15 februari 2021
Dit protocol maakt gebruik van een immunofluorescentietest om PM2,5-geïnduceerdeDNA-schade in de ontlede harten van zebravisembryo's te detecteren.
Deze methode kan worden gebruikt om de expressie van doeleiwitten in het hart van de zebravis nauwkeurig en gemakkelijk te detecteren. De verandering in het doeleiwit wordt direct gedetecteerd door immunofluorescentie te meten. Voer het verzamelen en behandelen van zebravisembryo's uit, zoals beschreven in het tekstmanuscript.
Breng 72 uur na de bevruchting de embryo's over in glazen dia's en observeer ze onder een stereomicroscoop. Registreer hartmisvormingen, zoals pericardiaal oedeem, veranderde looping en verminderde grootte. Bereken misvormingspercentages en analyseer verschillen tussen groepen met behulp van ANOVA op één manier, gevolgd door de meervoudige vergelijkingstest van Turkije.
Na het verdoven van de embryo's met 0,6 milligram per milliliter MS222, registreert u hartslagen gedurende 30 seconden en kwantificeert u de hartslag met behulp van Image J-software. Ontleed harten van de embryo's van de zebravis zorgvuldig met een wegwerpspuitnaald onder een stereomicroscoop. Gebruik een hydrofobe barrièrepen om een cirkel te tekenen op een schone glazen dia.
Voeg 50 microliter 4% paraformaldehyde toe aan 1,25 microliter PBS om een fixatieve oplossing te maken, plaats vervolgens drie ontlede harten in één hydrofobe barrièrecirkel en incubeer gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur. Decanteer de oplossing onder de microscoop en droog de monsters gedurende ten minste vijf minuten bij kamertemperatuur. Was de dia's driemaal in PBST gedurende vijf minuten per wasbeurt.
Voeg 50 microliter BSA toe aan 1.000 microliter PBST om een 5% BSA-oplossing te verkrijgen en incubeer de dia's gedurende een uur in een vochtige kamer om niet-specifieke antilichaambinding te blokkeren. Decanteer de oplossing en was de monsters driemaal met PBS gedurende vijf minuten per wasbeurt. Verdun twee microliter monoklonaal antilichaam van muizen tegen 8-hydroxydeoxyguanosine en twee microliter konijnenpolyklonaal antilichaam tegen gamma-H2AX in 296 microliter PBST om een werkende primaire antilichaamcocktailoplossing te verkrijgen.
Incubeer de hartmonsters met 50 microliter van de primaire antilichaamcocktailoplossing in een bevochtigde kamer gedurende ten minste één uur bij kamertemperatuur of 's nachts bij vier graden Celsius. Decanteer de oplossing en was de monsters driemaal met PBST gedurende vijf minuten per wasbeurt. Verdun één microliter FITC-gelabeld geit anti-muis secundair antilichaam en één microliter psy-3 geiten anti-konijn secundair antilichaam in 500 microliter PBST om een werkende secundaire antilichaam cocktail oplossing te verkrijgen.
Incubeer de monsters met de secundaire antilichamen gedurende één uur bij kamertemperatuur in het donker. Decanteer de oplossing en was de monsters driemaal met PBS gedurende vijf minuten per wasbeurt. Voeg 20 microliter DAPI toe aan de monsters voor nucleaire kleuring en incubeer ze gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur.
Breng een afdekslip aan op de dia en sluit deze af met nagellak om uitdroging en beweging te voorkomen. Stel de monsters in beeld onder een fluorescentiemicroscoop en kwantificeer het fluorescerende signaal van het hartgebied met behulp van ImageJ-software. Bereken de relatieve veranderingen met behulp van het gemiddelde van de DMSO-controlemonsters en bepaal de statistische significantie van de gegevens.
Embryo's blootgesteld aan PM 2,5 in afwezigheid of aanwezigheid van de antioxidant, N-acetyl-L-cysteïne, of NAC, werden geëvalueerd op de aanwezigheid van hartmisvormingen. EOM vanaf PM 2,5 kostte een significante toename van cardiale teratogenese, zoals pericardoedeem, veranderde looping en verminderde grootte, in vergelijking met met DMSO-controle behandelde harten. De hartslag was ook significant verlaagd bij embryo's die werden blootgesteld aan EOM.
Toevoeging van NAC verzwakte EOM-geïnduceerde hartafwijkingen. Een immunofluorescentietest werd gebruikt om de mate van DNA-schade in met EOM behandelde weefsels te evalueren. De niveaus van 8-hydroxydeoxyguanosine en gamma-H2AX-expressie waren significant verhoogd in de harten van zebravisembryo's behandeld met EOM, wat wijst op een toename van oxidatieve DNA-schade en DNA-dubbelstrengsbreuken, respectievelijk.
De door EOM geïnduceerde DNA-schade werd gedeeltelijk tegengegaan door NAC-suppletie. Let bij het proberen van dit protocol op bij het wassen van de monsters met PBS, omdat het hart van de zebravis van de dia kan afbladderen.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol maakt gebruik van een immunofluorescentie-assay om PM 2.5-geïnduceerde DNA-schade aan te tonen in de gedissecteerde harten van zebravissenembryo's. De methode maakt een nauwkeurige detectie van de expressie van het doeleiwit in het hart van de zebravis mogelijk.
Dit immunofluorescentieprotocol maakt mechanische risicoreductie van milieutoxische stoffen mogelijk door DNA-schadebiomarkers te kwantificeren in de harten van zebravisembryo's, een voorspellend model voor ontwikkelingscardiotoxiciteit. De assay ondersteunt workflows voor targetvalidatie en fenotypische screening door PM2.5-blootstelling te koppelen aan oxidatieve stress en pathways van DNA-dubbelstrengsbreuken. Het levert translationele biomarkergegevens voor risicobeoordeling in vroege discovery-fasen, wat helpt bij de prioritering van chemische bibliotheken in de portfolio.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van target-validatie tot lead-identificatie en biedt mechanistische resultaten die het voorspellend vertrouwen in screeningscampagnes in een vroeg stadium ondersteunen.