Name: Laser Doppler Perfusion Imaging in de hindlimb van de muis (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-04-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 45 s
Description: Leer Laser Doppler perfusiebeeldvorming toe te passen voor het meten van bloedstroom in de muis achterpoot. Deze niet-invasieve techniek evalueert huidmicrocirculatie en ondersteunt onderzoek naar wondgenezing en perifeer arterieel lijden.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd uitgevoerd met behulp van faciliteiten en middelen in het VA Puget Sound Health Care Center. Het werk is dat van de auteur en weerspiegelt niet noodzakelijkerwijs de positie of het beleid van het Department of Veterans Affairs of de regering van de Verenigde Staten. Dr Tang wordt momenteel gefinancierd via de VA (Merit 5 I01 BX004975-02).

Dierproeven werden uitgevoerd volgens een protocol goedgekeurd door de University of Washington Institutional Animal Care and Use Committee.
1. Scannervoorbereiding
<ol><li>Stel de scannerhoogte zo in dat de afstand tot het gescande onderwerp ongeveer 30 cm is.</li>
	<li>Schakel de imager in en start de bijbehorende software.</li>
	<li>Open het meetprogramma. Als de software correct communiceert met de scanner, verschijnt de waarschuwing voor het inschakelen van de infraroodlaser.</li>
	<li>Kalibreer de machine met de door de fabrikant verstrekte normen (niet weergegeven in de video en is afhankelijk van het specifieke model machine dat wordt gebruikt).</li>
	<li>Pas de scannerinstellingen aan op de achtergrondmateriaal- en verlichtingsinstellingen in de ruimte.<ol>
<li>Stel de versterkingsniveaus DC FLUX en CONCin volgens de instructies van de fabrikant (niet weergegeven in de video).</li>
		<li>Stel de achtergronddrempel in door de laserstraal op het zwarte achtergrondmateriaal te richten en druk op Auto BK Set.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Voorbereiding voor het scannen van de muis
<ol><li>Stel de isofluraaninductiekamer in met de juiste opruiming van het afvalgas. OPMERKING: Door de inductiekamer op een warmhoudkussen te plaatsen, voorkomt u temperatuurverlies van de muis tijdens anesthesie-inductie.</li>
	<li>Zet de homeothermische deken aan, die in het scangebied onder een niet-reflectief oppervlak wordt geplaatst (in dit geval een zwarte neopreenstof). Stel de homeothermische deken in op een lichaamstemperatuur van 37 °C.</li>
	<li>Plaats de temperatuursonde voor de homeothermische deken en het smeermiddel zo dat ze klaar zijn voor plaatsing.</li>
	<li>Plaats het anesthesiemasker en het opruimsysteem in het scangebied.</li>
	<li>Verdoof de muis met een isofluraan vaporizer. Stel de zuurstofsnelheid in op 1 L/min stroom en stel de isofluraan in op 4% voor anesthesie-inductie. Schakel de stroom naar de anesthesie-inductiekamer in en de ademhalingssnelheid van de muis zal vertragen. Adequate anesthesie wordt bereikt wanneer de muis zijn juiste reflex verliest.</li>
	<li>Breng de muis over op een verdovingsmasker/neuskegel met aangesloten afvalgasopruimer en stel de isofluraan in op 1,5%. OPMERKING: Dit anesthesieniveau is over het algemeen voldoende om de muis relatief stil te houden tijdens het scannen, maar is niet bedoeld om chirurgische anesthesieniveaus te bieden, dus de diepte van de anesthesie wordt niet gecontroleerd. Het veranderen van het isofluraanniveau veroorzaakt veranderingen in hartslag, ademhaling en huidperfusie, dus een consistent percentage moet worden gebruikt tijdens elk tijdscursusexperiment en voor alle experimentele proefpersonen. Alternatieve verdovingstechnieken zoals IP-injectie van ketamine xylazine kunnen ook worden gebruikt, maar dezelfde verdovingstechniek moet gedurende elke cursusstudie worden gebruikt, omdat verschillende anesthetica de huidperfusie anders beïnvloeden.</li>
	<li>(Optioneel afhankelijk van het scangebied) Als de geplande regio van belang die moet worden gescand, bedekt is met bont, gebruik dan een kleine elektrische trimmer of ontharingscrème om het haar uit de interesseregio te verwijderen. OPMERKING: De ontharingscrème moet volledig worden verwijderd en de muishuid moet worden gedroogd voordat deze wordt gescand.</li>
	<li>Plaats de muis in de juiste scanpositie op het zwarte niet-reflectieve oppervlak dat de homeothermische deken bedekt, en bevestig dat beide achterpoten tijdens de equilibratie en het scannen op de warmtebron blijven (figuur 1). OPMERKING: Het is belangrijk om beide voeten op de homeothermische deken te houden om regionale temperatuurschommelingen te voorkomen.</li>
	<li>Plaats de gesmeerde rectale temperatuursonde die is gekoppeld aan de homeothermische deken.</li>
	<li>Equilibreer de muistemperatuur tot de gewenste scantemperatuur (37 °C); ongeveer 5-10 minuten.</li>
	<li>Selecteer Scannerinstellingen, die toegankelijk zijn via het bovenste menu of via het pictogram voor het instellen van de scanner. Pas het scangebied aan door de X-Y-coördinaten aan te passen aan het interessegebied. De scansnelheid is afhankelijk van de scanresolutie. Een hogere resolutie resulteert in langere scantijden. Voor herhaalde scanning gericht op globale perfusie, in tegenstelling tot een hogere resolutie gericht op anatomische perfusie, is een scansnelheid van 4 ms / pixel voldoende. OPMERKING: Een hogere resolutie en een enkele scan moeten worden overwogen als de onderzoeker probeert de zich ontwikkelende collaterale circulatie direct te bestuderen (het best afgebeeld in de ventrale dij en het kalf waar deze dichter bij de huid ligt). Herhaalde scan met een lagere resolutie/snelheid (bijv. 4 ms/pixel) is voldoende bij het beoordelen van globale perfusie naar het eindorgaan van het muisvoetkussen. De software die in de video wordt weergegeven, laadt automatisch de eerder gebruikte sjabloon voor het scangebied, de snelheid en de resolutie wanneer deze opnieuw wordt opgestart, of kan worden opgehaald uit een opgeslagen bestand als verschillende interessegebieden worden gebruikt voor verschillende experimenten.</li>
