11 februari 2021
Dit artikel beschrijft methoden voor weefselvoorbereiding, kleuring en analyse van hele fungiforme, circumvallaat- en gehemelte-smaakpapillen die consequent hele en intacte smaakpapillen opleveren (inclusief de zenuwvezels die ze innerveren) en de relaties tussen structuren in smaakpapillen en de omliggende papilla onderhouden.
Deze hele ontlekings- en analyseworkflow biedt een nieuwe benadering om de volledige morfologie van individuele smaakzenuwprieels, transducerende celtypenummers en de fysieke relaties tussen cellen te analyseren. Het verzamelen van het volledige linguale epitheel stelt ons in staat om het absolute aantal cellen en het volume van innervatie in de hele smaakpapillen te meten. Deze benadering is nauwkeuriger dan schattingen van de celstructuur op basis van bemonstering uit secties, wat de technische variabiliteit vermindert.
Dit is ook de eerste methode die gedetailleerde analyse biedt van de smaakpapillencellen in relatie tot hun innervatie. Deze methode kan het onderzoek naar de mogelijke circuits in de smaakpapillen verbeteren, evenals ziekteprocessen en chemotherapieën die de normale smaakfunctie verstoren. In de meeste van deze gevallen is het onduidelijk welke structuur of relatie is verstoord, dus als al die factoren intact blijven, kunnen alle analyses binnen één preparaat worden uitgevoerd.
De meest voorkomende fout is proberen te voorkomen dat het epitheel wordt beschadigd door niet dicht genoeg bij de onderkant van het epitheel te ontleden. Het is noodzakelijk om zoveel mogelijk onderliggend weefsel te verwijderen voordat u het weefsel in de weefselvorm bevriest. Het is ook belangrijk om ervoor te zorgen dat het epitheel plat in de bodem van de weefselvorm ligt.
Begin met het ontdooien en spoelen van de tong in 0,1 molaire fosfaatbuffer. Plaats vervolgens 1/2 van de voorste tong met daarin de fungiforme papillen op een glazen dia onder een ontleedmicroscoop. Gebruik een stompe tang en dissectieschaar om de spier te verwijderen en het weefsel open te houden terwijl het linguale epitheel gebogen is, waardoor een vlakke oriëntatie van weefsel wordt gegarandeerd door de messen van de grove dissectieschaar parallel aan het epitheel te houden.
Gooi het ventrale niet-verhoornde epitheel van de tong weg omdat het geen smaakpapillen bevat. Gebruik vervolgens een fijne dissectieschaar voor een nauwere dissectie aan de onderkant van het verhoornde epitheel. Gebruik een stompe tang om een stuk epitheel in een weefselvorm te leggen en ervoor te zorgen dat het plat ligt.
Voeg vervolgens een druppel optimale snijtemperatuurverbinding, of OCT, toe aan het weefsel. Plaats de weefselvorm op een eerder afgekoelde metalen basis onder de ontleedkijker en blijf vervolgens lichtjes met de tang op het weefsel tikken totdat de OCT is bevroren, zodat het weefsel zo plat mogelijk bevriest. Zodra de OCT is bevroren, voeg je snel extra OCT toe en plaats je de vorm in een bekerglas van gekoeld 2-methylbutaan tot het bevroren is.
Monteer de OCT-mal op de cryostaat en snijd deze in secties van 20 micron. Verzamel elke sectie en bekijk het onder de lichtmicroscoop om de nabijheid van de basis van het epitheel te beoordelen. Nadat het weefsel van de onderkant van het epitheel is geschoren, ontdooit u het epitheel en spoelt u het tweemaal in 0,1 kies PB op een shaker.
