15 juli 2021
Het geïsoleerde konijnenlongpreparaat is een gouden standaardinstrument in longonderzoek. Deze publicatie heeft tot doel de techniek te beschrijven zoals ontwikkeld voor de studie van fysiologische en pathologische mechanismen die betrokken zijn bij luchtwegreactiviteit, longbehoud en preklinisch onderzoek bij longtransplantatie en longoedeem.
Deze techniek is nuttig bij de karakterisering van longfysiologie en pathologie door metabole activiteiten en ademhalingsfunctie te meten. Geïsoleerd longperfusiesysteem maakt het mogelijk om te werken met een compleet functioneel orgaan dat de studie van een continue fysiologische functie mogelijk maakt terwijl ventilatie en perfusie worden gerecreëerd. Deze methode zou inzicht kunnen geven in de karakterisering van de niet-respiratoire mogelijkheden van de longweefsels, zoals metabole activiteit en de activiteiten van verschillende componenten zoals alveolaire macrofaag en endotheelweefsel.
Om te beginnen, monteer het werkapparaat en zorg ervoor dat het de belangrijkste stalen kolom bevat die is gemonteerd op een basisplaat die de kunstmatige thorax vasthoudt met de pneumotachometer en gewichtsopnemer boven de kolom en achter de voorverwarmingsspiraal met een bellenvanger. Sluit alle transducers aan op de centrale elektronica-eenheid en bereid het ventilatiesysteem naast het apparaat voor. Na het scheren van de chirurgische plaats van het verdoofde konijn, maakt u een ventrale mediane lijnincisie van drie tot vijf centimeter van het borstbeenmanubrium tot aan de nek.
Gebruik de bedieningsschaar om de voorste 2/3 van de luchtpijp tussen de kraakbeenringen te knippen. Steek een vijf millimeter tracheale canule door het tracheale vezelige membraan en fixeer de canule voorzichtig met een 4-0 zijden hechtdraad. Plaats de tang of pincet onder de luchtpijp om ervoor te zorgen dat de canule niet tegen de luchtpijp buigt.
Sluit de ademhalingspomp aan op de tracheale canule, stel het getijdenvolume in op 10 milliliter per kilogram en start de beademing snel na de tracheotomie en voordat de thorax wordt geopend om de positieve druk in de longen te behouden om longinstorting tijdens de operatie te voorkomen. Om toegang te krijgen tot de thoracale holte, gebruikt u een scalpel of schaar om de thoraxwand te openen en voert u een mediale sternotomie uit tot aan het bovenste derde deel van de thorax. Houd de thoraxhelften open met twee retractors.
Lokaliseer de superieure en inferieure vena cava en tag ze met draden. Vóór de exsanguinatie van het dier, identificeert u de juiste ventrikel en injecteert u 1.000 internationale eenheden per kilogram heparine. Onmiddellijk na de injectie ligaat u de superieure en inferieure vena cava met de voorgeluste draad.
Snijd door het manubrium sterni om de mediale sternotomie uit te breiden naar de tracheale canule, waardoor de luchtpijp aan beide zijden vrijkomt van verbindingsweefsel. Reseceer nu de luchtpijp boven de tracheale canule en trek de canule voorzichtig omhoog in een craniale / caudale as. Na exsanguinatie voor het oogsten van het cardiopulmonale blok, gebruik directe digitale dissectie of lenteschaar om het bindweefsel te scheiden en de longen van de thorax te verwijderen.
Ontleed vervolgens de vasculatuur en de slokdarm. Til de geïsoleerde longen uit de thorax en plaats de longen voorzichtig over een steriel gaasje op een petrischaaltje. Om atelectase te voorkomen, ventileer de longen met behulp van positieve drukventilatie met positieve eind expiratoire druk ingesteld op twee centimeter waterkolom.
Snijd de ventrikels van het hart af ter hoogte van de atrioventriculaire groef. Na het openen van de twee ventrikels, introduceert u de longslagadercanule via de rechter longslagader en de linker atriumcanule via de mitralisklep in het linkeratrium. Fixeer de canule met een 4-0 zijden hechting inclusief de omliggende weefsels in de ligaturen van de longslagader en het linker atrium om structurele uitzetting te voorkomen.
Injecteer 250 milliliter zoutoplossing door de arteriële canule om het resterende bloed uit het vaatbed te spoelen. Voor de perfusie-instelling plaatst u de geïsoleerde longen zorgvuldig in de longkamer. Bevestig de luchtpijp aan de transductor op het kamerdeksel en sluit de gecannuleerde vaten aan op het perfusiesysteem, sluit en bevestig vervolgens de kamer met het roterende slot.
