3 november 2023
Dit artikel is bedoeld om onderzoekers een gedetailleerde en toegankelijke gids te bieden voor het opzetten van een model van hemorragische shock bij baby's.
Hemorragische shock is de belangrijkste doodsoorzaak bij kinderen in de ontwikkelde wereld. Deze studie biedt de mogelijkheid om de respons op verschillende therapieën voor hemorragische shock te vergelijken. Dit is een eenvoudig en zeer reproduceerbaar model dat het mogelijk maakt om mechanismen te activeren als reactie op ernstige bloedingen bij een onvolwassen proefpersoon.
In dit protocol is de vertaling van de resultaten hoog, en met hulp om de keuze van vloeistoffen en rust voor reanimatie beter te identificeren in termen van een lager nadelig effect. Dit model maakt het mogelijk om het effect van verschillende reanimatievloeistoffen en vasoactieve geneesmiddelen in verschillende systemen te bestuderen, zoals microcirculatie, coagulatie, endotheel en glycocalyx. Begin met het plaatsen van het verdoofde dier op een operatietafel met een verwarmende deken.
Meet vervolgens de perifere zuurstofverzadiging met een sensor die op het oor van het varken is geklemd. Start continue elektrocardiografische monitoring met drie afleidingen. Breng een perifere aderkatheter in de oorader in en desinfecteer de huid vooraf met ten minste drie afwisselende rondes: povidonjodium of chloorhexidine, scrub en alcohol.
Plaats het dier vervolgens in de dorsale ligpositie en start onmiddellijk de ventilatie van het handtasmasker met een hondenmasker. Om de endotracheale intubatieprocedure te starten, moet u ervoor zorgen dat de benodigde apparatuur en chirurgische instrumenten zijn gesteriliseerd en klaar voor gebruik. Trek de tong iets naar buiten en houd de kaak open met behulp van een bindgaas dat achter de bovenste en onderste hoektanden is geplaatst.
Breng de laryngoscoop in. En zodra de epiglottis zichtbaar is, drukt u deze met de punt van de laryngoscoop omhoog in de richting van de tong. Zodra de stembanden zichtbaar zijn, duwt u de buis voorzichtig met lichte rotatie in de luchtpijp.
Verwijder de stilet en gebruik een spuit van vijf milliliter om de manchet op te blazen. Om de juiste plaatsing van de endotracheale tube te garanderen, moet u de symmetrische stijging van de borstkas, voldoende zuurstofverzadiging tussen 95 en 100% en een juiste golfvorm en eindgetijde-kooldioxidemeting in acht nemen. Zodra de intubatie is bevestigd, start u mechanische beademing met een ademhalingsfrequentie van 20 ademhalingen per minuut.
Titelvolume van acht milliliter per kilogram, fractie ingeademde zuurstof van 40% en positieve einduitademingsdruk van vier centimeter water. Pas de ventilatie aan om een partiële druk van kooldioxide tussen 35 en 45 millimeter kwik te bereiken. Handhaaf diepe anesthesie tijdens het experiment via continue infusie van fentanyl, propofol en atracurium.
Om het dijbeengebied voor te bereiden op vaatkatheterisatie, desinfecteert u het liesgebied met ten minste drie afwisselende rondes povidonjodium of chloorhexidinescrub en alcohol. Beoordeel vervolgens de dijbeenvaten met echografie en gebruik de Doppler-techniek om onderscheid te maken tussen de slagader en de ader. Onder continu echografisch beeld en met behulp van de Seldinger-techniek, brengt u een Franse centraal veneuze katheternaald van 5,5 tot 7,5 in een van de dijbeenaders in.
Prik vervolgens de ader door en verkrijg het bloed. Trek de spuit terug en steek de voerdraad in de naald. Wanneer de voerdraad op zijn plaats in de ader zit, verwijdert u de voerdraad en brengt u de katheter in totdat u de ader bereikt.