	<li>Als u herhalingsscans uitvoert, selecteert u het tabblad Herhalen en Lijnscan. Het aantal scans kan worden gewijzigd (in dit geval 3 scans) en het herhalingsinterval. De minimale tijd voor het herhalingsinterval is de geschatte scantijd, die wordt weergegeven in het grijs weergegeven gebied aan de rechterkant van het vak, bepaald door het scangebied en de scanresolutie. Door een paar seconden toe te voegen, kan de gebruiker de muis pauzeren en indien nodig verplaatsen tussen scans.</li>
</ol>3. Scannen
<ol><li>Selecteer het tabblad Afbeeldingsscan en selecteer de knop Markeren. De laser beweegt om het scangebied te schetsen. Pas de muispositie aan zodat het te scannen doel zich binnen het gemarkeerde gebied bevindt. OPMERKING: Voor voetpad- of voetpad- en kuitscanning biedt een gevoelige positionering met de achterpoten verlengd een consistenter interessegebied dan liggende positionering. De femurslagader en sapheneuze slagader en collateralen bevinden zich zeer dicht bij het ventrale oppervlak van de dij en het kalf, dus supine positionering heeft de voorkeur bij het gebruik van deze gebieden van belang.</li>
	<li>Begin met herhaalde metingen door het pictogram Herhalen scannen te selecteren en druk op de afspeelknop om de scan te starten.</li>
	<li>Bevestig de scanafstand in het pop-upvenster en klik op OK om te beginnen met scannen.</li>
	<li>Bewaak de muis tijdens het scannen op muisbewegingen; als de muis voldoende beweegt zodat de achterpoten zich niet meer in het scangebied in het midden van een scan bevinden, start u de scan opnieuw. Kleine variaties in de positie van de achterpoot van de muis kunnen worden ondergebracht in de analysesoftware.</li>
	<li>Controleer de muistemperatuur tijdens het scanproces, omdat deze zelfs bij gebruik van de homeothermische deken kan fluctueren. Als er te veel variatie is in de muistemperatuur, kan dit leiden tot aanzienlijke variatie tussen scans. Over het algemeen zal een temperatuurbereik van 36,8-37,2 °C resulteren in aanvaardbare gegevens.</li>
	<li>Sla de vastgelegde scan op onder het venster Opslaan als met een bestandsnaam met muisidentificatie en tijdspunt voor eenvoudigere gegevensanalyse. Voer indien gewenst muis- en tijdpuntgegevens in het venster met onderwerpdetails in.</li>
	<li>Schakel de isofluraan uit en verwijder de rectale temperatuursonde.</li>
	<li>Desinfecteer de rectale temperatuursonde met 70% ethanol, zodat deze klaar is voor gebruik in de volgende muis.</li>
	<li>Laat de muis herstellen van anesthesie tot het punt waar hij een rechtse reflex weergeeft door van de rugpositie naar de gevoelige positie te draaien voordat hij deze teruggeeft aan de kooi. OPMERKING: Herstel kan worden uitgevoerd op een verwarmende deken voor isofluraan, omdat het herstel zeer snel is of in een verwarmde herstelkooi voor ketamine/xylazine.</li>
</ol>4. LDPI-gegevens vastleggen (Figuur 3)
<ol><li>Open het imaging review softwareprogramma.</li>
	<li>Ga naar het bestandsmenu, open en zoek het opgeslagen bestand.</li>
	<li>Selecteer het ROI-pictogram op de werkbalk.</li>
	<li>Selecteer de knop Polygoon toevoegen.</li>
	<li>Traceer de regio van belang (ROI) voor de controle hindlimb met behulp van de muis. Polygoontracering hoeft niet exact te zijn, omdat de grijze achtergrond niet wordt opgenomen in de berekende gemiddelden.</li>
	<li>Herhaal stap 4.3-4.5 voor de chirurgische achterpoot.</li>
	<li>Kies het pictogram Statistieken om het pu-venster (Image ROIs Statistics Results) te openen.</li>
	<li>Exporteer de resultaten voor Polygon 1 (control hindlimb) en Polygon 2 (surgical hindlimb) naar een dataverzamelingsvoorstel via copy/paste.</li>
</ol>5. Analyse
<ol><li>Leg de gegevens vast als chirurgische/controleverhouding voor elke scan.</li>
	<li>Gebruik de gemiddelde chirurgische/controle voor alle drie de scans voor het gegevenspunt voor die specifieke muis op dat moment. Vanwege de biologische variabiliteit in de respons op hindlimb ischemie, zijn over het algemeen 8-10 muizen per tijdspunt nodig om reproduceerbare resultaten te bereiken met ~ 10% standaardfout. OPMERKING: Voordat u de muis laat herstellen van anesthesie, is het de moeite waard om een snelle analyse van de herhaalde scans uit te voeren om te controleren of de gegevens te variabel zijn (bijv. meer dan 100-150 perfusie-eenheden verschillend tussen scans 1-3). Een grote variatie tussen herhaalde scans suggereert dat de muis tijdens de scan niet volledig is geëquilibreerd(figuur 2),en een herhalingsscan kan worden uitgevoerd zonder een gegevenspunt te verliezen, wat zou gebeuren als de afbeeldingen pas op een later tijdstip worden geanalyseerd. Het wijzigen van het kleurenpalet om het dynamische bereik van weergegeven fluxwaarden te optimaliseren, kan nodig zijn om de scanvariatie beter weer te geven (figuur 2).</li>
</ol>

