14 oktober 2021
Een methode voor de extractie van cofactor F420 uit zuivere culturen werd geoptimaliseerd voor de vloeistofchromatografische scheiding en analyse van F420-staartlengte in zuivere cultuur- en omgevingsmonsters.
De cofactor F420 speelt een belangrijke rol in het primaire en secundaire metabolisme van veel prokaryoten. Het meten van dit molecuul in omgevingsmonsters maakt een dieper inzicht in de prevalentie en functie ervan mogelijk. Deze techniek maakt de analyse van de cofactor in moeilijke monstermaterialen zoals slib en bodem mogelijk.
Daarbij staan de lysis van het materiaal en de voorzuivering voor analyse centraal. Het protocol bevat verschillende stappen tijdens de monstervoorbereiding. Deze stappen moeten zeer goed worden gepland en voorbereid voordat met de monsterverwerking wordt begonnen.
Zo is het klaarmaken van verse buffers belangrijk. Om de lysis van het monster te beginnen, plaatst u vijf gram van het monster in een conische buis van 50 milliliter. Voeg vervolgens vijf milliliter 2X lysisbuffer toe aan de monsters en breng het volume op 10 milliliter met gedestilleerd water om een uiteindelijke concentratie van 0,5 gram per milliliter te bereiken.
Vortex de verdunde monsters gedurende 20 seconden gevolgd door autoclaveren gedurende 30 minuten bij 121 graden Celsius. Breng voor droge monsters zoals bosgrond na het autoclaveren tot een eindvolume van 20 milliliter met gedestilleerd water en vortex het verdunde monster opnieuw gedurende 20 seconden zoals aangetoond. Zodra de monsters zijn afgekoeld, centrifugeert u het monster gedurende vijf minuten bij 11.000 x g en verzamelt u het supernatant.
Bereid een vijf milliliter vastefase-extractie of SPE-kolom gevuld met 100 milligram zwak anion gemengd polymeersorberend conditionering van de anionenwisselaar met drie milliliter methanol. Breng vervolgens de anionenwisselaar in evenwicht met drie milliliter gedestilleerd water. Laad tot negen milliliter van het supernatant van het gecentrifugeerde lysaat op de SPE-kolom.
Was de onzuiverheden achtereenvolgens uit de kolom met vijf milliliter 25 millimolair ammoniakacetaat en vijf milliliter methanol. Eluteer na het wassen de cofactor F420 met één milliliter elutiebuffer. Stel de oven in op 40 graden Celsius en stel de fluorescentiedetector in op 420 nanometer extinctiegolflengte en 470 nanometer emissiegolflengte.
Filter vervolgens het geëlueerde monster van de SPE in HPLC-injectieflacons met behulp van een PTFE-filter met een poriegrootte van 0,22 micron. Injecteer 50 microliter van het gefilterde monster in het HPLC-systeem en scheid cofactor F420 via gradiëntmodus met behulp van een combinatie van mobiele fasen zoals beschreven in het manuscript. Analyseer de samenstelling en concentratie van de cofactor F420.
De groei van zuivere culturen van methanogenen werd geverifieerd door microscopie. In fasecontrastmicroscopie zijn agglomeraten van methanogenen zichtbaar, die een blauwachtig licht uitzenden wanneer cofactor F420 wordt geëxciteerd met ultraviolet licht. Het piekgebied van de teruggevonden cofactor F420 na SPE met verschillende volumes van de Methanoculleus thermophilus culturen werd geanalyseerd.
De autoclaverende desintegratiestrategie bereikte het hoogste piekgebied en concludeerde maximale extractie-efficiëntie met behulp van een druk-temperatuurbehandeling. Analyse van de staartlengteverdeling bracht de verschillen aan het licht in de totale concentratie van cofactor F420 en de verdeling van de F420-staartlengte van de zuivere methanogene culturen in milieumonsters. Houd er bij het toepassen van deze procedure rekening mee dat u het totale volume van de elutiebuffer volledig kunt verzamelen of het exacte volume van de doorstroom moet registreren.
Deze techniek maakt de weg vrij voor de exploratie van cofactor F420 in complexere monsters zoals bodems en slib en maakt dieper inzicht in de ecologische impact van dit molecuul mogelijk.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een geoptimaliseerde methode voor de extractie en analyse van cofactor F420 uit zuivere culturen en milieu-monsters. De techniek richt zich op de vloeistofchromatografische scheiding van de staartlengte van F420, wat essentieel is voor het begrijpen van de rol hiervan in het prokaryote metabolisme.
Het analyseren van de profielen van de staartlengte van cofactor F420 maakt het mogelijk om methanogene paden in complexe omgevingen te differentiëren, wat bijdraagt aan targetvalidatie bij de ontwikkeling van anaerobe bioprocessen. Deze methode biedt mechanische risicovermindering door de expressie van F420 te koppelen aan de metabole activiteit in zuivere culturen en milieu-monsters, wat nuttige informatie verschaft voor stamselectie en procesoptimalisatie. De benadering biedt voorspellende zekerheid voor het screenen van microbiële gemeenschappen in bioreactor- en bodemapplicaties zonder afhankelijk te zijn van genetische hulpmiddelen.
Plaatst de methode binnen het ontdekkingscontinuüm, van vroege ontdekking via lead-identificatie tot preklinisch onderzoek, ter ondersteuning van hypothese-testen en pathway-verduidelijking in anaerobe systemen.