23 september 2021
Succesvolle kiembaantransformatie in de herfstlegerworm, Spodoptera frugiperda, werd bereikt met behulp van mRNA van hyperactief piggyBac transposase.
Dit protocol toont de productie van transgene Fall Armyworm met behulp van piggyBac-gebaseerd transformatiesysteem. We hopen dat deze methoden ten goede zullen komen aan een betere transformatie, niet alleen in de Fall Armyworm, maar ook in lepidoptera-insecten. De hier beschreven methode maakt de kiembaantransformatie van lepidopteran plaaginsecten efficiënt.
De procedure wordt gedemonstreerd door Dr. Xien Chen, een postdoctoraal fellow in mijn laboratorium. Begin met het plaatsen van 12 mannelijke poppen en 12 vrouwelijke poppen in een doos. Plaats een 10% sucrose-oplossing in de doos voor het voeden van volwassenen.
Bedek de doos met een papieren handdoek. Stel op dag twee na eclosie de volwassenen 's nachts bloot aan intens licht. Breng op dag drie na de eclosie de volwassenen over naar een donkere plaats.
Verzamel de embryo's binnen twee uur na overpositie. Voeg druppels water toe aan het stuk van de papieren handdoek met verse eieren die in een petrischaaltje op ijs worden bewaard. Breng de eieren voorzichtig over op een glazen schuif met een fijne borstel en lijn ze een voor een uit op een glazen dia.
Houd de glazen glijden met de eieren uitgelijnd op ijs voordat ze micro-injectie. Injecteer een mengsel van de 200 nanogram per microliter piggyBac-gebaseerde EGFP-tot expressie brengende plasmide, 200 nanogram per microliter hyperactief varkenBac transposase mRNA en steriel gedestilleerd water in de eieren met behulp van de compensatiedruk van de geautomatiseerde micro-injector. Houd de geïnjecteerde eieren op 27 plus of min één graad Celsius, 60 plus of min 10% relatieve vochtigheid totdat ze uitkomen.
Voed de uitgekomen larven op een kunstmatig dieet en breng elke larve over naar een klein kopje in het vroege wrongel- en sterstadium. Verzamel de poppen en plaats ongeveer 150 vrouwelijke en 150 mannelijke poppen in een kooi. Hang verschillende stukken keukenpapier van 30 centimeter bij 15 centimeter groot in de kooi om de eieren te verzamelen.
Verzamel de papieren handdoeken met eieren dagelijks en bewaar de eieren in de juiste omstandigheden totdat ze uitkomen. Houd de pasgeboren larven vijf minuten op vier graden Celsius om ze te immobiliseren en breng ze vervolgens over op een ijskoude plaat. Screen de geïmmobiliseerde pasgeboren larven onder een fluorescentie stereomicroscoop.
Selecteer de EGFP-positieve pasgeborenen, til ze op naar het popstadium, in ongeveer twee weken bij 27 plus of min één graad Celsius. Het hyperactieve piggyBac transposase mRNA dat in vitro werd gesynthetiseerd, werd gedetecteerd met behulp van een 1%Agarose-gel. De PDS-geïnjecteerde embryo's vertoonden geen EGFP-signaal, terwijl de EGFP-tot expressie brengende plasmide en hyperactieve piggyBac transposase mRNA-geïnjecteerde embryo's EGP-fluorescentie vertoonden, wat aangeeft dat de piggyBac-constructie succesvol was.
De G1-larven verkregen uit eieren die het resultaat waren van een zelfkruising van G0-volwassenen vertoonden een sterk EGFP-signaal. Een fragment met de promotor en het EGFP-fragment werd met succes versterkt met behulp van het genomische DNA geïsoleerd uit de EGFP-positieve larven als sjabloon. Hetzelfde fragment werd echter niet gedetecteerd toen genomisch DNA werd geïsoleerd uit de larven van het wilde type als de sjabloon.
De eieren voor micro-injectie moeten zo vers mogelijk zijn en moeten altijd op ijs worden gehouden voordat ze micro-injecties maken om hun ontwikkeling te vertragen. Deze techniek maakt de weg vrij voor onderzoekers om vragen te beantwoorden in de functionele genomica van plaaginsecten en genetische bestrijdingsmethoden voor deze wereldwijde plaag te ontwikkelen.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie demonstreert een protocol voor succesvolle kiembaantransformatie bij de herfstlegerrups, Spodoptera frugiperda, gebruikmakend van een piggyBac-gebaseerd transformatiesysteem. De methode belooft een verbeterde transformatie-efficiëntie bij lepidoptera-plagen en bevordert functioneel genomisch onderzoek bij deze organismen.
Het tot stand brengen van efficiënte kiembaan-transformatie bij landbouwpestinsecten zoals de herfstlegger maakt functionele genomica mogelijk voor doelwitvalidatie en het mechanistisch verminderen van risico's in pijplijnen voor plaagbestrijding. Dit protocol ondersteunt vroege ontdekking door een schaalbaar systeem te bieden om genfuncties te onderzoeken en fenotypische uitkomsten te beoordelen in een ziekte-relevant insectmodel. Succesvolle transgenese faciliteert stroomafwaartse screening en de ontdekking van biomarkers voor genetische strategieën voor plaagbestrijding.
De methode integreert in vroege discovery-workflows door targetvalidatie via transgenese mogelijk te maken, lead-identificatie via fenotypische screening te ondersteunen en preklinische beslissingen te informeren via stabiele genetische modellen.