<ol><li>Varma, P., Stineman, M. G., Dillingham, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology+of+limb+loss%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Medicine+and+Rehabilitation+Clinics+of+North+America%22%5BJournal%5D)">Epidemiology of limb loss.</a> Physical Medicine and Rehabilitation Clinics of North America. 25 (1), 1-8 (2014).</li>
<li>Farber, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+Limb-Threatening+Ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Chronic Limb-Threatening Ischemia.</a> New England Journal of Medicine. 379 (2), 171-180 (2018).</li>
<li>Abularrage, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+microcirculation+in+vascular+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Vascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the microcirculation in vascular disease.</a> Journal of Vascular Surgery. 42 (3), 574-581 (2005).</li>
<li>Houben, A., Martens, R. J. H., Stehouwer, C. D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+Microvascular+Function+in+Humans+from+a+Chronic+Disease+Perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Society+of+Nephrology%22%5BJournal%5D)">Assessing Microvascular Function in Humans from a Chronic Disease Perspective.</a> Journal of the American Society of Nephrology. 28 (12), 3461-3472 (2017).</li>
<li>Mahe, G., Humeau-Heurtier, A., Durand, S., Leftheriotis, G., Abraham, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+skin+microvascular+function+and+dysfunction+with+laser+speckle+contrast+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%3A+Cardiovascular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Assessment of skin microvascular function and dysfunction with laser speckle contrast imaging.</a> Circulation: Cardiovascular Imaging. 5 (1), 155-163 (2012).</li>
<li>Murray, A. K., Herrick, A. L., King, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Doppler+imaging%3A+a+developing+technique+for+application+in+the+rheumatic+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Rheumatology+%28Oxford%29%22%5BJournal%5D)">Laser Doppler imaging: a developing technique for application in the rheumatic diseases.</a> Rheumatology (Oxford). 43 (10), 1210-1218 (2004).</li>
<li>Greco, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeatability%2C+reproducibility+and+standardisation+of+a+laser+Doppler+imaging+technique+for+the+evaluation+of+normal+mouse+hindlimb+perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Repeatability, reproducibility and standardisation of a laser Doppler imaging technique for the evaluation of normal mouse hindlimb perfusion.</a> Sensors (Basel). 13 (1), 500-515 (2012).</li>
<li>Sonmez, T. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+laser-Doppler+flowmetry+assisted+murine+model+of+acute+hindlimb+ischemia-reperfusion+for+free+flap+research%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A novel laser-Doppler flowmetry assisted murine model of acute hindlimb ischemia-reperfusion for free flap research.</a> PLoS One. 8 (6), 66498(2013).</li>
<li>Gargiulo, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+some+anesthetic+agents+on+skin+microcirculation+evaluated+by+laser+Doppler+perfusion+imaging+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Veterinary+Research%22%5BJournal%5D)">Effects of some anesthetic agents on skin microcirculation evaluated by laser Doppler perfusion imaging in mice.</a> BMC Veterinary Research. 9, 255(2013).</li>
<li>Ankri-Eliahoo, G., Weitz, K., Cox, T. C., Tang, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p27%28kip1%29+Knockout+enhances+collateralization+in+response+to+hindlimb+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Vascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">p27(kip1) Knockout enhances collateralization in response to hindlimb ischemia.</a> Journal of Vascular Surgery. 63 (5), 1351-1359 (2016).</li>
<li>McEnaney, R. M., Shukla, A., Madigan, M. C., Sachdev, U., Tzeng, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((P2Y2+nucleotide+receptor+mediates+arteriogenesis+in+a+murine+model+of+hind+limb+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Vascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">P2Y2 nucleotide receptor mediates arteriogenesis in a murine model of hind limb ischemia.</a> Journal of Vascular Surgery. 63 (1), 216-225 (2016).</li>
<li>Padgett, M. E., McCord, T. J., McClung, J. M., Kontos, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+Acute+and+Subacute+Murine+Hindlimb+Ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Methods for Acute and Subacute Murine Hindlimb Ischemia.</a> Journal of Visualized Experiments. (112), e54166(2016).</li>
<li>Niiyama, H., Huang, N. F., Rollins, M. D., Cooke, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+model+of+hindlimb+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Murine model of hindlimb ischemia.</a> Journal of Visualized Experiments. (23), e1035(2009).</li>
<li>Chalothorn, D., Faber, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strain-dependent+variation+in+collateral+circulatory+function+in+mouse+hindlimb%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Genomics%22%5BJournal%5D)">Strain-dependent variation in collateral circulatory function in mouse hindlimb.</a> Physiological Genomics. 42 (3), 469-479 (2010).</li>
<li>Helisch, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+mouse+strain+differences+in+innate+hindlimb+collateral+vasculature%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Impact of mouse strain differences in innate hindlimb collateral vasculature.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 26 (3), 520-526 (2006).</li>
<li>Faber, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aging+causes+collateral+rarefaction+and+increased+severity+of+ischemic+injury+in+multiple+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Aging causes collateral rarefaction and increased severity of ischemic injury in multiple tissues.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 31 (8), 1748-1756 (2011).</li>
<li>Forrester, K. R., Stewart, C., Tulip, J., Leonard, C., Bray, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+laser+speckle+and+laser+Doppler+perfusion+imaging%3A+measurement+in+human+skin+and+rabbit+articular+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+%26+Biological+Engineering+%26+Computing%22%5BJournal%5D)">Comparison of laser speckle and laser Doppler perfusion imaging: measurement in human skin and rabbit articular tissue.</a> Medical & Biological Engineering & Computing. 40 (6), 687-697 (2002).</li>
<li>Briers, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Doppler%2C+speckle+and+related+techniques+for+blood+perfusion+mapping+and+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Measurement%22%5BJournal%5D)">Laser Doppler, speckle and related techniques for blood perfusion mapping and imaging.</a> Physiological Measurement. 22 (4), 35-66 (2001).</li>
<li>Heeman, W., Steenbergen, W., van Dam, G., Boerma, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+applications+of+laser+speckle+contrast+imaging%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Clinical applications of laser speckle contrast imaging: a review.</a> Journal of Biomedical Optics. 24 (8), 1-11 (2019).</li>
<li>Nguyen, T., Davidson, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contrast+Enhanced+Ultrasound+Perfusion+Imaging+in+Skeletal+Muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiovascular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Contrast Enhanced Ultrasound Perfusion Imaging in Skeletal Muscle.</a> Journal of Cardiovascular Imaging. 27 (3), 163-177 (2019).</li>
<li>Zaccagnini, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+Resonance+Imaging+Allows+the+Evaluation+of+Tissue+Damage+and+Regeneration+in+a+Mouse+Model+of+Critical+Limb+Ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Magnetic Resonance Imaging Allows the Evaluation of Tissue Damage and Regeneration in a Mouse Model of Critical Limb Ischemia.</a> PLoS One. 10 (11), 0142111(2015).</li>
<li>Penuelas, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PET+as+a+measurement+of+hindlimb+perfusion+in+a+mouse+model+of+peripheral+artery+occlusive+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Nuclear+Medicine%22%5BJournal%5D)">PET as a measurement of hindlimb perfusion in a mouse model of peripheral artery occlusive disease.</a> Journal of Nuclear Medicine. 48 (13), 1216-1223 (2007).</li>
<li>Jia, Y., Qin, J., Zhi, Z., Wang, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrahigh+sensitive+optical+microangiography+reveals+depth-resolved+microcirculation+and+its+longitudinal+response+to+prolonged+ischemic+event+within+skeletal+muscles+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Ultrahigh sensitive optical microangiography reveals depth-resolved microcirculation and its longitudinal response to prolonged ischemic event within skeletal muscles in mice.</a> Journal of Biomedical Optics. 16 (8), 086004(2011).</li>
<li>Turaihi, A. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+Intravital+Microscopy+and+Contrast-enhanced+Ultrasonography+of+the+Mouse+Hindlimb+to+Study+Insulin-induced+Vasodilation+and+Muscle+Perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Combined Intravital Microscopy and Contrast-enhanced Ultrasonography of the Mouse Hindlimb to Study Insulin-induced Vasodilation and Muscle Perfusion.</a> Journal of Visualized Experiments. (121), e54912(2017).</li>
<li>Liu, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+autophagy+alleviates+injury+during+hindlimb+ischemia%2Freperfusion+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+and+Therapeutic+Medicine%22%5BJournal%5D)">Enhanced autophagy alleviates injury during hindlimb ischemia/reperfusion in mice.</a> Experimental and Therapeutic Medicine. 18 (3), 1669-1676 (2019).</li>
<li>Liu, D. L., Svanberg, K., Wang, I., Andersson-Engels, S., Svanberg, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Doppler+perfusion+imaging%3A+new+technique+for+determination+of+perfusion+and+reperfusion+of+splanchnic+organs+and+tumor+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+in+Surgery+and+Medicine%22%5BJournal%5D)">Laser Doppler perfusion imaging: new technique for determination of perfusion and reperfusion of splanchnic organs and tumor tissue.</a> Lasers in Surgery and Medicine. 20 (4), 473-479 (1997).</li>
<li>Jing, Y., Bai, F., Chen, H., Dong, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+Laser+Doppler+Imaging+and+Monitoring+to+Analyze+Spinal+Cord+Microcirculation+in+Rat%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Using Laser Doppler Imaging and Monitoring to Analyze Spinal Cord Microcirculation in Rat.</a> Journal of Visualized Experiments. (135), e56243(2018).</li>
<li>Zhang, D., Li, S., Wang, S., Ma, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+evaluation+of+the+effect+of+a+gastric+ischemia-reperfusion+model+with+laser+Doppler+blood+perfusion+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+in+Medical+Science%22%5BJournal%5D)">An evaluation of the effect of a gastric ischemia-reperfusion model with laser Doppler blood perfusion imaging.</a> Lasers in Medical Science. 21 (4), 224-228 (2006).</li>
<li>Fitzal, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulatory+changes+after+prolonged+ischemia+in+the+epigastric+flap%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Reconstructive+Microsurgery%22%5BJournal%5D)">Circulatory changes after prolonged ischemia in the epigastric flap.</a> Journal of Reconstructive Microsurgery. 17 (7), 535-543 (2001).</li>
</ol>