Bevestig vervolgens het kamerdeksel en schakel over de stopkraan om van positieve naar negatieve drukventilatie te schakelen. Perfundeer de longen met 200 milliliter kunstmatig bloedvrij perfusaat, beginnend met de stroom bij drie milliliter per minuut per kilogram, en voer vervolgens langzaam de stroom op gedurende vijf minuten tot vijf milliliter per minuut per kilogram. En laat de stroom de volgende vijf minuten acht milliliter per minuut per kilogram bereiken, gevolgd door een maximale flux van 10 milliliter per minuut per kilogram gedurende vijf minuten.
Ventileer de longen met bevochtigde lucht met een frequentie van 30 slagen per minuut, een getijdenvolume van 10 milliliter per kilogram en een einddruk van twee centimeter waterkolom. Om zone drie-omstandigheden te bereiken, wacht u 10 tot 15 minuten om een evenwicht te verkrijgen dat wordt gekenmerkt door een ISO gravimetrische toestand, zodat de veneuze druk stabiel is in het hele register. Zorg ervoor dat het gewicht van de long constant blijft en de arteriële en linker atriale druk stabiel is om zone drie-omstandigheden te bereiken om een maximaal aantal longvaten te openen en de microvasculaire bedinhoud tijdens het experiment te behouden.
Zorg er voor de elektronische besturing en signaalverwerking voor dat onder andere de ademhalingsstroom, gewichtsveranderingen, microvasculaire druk, getijdenvolume, vasculaire weerstand worden geregistreerd op een meervoudige centrale elektronica-eenheid die signalen van de transducers integreert en weergeeft op het evaluatiesysteem. De concentratie van 5-HT en monoamineoxidase die betrokken zijn bij het longmetabolisme en de vasculaire permeabiliteit werden beoordeeld. De concentratie van 5-HT en monoamineoxidase piekte na 15 minuten conservering en daalde vervolgens gedurende de volgende zes uur.
Daarna vertoonden de perfusieniveaus een niet-statistisch significante toename tot 24 uur. De afgiftesnelheden van 5-HT en monoamineoxidase gaven aan dat tijdens het eerste uur van de conservering de 5-HT-niveaus hoger stegen dan monoamineoxidase en binnen zes uur na herovering door endotheelcellen en bloedplaatjes afnamen, evenals monoamineoxidase-gemedieerd katabolisme. De neutrale endopeptidase-activiteit nam toe na negen uur en nam vervolgens af en bleef stabiel gedurende 12 tot 24 uur.
Angiotensine-converterende enzymactiviteit nam na vier uur af, nam vervolgens toe en bleef stabiel gedurende de tijd tot 24 uur. Het effect van longconservering in capillaire permeabiliteit werd gedurende 24 uur beoordeeld, wat aangeeft dat de geperfuseerde long een progressieve toename van de capillaire filtratiecoëfficiënt leed. Het effect van verschillende additieven in de capillaire permeabiliteit van het geïsoleerde longperfusiesysteem onder verschillende omstandigheden werd gecontroleerd en een maximale toename van de permeabiliteit werd waargenomen met atropine.
De belangrijkste manoeuvre is om de longen correct in een longkamer te plaatsen en de gecannuleerde bloedvaten aan te sluiten op het perfusiesysteem. De implicaties van deze techniek strekken zich uit tot interacties tussen circulerende stoffen en de effecten van geïnhaleerde of geperfuseerde stoffen zoals bij het testen van geneesmiddelen en verschillende longpathologieën.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
De geïsoleerde longpreparatie van konijnen is een cruciaal instrument in het pulmonaal onderzoek, waarmee fysiologische en pathologische mechanismen bestudeerd kunnen worden. Deze techniek faciliteert de karakterisering van de pulmonale fysiologie en pathologie door middel van de meting van metabole activiteiten en de respiratoire functie.
Het systeem voor geïsoleerde longperfusie maakt een directe beoordeling mogelijk van pulmonale reacties op farmacologische verbindingen in een fysiologisch relevant ex vivo model. Deze aanpak ondersteunt targetvalidatie en mechanistische risicoreductie door metabole activiteiten, vasculaire permeabiliteit en respiratoire functie te meten in een compleet orgaansysteem. Het biedt voorspellende betrouwbaarheid voor lead-identificatie bij de ontwikkeling van respiratoire geneesmiddelen door longfysiologie die relevant is voor mensen te simuleren zonder de variabiliteit van het gehele dier.
Het systeem voor geïsoleerde longperfusie past binnen het ontdekkingscontinuüm van targetvalidatie tot preklinische beoordeling, waardoor iteratieve verfijning van pulmonale drugkandidaten mogelijk wordt op basis van functionele read-outs op orgaanniveau.