26 september 2020
Dit protocol is bedoeld om een 3D-bioprint patch te transplanteren op het epicardium van infarct muizen die hartfalen modelleren. Het bevat details met betrekking tot anesthesie, de chirurgische borstopening, permanente ligatie van de linker voorste aflopende (LAD) kransslagader en toepassing van een bioprinted patch op het infarct gebied van het hart.
Elke 10 minuten krijgt iemand in Australië een hartaanval. Dit kan hen verlaten met beschadigde hartspier, en dat kan leiden tot hartfalen. We hebben ontdekt dat we stamcellen, van bloed of huid, kunnen omzetten in kloppende hartcellen.
Als we deze geherprogrammeerde cellen door onze 3D-bioprinter plaatsen, met behulp van bioink, geloven we dat we hartpatches kunnen maken met cellen die de eigen cellen van mensen matchen. Een diep verdoofde muis, met behulp van ketamine xylazine, wordt geïntubeerd met behulp van een 20-meter katheter. Na intubatie van de tracker wordt de muis zorgvuldig op een verwarmingskussen geplaatst en vervolgens aangesloten op de ventilator die automatisch het doelvolume instelt op basis van het muisgewicht.
Onder een lichte anesthesie met 2%iso fluoride is de muis gewoon schoon met jodium en ethanol. Een linkse Laterale thoracotomie wordt uitgevoerd om het hart bloot te leggen. Tussen de derde en de vierde rib wordt een oprolmechanisme geplaatst.
Het pericardium wordt zorgvuldig gesneden. De LAD geïdentificeerd onder de microscoop. Voor de LAD ligatiestap is het belangrijk om te voorkomen dat de hechting door de LAD snijdt.
Daarom wordt een versterkend stuk van 3,06 zijden hechting op het hart geplaatst zoals afgebeeld, die in dezelfde richting loopt en net bovenop de LAD. Met behulp van een 7.06 zijden hechting is de LAD geïsoleerd en permanent geligat. Dit maakt het blancheren van het hart dat een hartaanval krijgt.
Dit zal leiden tot remodellering en de linker ventrikel zal na verloop van tijd mislukken. Een 3D bioprinted hart patch wordt gegenereerd in het lab met behulp van een 3D bioprinter. Dit maakt de laag voor laag, afzetting van hartcellen, met behulp van een combinatie van cellen en hydrogels.
U zien een zweven in deze video en nu in deze afbeelding. Hier is een beeld van de patch verschijning wanneer afgebeeld door epifluorescentie licht microscopie in een put van een zes put plaat. De patch is gekleurd met Hoechst vlek voor celkernen, en deze blauwe vlek is ook de nadruk op de autofluorescente hydrogels.
Dit is een intacte algenate gelatine patch geschikt voor transplantatie, vergelijkbaar met de getoonde in de video. Met onze methode, de meeste patches begon te desintegreren tussen 14 en 28 dagen, in de cultuur, zoals hier getoond in dit beeld van een andere patch, die is uiteengevallen. We ontdekten dat de optimale tijd om patches te transplanteren was tussen dag zeven en dag 14 na bioprinting.
Dit was toen patches met hartcellen begonnen te kloppen, met een zekere mate van weefselrijping, maar voordat patches begonnen te desintegreren. De pleister wordt naar de chirurgische ruimte gebracht en langzaam en zorgvuldig op het hart in een deel van de muis geplaatst. Zorgvuldig wordt ook verplaatst naar het gebied van de inenfer.
Het oprolmechanisme wordt langzaam verwijderd. Ten slotte worden de derde en vierde ribben samen gesloten met behulp van een 6.0 prolene hechting. Samen met een spier worden de ribben gesloten, gevolgd door de sluiting van de huid.
Na sluiting van de borst wordt de muis geïnjecteerd met Antisedan en furosemide. Langzaam zal de muis weer zelfstandig ademwerk doen en reageert hij op teenknijpen. De muis wordt nauwlettend in de gaten gehouden, en zodra hij ontwaakt uit de verdoving, wordt hij in zijn eigen kooi geplaatst.
Dit beeld toont, met het goedgekeurde gebied, waar de bioprinted flard bovenop het muishart zal zitten. Tot slot hebben we aangetoond dat 3D-geprinte algenaat gelatinepleisters kunnen worden getransplanteerd met onze methode, op het epicardium, in een muismodel van een hartinfarct. In de bioprinting fase, algenate gelatine hydrogels hebben een uitstekende afdrukbaarheid als gevolg van hun rheologische eigenschappen, waardoor extrusie zonder schadelijke cellen, maar ook met de biomechanische sterkte om hun structuur te behouden na 3D bioprinting, en tijdens transplantatie.
Onze methode is waarschijnlijk op grote schaal haalbaar en ook geschikt voor het testen van meerdere groepen van 3D-bioprinted patches. Bijvoorbeeld met verschillende cellulaire inhoud.
Deze studie presenteert een protocol voor het transplanteren van een 3D-biogeprinte patch op het epicardium van geïnfarceerde muizen, ter modellering van hartfalen. De methode bevat gedetailleerde chirurgische stappen en het gebruik van biogeprinte patches vervaardigd uit hartcellen.
Dit protocol pakt een kritieke bottleneck in onderzoek naar cardiale regeneratie aan: het betrouwbare in vivo testen van 3D-biogeprinte therapeutische patches in muismodellen voor myocardinfarcten. Door de procedurele variabiliteit en mortaliteit geassocieerd met chirurgische transplantatie te verminderen, maakt dit een statistisch robuustere preklinische evaluatie van engineered weefsels mogelijk. Deze vooruitgang ondersteunt het minimaliseren van risico's bij biologische middelen en biomaterialen in een vroeg stadium door de reproduceerbaarheid in functionele validatiestudies te verbeteren.
De methode past binnen het continuüm van ontdekking tot preklinisch onderzoek door gestandaardiseerde levering van gemanipuleerde weefsels mogelijk te maken na doelwitvalidatie en voorafgaand aan de screening van de werkzaamheid in ziektemodellen.