Dr Tang heeft geen belangenverstrengeling te onthullen.

Consistente techniek is van cruciaal belang voor het verkrijgen van betrouwbare resultaten met LDPI. Dezelfde verdoving, temperatuurinstellingen, muispositie en interessegebied moeten gedurende de hele tijd worden gebruikt. Verschillende anesthesiemiddelen resulteren in hogere of lagere perfusiewaarden9. Isofluraan anesthesie is handig vanwege het snelle begin en de opkomst, evenals de algehele veiligheid. Een consistent percentage isofluraan moet worden gebruikt als diepte van anesthesie met dit ...

Huidzweren met onvoldoende wondgenezing is een belangrijke oorzaak van amputaties bij menselijke patiënten1. Adequate wondgenezing vereist hogere niveaus van arteriële perfusie dan nodig is om een intacte huid te behouden, die wordt aangetast bij patiënten met perifere arteriële ziekte2,3,4. Verschillende andere rheumatologische aandoeningen en diabetes kunnen ook leiden tot een verstoorde en ontoereikende huidmicrocirculatie om wonden te genezen5,6. Veel diabetespatiënten hebben gelijktijdige perifere arteriële aandoeningen, waardoor ze een bijzonder hoog risico lopen op amputatie. Laser Doppler perfusie beeldvorming (LDPI) wordt gebruikt in klinische situaties om de microcirculatie van de huid te evalueren, evenals in onderzoekssituaties om de bloedstroom en het herstel van de bloedstroom te evalueren na experimentele hindlimb ischemie, ischemie-reperfusie en microchirurgische flaps7.
Het LDPI-systeem projecteert een laagvermogen laserstraal die wordt afgebogen door een scanspiegel om zich over een interessant gebied te bewegen. Dit verschilt van Laser Doppler flowmetrie, die een perfusiemeting biedt voor het kleine weefselgebied dat in direct contact staat met de flowmetriesonde8. Wanneer de laserstraal interageert met bewegend bloed in het microvasculatuur, ondergaat het een Doppler-frequentieverschuiving, die door de scanner wordt gedetecteerd en omgezet in willekeurige perfusie-eenheden. Omdat LDPI een op licht gebaseerde techniek is, is deze beperkt in termen van penetratiediepte tot 0,3-1 mm, wat betekent dat voor het grootste deel dermale perfusie wordt beoordeeld7. De huidstroom kan worden gewijzigd door de huidtemperatuur en het sympathische zenuwstelsel, dat kan worden beïnvloed door verschillende verdovende middelen9. Metingen van de optische laser worden ook beïnvloed door omgevingslichtomstandigheden, huidpigmentatie en kunnen worden geblokkeerd door een overtolkend bont of haar7.
LDPI is de meest gebruikte onderzoekstechniek om perfusieherstel na ischemie te controleren, omdat het niet-invasief is, geen contrasttoediening vereist en snelle scantijden heeft waarmee gegevens over meerdere dieren kunnen wordenverzameling. Dit maakt het ideaal om te helpen bepalen of behandelingen gericht op therapeutische arteriogenese of angiogenese effectief zijn in modellen voor kleine dieren. Het herstel van de bloedstroom na hindlimb ischemie zoals gemeten door LDPI correleert goed met de ontwikkeling van de collaterale slagader wanneer beoordeeld met andere middelen zoals Microfil casting of micro-CT10,11. Het doel van dit protocol is om de beoordeling van hindlimbperfusie met behulp van LDPI aan te tonen.