Snijd het harde gehemelte vooraan naar de kruising van het zachte en harde gehemelte, scheid vervolgens het zachte gehemelte van het onderliggende weefsel, zorg ervoor dat eventuele resterende botfragmenten worden weggesneden en verwijder extra spier- en bindweefsel. Houd het gehemelte vast met een stompe tang en verwijder de resterende klieren en verlies bindweefsel door ze voorzichtig te schrapen met een scheermesje. Hele smaakpapillen en alle smaakpapillen innervatie in Phox2b-Cre TdTomato muizen werden gelabeld door het linguale epitheel te kleuren met antilichamen voor DsRed en keratine acht.
Het volume van de smaakpapillen werd gemeten en toonde geen correlaties tussen smaakpapillenvolumes en innervatievolumes in de fungiforme of de circumvallaatmeetgebieden. De toediening van een lage dosis tamoxifen bij TrkB CreER TdTomato-muizen veroorzaakt genrecombinatie en de etikettering van een klein aantal neuronen. Een hele smaakpapillen gekleurd met smaaktransducerende celmarkers koolzuuranhydrase vier en fosfolipase C bèta twee wordt hier getoond.
Deze smaakpapillen hebben twee gelabelde terminale prieeltjes, die worden getoond met de smaakpapillen verwijderd na het reconstrueren van de vezels. Met behulp van op celpixels gebaseerde beeldvormingssoftware om de dichtstbijzijnde nabijheid tussen zenuwvezels en smaaktransducerende cellen te bepalen, bleek dat van de 19 smaaktransducerende cellen het blauwe terminale prieel zich binnen 200 nanometer van de lichtblauwe koolzuuranhydrase vier plus cel bevond. Het terminale prieel geassocieerd met de groene tracering wordt weergegeven in magenta en bevindt zich binnen 200 nanometer van zowel de licht- als donkerblauwe koolzuuranhydrase vier plus cellen.
Whole-mount keratine acht en 5-ethynyl-2'deoxyuridine of EdU kleuring van fungiform smaakpapillen onthulde dat EdU-gelabelde cellen zowel binnen als buiten de smaakpapillen aanwezig waren. De magenta en paarse kernen worden waargenomen buiten de keratine acht plus rand van de smaakpapillen. De gele, groenblauwe en blauwe cellen zaten in de smaakpapillen.
Bij het proberen van dit protocol zijn de weefseldissectie en bevriezingsstappen cruciaal. Deze weefseldissectiemethoden kunnen worden gevolgd door kleuring voor een verscheidenheid aan cellen en structuren om de relaties zowel binnen de smaakpapillen als buiten de smaakpapillen, maar binnen de papilla te analyseren. Dit is de eerste analyse van hele smaakprieeltjes in de smaakpapillen, evenals hun relaties met smaaktransducerende cellen.
Het bewaren en kleuren van verschillende van deze elementen in één preparaat vergroot zowel de analysemogelijkheden als verfijnt de metingen die mogelijk zijn.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel introduceert een nieuwe methode voor de whole-mount dissectie en analyse van smaakpapillen, specifiek fungiforme, circumvallate en palatinale smaakpapillen, waarbij hun structuren en innervaties behouden blijven. De techniek maakt nauwkeurige metingen van celgetallen en innervatievolumes mogelijk, wat ons begrip van de schakelingen van smaakpapillen en de effecten van ziekten op de smaakfunctie vergroot.
Whole-mount analyse van smaakpapillen maakt een nauwkeurige kwantificering van cellulaire en innervatieparameters mogelijk, waardoor de technische variabiliteit die inherent is aan coupes-gebaseerde benaderingen wordt verminderd. Deze methode ondersteunt mechanistische risicoreductie in de neurowetenschappen en sensorische biologie door de ruimtelijke relaties tussen transducerende cellen en zenuwvezels te behouden. Het biedt een reproduceerbaar platform voor het evalueren van de chemosensorische functie in ziektemodellen en studies naar therapeutische interventies.
De methode kan worden geïntegreerd in discovery biology-workflows door het mogelijk maken van hypothesetoetsing met betrekking tot mechanismen van smaaksensatie en neurale connectiviteit.