar is in kleine muizen en kan worden uitgevoerd met verbeterde gevoeligheid. We stellen deze methode voor als een screeningsbenadering voor het bestuderen van farmacologische agentia, genetische modificaties en ziektemodellen bij muizen.
Het belang van ons protocol is dat de elektrocardiogrammeting met grote gevoeligheid kan worden uitgevoerd in een kleine muis die genetisch of farmacologisch gemanipuleerd is. Het protocol is voordelig omdat het eenvoudig, snel, goedkoop en gevoelig is. Bovendien kan het worden uitgevoerd op kleine muizen, zelfs neonaten.
Wij zijn van mening dat deze methode zou bijdragen aan het begrip van onontgonnen gebieden van aritmie in het cardiovasculaire gebied. Demonstreren van de procedure zal Tae Woong Ha uit mijn laboratorium. Begin met het openen van de analysesoftware en het opzetten ervan voor ECG-gegevensverwerving.
Ga naar Instellingen instellen en kanaalinstellingen en stel de voorbeeldsnelheid in op 2.000 samples per seconde. Stel het bereik in op 20 millivolt en de ingangsversterker op 200 Hertz low pass. Ga vervolgens naar ECG-analyse- en ECG-instellingen en kies vervolgens Muis in de voorinstelling van detectie- en analyse-instellingen.
Kies er in het middelingspaneel voor om en opeenvolgende hartcycli te concatenateeren in één gemiddeld signaal of gemiddelde weergave en een tabelweergave. Selecteer in het QTc-paneel de Bazett-methode, die wordt gedefinieerd als de hartslaggecorrigeerde waarde van het QT-interval. Plaats de muis op de precisieschaal en noteren het gewicht.
Na ervoor te zorgen dat de muis goed is verdoofd insert elektroden met acupunctuur naalden in de rechter en linker voorpoten en de linker achterpoot. Zorg ervoor dat de diepte en de positie van de elektrode consistent zijn tijdens de experimenten. Sluit de andere uiteinden van de elektroden door ze te klikken in de drie snap connectoren aan de andere kant van de looddraden van de drie lood bio versterker kabel en injecteren drugs ongeveer drie minuten na de verdoving.
10 minuten na het toedienen van verdoving, beginnen met het opnemen van de ECG. Zodra de opname is voltooid, gebruik maken van de ECG-gegevens van 12 tot 17 minuten na injectie van verdoving voor analyse. Verwijder de elektroden wanneer u klaar bent.
Om te bepalen of deze niet-invasieve ECG-meting de invloed van autonome modulatie op het hartgeleidingssysteem weerspiegelt, werden normale BALB/c-muizen uitgedaagd met agonisten en antagonisten van het autonome zenuwstelsel. Vergeleken met voertuigcontrole nam de hartslag aanzienlijk toe bij atropine en isoprenaline behandelde muizen en viel met carbachol. Bovendien steeg het QTc-interval in atropine en isoprenaline behandelde muizen en daalde in met carbachol behandelde muizen.
Representatieve grafiekweergaven en gemiddelde weergaven van de ECG-signalen in atropine, carbachol en voertuigbehandelde muizen worden hier weergegeven. Bij het proberen van dit protocol, het belangrijkste is om ervoor te zorgen dat de ECG-elektroden veilig worden ingevoegd tijdens het experiment. Voer meerdere voorlopige experimenten uit totdat de ECG-signalen stabiel en consistent zijn.
Onze eerdere publicaties met muizen bevestigden ECG-variaties die waren gemeld in menselijke genetische studies, die het nut van deze methode in cardiovasculaire onderzoeksgebieden zoals hartritmestoornissen ondersteunt.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een eenvoudig en kosteneffectief ECG-protocol voor kleine muizen, inclusief neonaten, dat de gevoeligheid van de metingen verhoogt. De methode wordt voorgesteld als een waardevol screeninginstrument voor farmacologische studies en genetische modificaties.
Dit ECG-protocol maakt gevoelige, kosteneffectieve cardiale fenotypering mogelijk bij genetisch of farmacologisch gemanipuleerde muizen, wat bijdraagt aan vroege target-validatie in de ontdekking van cardiovasculaire geneesmiddelen. Door betrouwbare metingen van de hartslag en het QTc-interval te leveren in geanestheseerde modellen, vergroot het de voorspellende betrouwbaarheid voor studies naar autonome modulatie en verlaagt het technische barrières bij preklinische veiligheidsscreenings. De methode is bijzonder waardevol voor het verminderen van risico's bij mechanistische hypothesen in aritmieonderzoek en het faciliteren van go/no-go-beslissingen tijdens de lead-optimalisatie.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van hypothesetests voor targets tot de identificatie van lead-verbindingen, waarbij elektrofysiologische read-outs worden geleverd die nuttig zijn voor vroege cardiovasculaire farmacologie en veiligheidsprofielering.