<table><tbody><tr><td>Zwart niet-reflecterend materiaal</td><td></td><td></td><td>Stofwinkel, zwart neopreen aanbevolen door bedrijf</td></tr><tr><td>F/air-bus</td><td>A.M. Bickford Inc</td><td>80120</td><td></td></tr><tr><td>Homeotherme deken met star metalen sonde</td><td>Harvard Apparatus</td><td></td><td>Komt ook met flexibele sonde, maar deze is minder duurzaam</td></tr><tr><td>Isofluraangeanesthesietoestel</td><td>Drager</td><td></td><td>Meerdere fabrikanten</td></tr><tr><td>Isofluraaninductiekamer</td><td>VetEquip</td><td>941444</td><td>2 L kamer</td></tr><tr><td>Moor laser Doppler perfusie imager</td><td>Moor Instruments</td><td>MoorLDI2-IR</td><td>Imager met hogere resolutie (MoorLDI2-HIR)</td></tr><tr><td>Muisanesthesie snuitkap</td><td></td><td></td><td>Meerdere fabrikanten</td></tr><tr><td>Nair</td><td>Nair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zuurstoftank</td><td></td><td></td><td>Meerdere fabrikanten</td></tr><tr><td>Surgilube</td><td>Meerdere distributeurs</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

laser doppler perfusion imaging in de hindlimb van de muis

Laser Doppler Perfusion Imaging in the Mouse Hindlimb

Bloedstroomherstel is een kritische uitkomstmaat na experimentele hindlimb ischemie of ischemie-reperfusie. Laser Doppler perfusion imaging (LDPI) is een veelgebruikte, niet-invasieve, herhaalbare methode voor het beoordelen van het herstel van de bloedstroom. De techniek berekent de totale bloedstroom in het bemonsterde weefsel van de Doppler-verschuiving in frequentie veroorzaakt wanneer een laser bewegende rode bloedcellen raakt. Metingen worden uitgedrukt in willekeurige perfusie-eenheden, dus de contralaterale niet-ingegrepen op het been wordt meestal gebruikt om metingen te helpen controleren. Meetdiepte ligt tussen 0,3-1 mm; voor hindlimb ischemie betekent dit dat dermale perfusie wordt beoordeeld. Huidperfusie is afhankelijk van verschillende factoren - het belangrijkste is de huidtemperatuur en het verdovingsmiddel, dat zorgvuldig moet worden gecontroleerd om betrouwbare metingen te kunnen opleveren. Bovendien kan haar- en huidpigmentatie het vermogen van de laser veranderen om de dermis te bereiken of door te dringen. Dit artikel demonstreert de techniek van LDPI in de muis hindlimb.

Succesvolle LDPI moet resulteren in consistente scans met herhaalde metingen, met niet meer dan 100-150 variatie perfusie-eenheid (overeenkomend met ongeveer 10% van de gebruikelijke gemiddelde perfusie voor het muisvoetkussen) tussen de drie scans (figuur 2). Zoals aangetoond in figuur 2,helpen herhaalscans te bepalen dat de muis op de juiste manier is geëquilibreerd, zodat de ischemische/controleverhouding het beste de onderliggende bloedstroom weerspiegelt in...

Hier presenteren we een protocol dat de techniek en noodzakelijke controles demonstreert voor Laser Doppler perfusiebeeldvorming om de bloedstroom in de achterpoten van de muis te meten.

Laser Doppler Perfusion Imaging in de hindlimb van de muis

Blood flow recovery is a critical outcome measure after experimental hindlimb ischemia or ischemia-reperfusion. Laser Doppler perfusion imaging (LDPI) is ...

