18 februari 2021
Dit artikel beschrijft een weefseltransplantatietechniek die is ontworpen om de signalerings- en patrooneigenschappen van basale voorhersenen tijdens craniofaciale ontwikkeling te testen.
Met deze methode kunnen onderzoekers weefselinteracties tussen de basale voorhersenen en het gezicht beoordelen. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het de basale voorhersenen isoleert voor beoordeling en besmetting met neurale topcellen voorkomt, wat de analyse zou verstoren. Het moeilijke deel van deze techniek is het verwijderen van de voorhersenen van de gastheer en vervanging door het donorweefsel.
Diane Hu, een onderzoekswetenschapper uit het laboratorium van Dr. Ralph Marcucio, zal de procedure demonstreren. Bereid om te beginnen DMEM-media voor met neutraal rood, een glazen transferpipet en geslepen wolfraam. Verwijder met behulp van een spuit van 10 milliliter en een naald van 18 gauge 0,5 milliliter albumine uit het puntige uiteinde van de eierschaal.
Maak een klein gaatje bovenop de schaal met behulp van de punt van een schaar. Plaats vervolgens een stuk tape over het gat en knip een cirkelvormige opening om het embryo bloot te leggen. Bevlek het embryo met neutraal rood.
Oogst weefseltransplantaten van de linkerkant van de basale voorhersenen van stadium zeven of acht embryo's. Gebruik gebogen geslepen wolfraamnaalden om voorzichtig een stuk van de voorhersenen in te snijden. Om het onderliggende endoderm niet op te nemen, schuift u de naald onder de voorhersenen en parallel aan de as van de neurale buis.
Pak het transplantaat op van het donorembryo met behulp van de glazen transferpipet en breng het gedurende twee minuten over in DMEM met neutraal rood om het te kleuren. Plaats vervolgens de gekleurde ent in DMEM die geen neutraal rood bevat totdat deze klaar is voor transplantatie. Incubeer bevruchte eieren van witte Leghorn-kip bij 37 graden Celsius in een bevochtigde kamer tot Hamburger-Hamilton fase zeven tot acht.
Stel embryo's bloot zoals eerder aangetoond. Bereid met behulp van geslepen wolfraamnaalden de transplantaatplaats voor door een stuk basale voorhersenen van 0,3 bij 0,2 millimeter te snijden en vervolgens te verwijderen om het transplantaat te accommoderen. Vermijd overmatige verstoring van het onderliggende endoderm, wat duidelijk zal zijn als dooierkorrels beginnen te lekken door elke scheur die wordt gemaakt.
Na het overbrengen van het transplantaat naar de gastheer, plaatst u het transplantaat om de uitgeroeide basale voorhersenen van de gastheer te vervangen. Plaats tape strak over het gat en breng de embryo's terug naar de 37 graden Celsius-couveuse totdat ze klaar zijn voor analyse. Aanvankelijk werden chimaera's gecreëerd door kwartelweefsels in kuikenembryo's te transplanteren.
Met behulp van het QCPN-antilichaam werden kwartelcellen gevisualiseerd en onderscheiden van de gastheerweefsels. Het kwartel-kuikensysteem bevestigde dat al het transplantaat alleen uit neuraal weefsel bestond en niet besmet was met andere celtypen. Transplantatie van kwartelweefsel in eendenembryo's leidde tot ernstig misvormde hersenschimmen als gevolg van een zich sneller ontwikkelend kwartelbrein.
Daarom werd transplantatie van eendenweefsels in kippenembryo's uitgevoerd. De resulterende eenden-kuiken chimaera's suggereren dat de hersenen deelnemen aan het reguleren van de morfologie. Whole mountain C2-hybridisatie werd gebruikt om Sonic-egelexpressie in chimaera's te beoordelen.
Net als bij morfologie leek de sonische egelexpressie aan de eendenzijde van de chimaera meer eendachtig. Het voorbereiden van de hostsite vergt oefening. Een groot aantal embryo's overleeft niet, dus het creëren van een groot aantal chimaera's kan helpen zorgen voor de juiste monsters voor analyse.
Deze methode maakte het mogelijk om te beoordelen hoe signalen uit de hersenen het Sonic hedgehog-expressiedomein in de frontonasale ectodermale zone vormen.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft een weefseltransplantatietechniek waarmee onderzoekers weefselinteracties tussen het basale voorbrein en het gezicht tijdens de craniofaciale ontwikkeling kunnen beoordelen. De methode isoleert het basale voorbrein voor analyse, waardoor contaminatie met neurale kamcellen wordt voorkomen.
Deze methode maakt een nauwkeurige beoordeling van weefselsignalering tijdens de craniofaciale ontwikkeling mogelijk door de basale voorhersenen te isoleren van storende bijdragen uit de neurale lijst. Het ondersteunt mechanistische risicoreductie bij doelwitvalidatie door te verduidelijken hoe signalen uit de hersenen morfogenetische paden reguleren, zoals Sonic hedgehog in de frontonasale ectodermale zone. De aanpak biedt een ziekterellevant systeem voor het evalueren van ontwikkelingspaden met voorspellend vertrouwen in de vroege ontdekkingsfase.
De methode past binnen workflows voor vroege ontdekking, waarbij assays voor weefselinteractie bijdragen aan de zekerheid over het target vóór de inspanningen voor lead-identificatie.