Huidzweren met onvoldoende wondgenezing is een belangrijke oorzaak van amputatie bij menselijke patiënten. Adequate wondgenezing vereist hogere niveaus van arteriële overvloed die nodig zijn om een intacte huid te behouden, wat wordt aangetast bij patiënten met perifere arteriële aandoeningen. Verschillende andere rheumatologische aandoeningen en diabetes kunnen ook leiden tot verstoorde en ontoereikende huidmicrocirculatie om wonden te genezen.Veel diabetespatiënten hebben gelijktijdige perifere arteriële aandoeningen, waardoor ze een bijzonder hoog risico lopen op amputatie. Laser Doppler perfusie beeldvorming of LDPI wordt gebruikt in klinische situaties om de microcirculatie van de huid te evalueren, evenals in onderzoekssituaties om de bloedstroom en het herstel van de bloedstroom te evalueren na experimentele hindlimb ischemie, ischemie reperfusie en microchirurgische flaps. Het LDPI-systeem projecteert een low-power laserstraal die wordt afgebogen door een scanspiegel om zich over een interessant gebied te bewegen.Dit verschilt van laser Doppler flowmetrie, die een perfusiemeting biedt voor het kleine weefselgebied dat in direct contact staat met de flowmetriesonde. Wanneer de laserstraal interageert met bewegend bloed in de microvasculatuur ondergaat het een Doppler-frequentieverschuiving die door de scanner wordt gedetecteerd en omgezet in willekeurige perfusie-eenheden. Omdat LDPI een op licht gebaseerde techniek is, is deze beperkt in termen van penetratiediepte tot 0,3 tot 1 millimeter, wat betekent dat voor het grootste deel dermale perfusie wordt beoordeeld.De huidstroom kan worden gewijzigd door de huidtemperatuur en het sympathische zenuwstelsel, dat kan worden beïnvloed door verschillende verdovende middelen. Metingen van de optische laser worden ook beïnvloed door omgevingslichtomstandigheden, huidpigmentatie en kunnen worden geblokkeerd door een te hoge vacht of haar. LDPI is de meest gebruikte onderzoekstechniek om het herstel van overvloed na ischemie te monitoren, omdat het niet-invasief is, geen contrasttoediening vereist en snelle scantijden heeft waarmee gegevens over meerdere dieren kunnen wordenverzameling.Dit maakt het ideaal om te helpen bepalen of behandelingen gericht op therapeutische arteriogenese of angiogenese effectief zijn in modellen voor kleine dieren. Bloedstroomherstel na hindlimb ischemie zoals gemeten door LDPI correleert goed met de ontwikkeling van de collaterale slagader wanneer beoordeeld met andere middelen zoals microfill casting of micro CT. Het doel van dit protocol is om de beoordeling van hindlimbperfusie met behulp van LDPI aan te tonen. Stel de scannerhoogte zo in dat de afstand tot het scanonderwerp ongeveer 30 centimeter is.Schakel de imager in en start de bijbehorende software. Open het meetprogramma. Als de software correct communiceert met de scanner, verschijnt de infraroodlaserwaarschuwing.Pas de scannerinstellingen aan op de achtergrondmateriaal- en verlichtingsinstellingen in de ruimte. Stel de achtergronddrempel in door de laserstraal op het zwarte achtergrondmateriaal te richten en druk op Auto BK Set. Stel de isofluraaninductiekamer in met de juiste afvoer van afvalgas.Door de inductiekamer op een warmhoudkussen te plaatsen, voorkomt u temperatuurverlies van de muis tijdens anesthesie-inductie. Zet de homeothermische deken aan, die in het scangebied onder een niet-reflecterend oppervlak wordt geplaatst. In dit geval een zwarte neopreen stof.De homeothermische deken is ingesteld om een lichaamstemperatuur van 37 graden Celsius te handhaven. Plaats de temperatuursonde en smeermiddelen zo dat ze klaar zijn voor plaatsing. Plaats ook het anesthesiemasker en het opruimsysteem in het scangebied.Verdoof de muis met een isofluraan vaporizer. De zuurstofsnelheid is ingesteld op één liter per minuut stroom. En de isofluraan is aangepast naar 4% voor anesthesie inductie.De stroom wordt ingeschakeld op de anesthesie-inductiekamer en de ademhalingssnelheid van de muis zal vertragen. Adequate anesthesie wordt bereikt wanneer de muis zijn juiste reflex verliest. Breng de muis over naar een verdovingsmasker neuskegel met bijgevoegde afvalgasafruimer en pas de isofluraan aan op 1,5%Dit anesthesieniveau is over het algemeen voldoende om de muis relatief stil te houden tijdens het scannen, maar is niet bedoeld om chirurgische anesthesieniveaus te bieden.Dus de diepte van de anesthesie wordt niet gecontroleerd. Het veranderen van het isofluraanniveau veroorzaakt veranderingen in hartslag, ademhaling en huidprofusie. Er moet dus een consistent percentage worden gebruikt gedurende elk tijdscursusexperiment en voor alle experimentele proefpersonen.Alternatieve verdovingstechnieken, zoals IP-injectie van ketamine xylazine, kunnen ook worden gebruikt, maar dezelfde verdovingstechniek moet tijdens elke cursusstudie worden gebruikt, omdat verschillende anesthetica de huidprofusie anders beïnvloeden. Als het te scannen plangebied bedekt is met bont, gebruik dan een kleine elektrische trimmer en/of ontharingscrème om het haar uit de interesseregio te verwijderen. De ontharingscrèmes moeten volledig worden verwijderd en de muishuid moet vóór het scannen worden gedroogd, omdat een natte huid reflecties van de laser kan veroorzaken Plaats de gesmeerde rectale temperatuursonde die is gekoppeld aan de homeothermische deken in het rectum van de muis.Equilibreer de muistemperatuur naar wensscantemperatuur, 37 graden Celsius. Dit kan tot vijf tot 10 minuten duren. Selecteer Scanner setup die toegankelijk is via het bovenste menu of via het pictogram Scanner setup.Het scangebied moet worden aangepast door de coördinaten X, Y te wijzigen om rekening te houden met het interessegebied. De scansnelheid is afhankelijk van de scanresolutie. Een hogere resolutie resulteert in langere scantijden.Voor herhaalde scanning, gericht op wereldwijde overvloed, in tegenstelling tot een hogere resolutie gericht op anatomische perfusie, is de hoogste scansnelheid van vier milliseconden per pixel voldoende. Als u herhalingsscans uitvoert, selecteert u het tabblad Herhalen en Lijnscan. Het aantal scans kan worden gewijzigd.In dit geval drie scans, evenals het herhalingsinterval. De minimale tijd voor het herhalingsinterval zijn de geschatte scantijden die worden weergegeven in het grijs weergegeven gebied aan de rechterkant van het vak, bepaald door het scangebied en de scanresolutie. Door een paar seconden toe te voegen, kan de gebruiker de muis pauzeren en indien nodig verplaatsen tussen scans.De totale scantijd is in dit geval drie minuten en 21 seconden. Selecteer het tabblad Afbeeldingsscan en selecteer de knop Markeren. Dit zorgt ervoor dat de laser het scangebied omlijnt.Pas de muispositie aan zodat het te scannen doel zich binnen het gemarkeerde gebied bevindt. Begin met herhaalde metingen door het pictogram Herhalen scannen te selecteren en op de afspeelknop te drukken om de scan te starten. Er verschijnt een pop-upvenster dat de scanafstand bevestigt.Klik op OK om te beginnen met scannen. De eerste scan van een muis voorafgaand aan inductie van hindlimb ischemie wordt in realtime getoond. De tweede en derde herhalingsscans worden versneld tot 16x snelheid.Het hoofdvenster toont de resultaten van de scan zoals deze door de software wordt gegenereerd. De inzet rechtsonder toont de laser die de muisvoetpads scant. Voor voetpad of voetpad en dorsale kuitscanning biedt een gevoelige positionering met de achterpoten naar de staart gericht een consistenter gebied van belang bij de positionering van de rug.De femurslagader, sapheneuze slagader en collateralen bevinden zich zeer dicht bij het ventrale oppervlak van de dij en het kalf. Dus supine positionering heeft de voorkeur als het gebruik van deze regio's van belang. Bewaak de muis tijdens het scannen op muisbeweging.Als de muis voldoende beweegt zodat de voetpads zich niet meer in het scangebied in het midden van een scan bevinden, start u de scan opnieuw. Kleine variaties in de positie van het muisvoetpad kunnen worden ondergebracht in analysesoftware. Controleer ook de muistemperatuur tijdens het scanproces, omdat deze zelfs met het gebruik van de homeothermische deken kan fluctueren.Als er te veel variatie is in de muistemperatuur, kan dit leiden tot aanzienlijke variatie tussen scans. Over het algemeen zal een temperatuurbereik van 36,8 tot 37,2 resulteren in acceptabele gegevens. Sla de vastgelegde scan op onder het venster Opslaan als met een bestandsnaam met muisidentificatie en tijdspunt voor eenvoudigere gegevensanalyse.Voer indien gewenst muis- en tijdpuntgegevens in het venster Onderwerpdetails in. Ventrale hindlimb scanning met de muis in de supine positie wordt hier getoond na het aanpassen van het scangebied. Merk op dat de propositie met de muisondersteuner resulteert in een variabel deel van de zijkant van de voet dat wordt gescand.Verwijder de rectale temperatuursonde en desinfecteer deze met 70% ethanol zodat deze klaar is voor de volgende muis. Verminder isofluraan tot 0%De muis zal sneller herstellen als hij zuurstof blijft ontvangen, maar het kan ook worden teruggewonnen zonder extra zuurstof. Laat de muis herstellen van anesthesie tot het punt waar hij een rechtse reflex weergeeft door van de rugpositie naar de gevoelige positie te draaien voordat hij deze teruggeeft aan de kooi.Herstel kan worden uitgevoerd op een verwarmende deken voor isofluraan, omdat het herstel zeer snel is of in een warme herstelkooi voor ketamine xylazine. Open het imaging review softwareprogramma. Er wordt een nieuw venster geopend om scans te bekijken.Ga naar het menu Bestand, Open en zoek het opgeslagen bestand. Selecteer het ROI-pictogram op de werkbalk. Selecteer het pictogram Polygoon toevoegen.Traceer een gebied rond de regio van belang met behulp van de muis. Wanneer u klaar bent, gaat u terug naar de werkbalk en selecteert u het pictogram Statistieken. Dit zal een venster openen met statistieken uit de regio van belang.Bij gegevenscontrole variëren de gemiddelde profusie-eenheid of PU-waarden niet meer dan 100 tot 150 PUs over de herhaalde scans voor elk voetpad. Dit is een acceptabele scan en geeft aan dat de muis goed is geëquilibreerd tijdens de scan. Gemiddelde PU-waarden met variatie groter dan 100 tot 150 PUs, wat overeenkomt met meer dan 10% van de gemiddelde perfusie voor een niet-bediend muisvoetpad over de herhaalde scans, zou erop wijzen dat de muis niet goed is geëquilibreerd en een herhaalde scan wordt sterk gesuggereerd.Het uitvoeren van een snelle analyse onmiddellijk nadat de scan is voltooid, maakt het mogelijk om een herhaalde scan uit te voeren terwijl de muis nog steeds verdoofd is en te voorkomen dat een gegevenspunt verloren gaat dat kan optreden als de scans op een later tijdstip worden geanalyseerd en een scan onaanvaardbaar wordt geacht vanwege aanzienlijke variatie tussen de herhaalde scans. Resultaten worden uitgedrukt als een verhouding van chirurgische hindlimb profusie over controle hindlimb perfusie als muizen aanvankelijk vasodilaat en vervolgens ontwikkelen hun intrinsieke zekerheden, bloedstroom herstel door LDPI moet worden gezien over een postoperatieve tijd cursus. De mate van herstel is afhankelijk van de muisbelasting en de ernst van het hindlimb ischemiemodel.Deze figuur toont een voltooid tijdsverloopexperiment gedurende 28 dagen waarbij LDPI werd gebruikt om het herstel van de bloedstroom van het voetpad in de loop van de tijd te meten na femurslagaderlig ligatie en P27 knock-out en wilde type C57Bl/6 muizen. Beide P27 knock-out bij wilde type muizen had een verminderde bloedstroom herstel wanneer behandeld met orale doxycycline, een gegeneraliseerde matrix metalloproteinases remmer, wat suggereert dat MMP activiteit vergemakkelijkt arteriogenese. De versterkingsinstelling en achtergronddrempel moeten gedurende het hele tijdscursusexperiment constant worden gehouden.Als de achtergronddrempel te laag is ingesteld, resulteert het scannen van het achtergrondmateriaal in lage overvloedswaarden. Dit zal ertoe leiden dat de achtergrondprofusiewaarden worden gemiddeld in het interessegebied tijdens de polygoonselectie. Om dit probleem op te lossen, kan de achtergronddrempel worden aangepast in het venster Scannerinstellingen onder het tabblad Algemeen.In dit geval resulteert het verhogen van de achtergronddrempel naar 118 overvloedseenheden in de grijze achtergrond die niet in een analyse zal worden opgenomen. Het palet of de kleurschaal voor de fluxafbeelding kan zowel in de meetsoftware als in de beeldbeoordelingssoftware worden aangepast. Alle overvloedswaarden die groter zijn dan de maximale waarde op de schaal, worden weergegeven als de hoogste overvloedskleur.In dit geval, rood. Door het dynamische bereik te vergroten, bijvoorbeeld door de schaal te wijzigen van nul naar 1500, wordt herhaalde scanvariatie duidelijker voor het oog, omdat gebieden met een lengte tussen 1000 en 1500 overvloedseenheden nu worden weergegeven met behulp van het kleurverloop in plaats van dat ze allemaal als rood worden weergegeven. De hier getoonde scan werd verkregen bij een muis waarvan de kernlichaamstemperatuur aanvankelijk lager was dan 36,8 aan het begin van de herhaalde scan en vervolgens steeg ten opzichte van de herhaalde scans.Merk op dat de gemiddelde overvloed van het controlevoetkussen meer werd uitgevoerd door de koudere kernlichaamstemperatuur dan het ischemische voetpad. Een enkele scan van de koelere lichaamstemperatuur zou hebben geresulteerd in een hogere overvloedsverhouding voor dit gegevenspunt. Variatie in pigmentatie van de muishuid, zoals kan worden gezien bij C57Bl/6-muizen, kan ertoe leiden dat het scangebied onder de achtergronddrempelwaarde ligt, wat de analyse van interessegebieden met gepigmenteerde gebieden moeilijk zal maken.De muisvoetpads hebben over het algemeen geen hyperpigmentatie, waardoor dit het handigste gebied is om te scannen op deze muisstam. Als de onderzoeker de ventrale hindlimb wil bestuderen, moet een witte muisstam worden geselecteerd. LDPI is een effectieve, gemakkelijk uit te voeren en herhaalbare methode voor het meten van hindlimb dermale profusie als een weerspiegeling van de algehele arteriële perfusie.Consistente techniek is vereist bij het gebruik van LDPI om betrouwbare gegevens te verkrijgen.

laser-doppler-perfusion-imaging-in-the-mouse-hindlimb

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

De chirurgische procedure voor het induceren van eenzijdige achterbeen ischemie is aangetoond, met bevestiging van ischemie door een laser Doppler perfusie beeldvorming.

Muizenmodel van achterbeen ischemie

We beschrijven de manier van programmeren stamcellen therapeutische angiogenese factoren overexpressie bioafbreekbare polymere nanodeeltjes. Beschreven processen omvatten polymeersynthese, transfecteren vet-afgeleide stamcellen in vitro, en valideren van de werkzaamheid van geprogrammeerde stamcellen om angiogenese te bevorderen in een muizen achterbeen ischemie model.

Programmeren stamcellen voor therapeutische angiogenese gebruik van biologisch afbreekbare polymere nanodeeltjes

Chirurgische inductie van hindlimbischemie bij muizen is nuttig om angiogenesis te onderzoeken, maar dit wordt bemoeilijkt bij bepaalde ingefokt muizenrassen die duidelijke ischemie-geïnduceerde weefsellethale schade vertonen. Er worden methoden beschreven om subacute ledemaatische ischemie te induceren met behulp van ameroïde constrictors om dit probleem te omzeilen door de inductie van geleidelijke arteriële occlusie.

Methoden voor acute en subacute muizen achterbeen ischemie

Insuline-geïnduceerde vasodilatatie regelt spier perfusie en verhoogt de Microvasculaire oppervlakte (microvasculaire werving) beschikbaar voor opgeloste uitwisseling tussen bloed en weefsel interstitium. Gecombineerde intravital microscopie en contrast-enhanced Ultrasonografie is bedoeld om te beoordelen gelijktijdig insuline de actie op de grotere schepen en de microcirculatie in vivo.

Gecombineerde Intravital microscopie en Contrast-enhanced Ultrasonografie van het stuk van de muis om te bestuderen van de insuline-geïnduceerde vasodilatatie en spier perfusie

Alvleesklier islet microvasculaire vasomotion regelt islet bloed verspreiding en onderhoudt de fysiologische functie van β eilandjecellen. Dit protocol wordt beschreven met behulp van een laser Doppler-monitor om de functionele status van de alvleesklier islet microvasculaire vasomotion in vivo te bepalen en te beoordelen van de bijdragen van de alvleesklier islet microcirculatie alvleesklier-gerelateerde ziekten.

Laser Doppler: Een instrument voor het meten alvleesklier Islet microvasculaire Vasomotion In Vivo

Hier presenteren we een combinatie van laser Doppler perfusie imaging (LDPI) en lokale bloed stromen en zuurstof verzadiging (SO2), evenals een gestandaardiseerde procedure voor de invoering van ruggenmerg laser Doppler perfusie toezicht (LDPM) voor het meten van spinal cord trauma's op rat.

Met behulp van Laser Doppler Imaging en toezicht voor het analyseren van ruggenmerg microcirculatie in Rat

De rekrutering van leukocyten en bloedplaatjes vormt een essentieel onderdeel dat nodig is voor de effectieve groei van collaterale slagaders tijdens arteriogenese. Multifotonenmicroscopie is een efficiënt hulpmiddel voor het volgen van celdynamica met een hoge spatio-temporele resolutie in vivo en minder fototoxiciteit om leukocytenrekrutering en extravasatie tijdens arteriogenese te bestuderen.

Multifoton intravitale beeldvorming voor het monitoren van leukocytenrekrutering tijdens arteriogenese in een Murine Hindlimb-model

Het huidige protocol beschrijft een uniek, klinisch relevant model van perifere arteriële ziekte dat femorale slagader en aderelektrocoagulatie combineert met de toediening van een stikstofmonoxidesynthaseremmer om hindlimb gangreen te induceren in FVB-muizen. Intracardiale DiI-perfusie wordt vervolgens gebruikt voor hoge resolutie, driedimensionale beeldvorming van de voetzool vasculatuur.

Driedimensionale beeldvorming met hoge resolutie van de voetzool vasculatuur in een Murine Hindlimb Gangreen model

Ultrasnelle Doppler-echografie (UFUS) met een hoge ruimtelijke resolutie (100 μm) en gevoeligheid is een geschikte niet-invasieve beeldvormingsmodaliteit voor het verkrijgen van een uitgebreid kwalitatief overzicht van de levervasculatuur. UFUS faciliteert ook kwantitatieve metingen van de microvasculatuur, met als doel ons begrip van vaatziektemechanismen te vergroten.

Beeldvorming en kwantificering van het levervaatstelsel van muizen met behulp van ultrasnelle Doppler-echografie

Hier wordt een minimaal invasieve chirurgische ingreep getoond, waarbij de laser-Doppler-sonde op de schedel wordt geplaatst over het distale gebied van de middelste hersenslagader (MCA), een periorbitale locatie die geschikt is voor ratten en muizen, om de bloedstroom te beoordelen tijdens voorbijgaande MCA-occlusie.

Periorbitale plaatsing van een laserdoppler-sonde voor monitoring van de cerebrale bloedstroom voorafgaand aan occlusie van de middelste hersenslagader in knaagdiermodellen

Een laser-speckle contrast beeldvormingssysteem werd gebruikt om de veranderingen in de microvasculaire bloedstroom van de nier te monitoren tijdens unilaterale nierischemie-reperfusie na de resectie van de rechternier bij muizen.

Microvasculaire perfusie gemonitord met laserspeckle contrastbeeldvorming tijdens nierischemie - reperfusieschade bij muizen

Leer Laser Doppler perfusiebeeldvorming toe te passen voor het meten van bloedstroom in de muis achterpoot. Deze niet-invasieve techniek evalueert huidmicrocirculatie en ondersteunt onderzoek naar wondgenezing en perifeer arterieel lijden.

Laser Doppler Perfusion Imaging in de hindlimb van de muis

Meer video's verkennen