Sluit onmiddellijk na het plaatsen van de katheter aan op het transducersysteem om de centrale veneuze druk te meten. Zorg er vervolgens voor dat een elektrolyt met een glucose-infusiesnelheid van 20 milliliter per uur is aangesloten op een van de centrale lijnpoorten. En vervolgens wordt via de resterende poort een onderhoudszoutoplossing toegediend om de occlusie van de katheter te voorkomen.
Steek vervolgens een 4-Franse arteriële katheternaald in de dijbeenslagader. Breng vervolgens de voerdraad onder ultrasone begeleiding in en breng vervolgens de katheter in. Zodra de arteriële katheter is ingebracht, sluit u de arteriële draad van het cardiale outputmonitorsysteem en de arteriële transducer rechtstreeks aan op de monitorpoort.
Sluit tegelijkertijd de veneuze meeteenheid van de monitor aan op de centrale veneuze transducer. Desinfecteer vervolgens het nekgebied met ten minste drie afwisselende rondes povidonjodium of chloorhexidinescrub en alcohol. Maak een paratracheale incisie van 10 centimeter links, waarbij een lijn tussen het manubrium en de hoek van de kaak wordt doorsneden.
Om de uitwendige halsader bloot te leggen, ontleedt u het laterale weefsel van de sternocleidomastoïde spier en isoleert u de ader van de omliggende fascia. Gebruik vervolgens twee niet-resorbeerbare zijden hechtingen die rond de ader zijn gelust om het vat voorafgaand aan de punctie te fixeren. Snijd de ader in met een venflonnaald van 18 gauge.
Eenmaal in de ader, trekt u de naald terug en steekt u de voerdraad door de venflonbuis. Verwijder de venflonbuis en steek de huls met de 5-French introducer over de draad. Zodra de huls is geplaatst, verwijdert u zowel de introducer als de draad.
Spoel de hulzen onmiddellijk na het inbrengen met 0,9% natriumchloride om trombusvorming te voorkomen. Bind vervolgens de proximale zijden hechting rond de schede om deze op zijn plaats te houden. Bevestig vervolgens het handvat van de schede aan de sternocleidomastoïde spier en sluit de huid met nietjes.
Om de cardiale indexwaarden te verkrijgen, dient u vijf milliliter bolussen van 0,9% normale zoutoplossing via de centraal veneuze katheter toe te dienen. Noteer ten slotte het gemiddelde van twee opeenvolgende metingen. Zodra een stabiele toestand is bereikt na instrumentatie en het verzamelen van basisgegevens, induceert u een hypovolemische shock door gedurende 30 minuten 30 milliliter per kilogram bloed uit de halsader te halen.
Wacht 30 minuten voor stabilisatie en doe gedurende deze periode geen reanimatiepogingen om de vertraging bij de aankomst van medische noodteams na te bootsen. Dit model toonde aan dat een gecontroleerde bloeding merkbare veranderingen in hemodynamische parameters en in hersen- en weefselperfusie veroorzaakte. Na het terugtrekken van het volume werden significante tachycardie en een afname van de gemiddelde arteriële bloeddruk, de cardiale index, de slagvolume-index, de bloedvolumeparameters en de arteriële bloedstroom van de halsslagader waargenomen, terwijl de systemische vasculaire weerstandsindex toenam.
De infusie van albumine plus hypertone zoutoplossing produceerde een grotere en langere volume-uitbreiding dan normale of hypertone zoutoplossing alleen, met significante verschillen in hartslag, slagvolume-index en drukpulsvariatie. De vloeistofinfusie toonde ook de afwezigheid van een progressieve daling na volume-uitbreiding van de bloeddruk en de globale diastolische volume-index. De systemische perfusieparameters toonden een toename van de lactaatconcentratie, terwijl de centrale veneuze verzadiging, de oxygenatie-index van de huid en het cerebrale weefsel daalden.
Het hypertone albumine verbeterde de perfusieparameters met een toename van de bloedstroom in de halsslagader en de oxygenatie-index van het hersenweefsel, en een significante afname van de lactaatspiegels. Handhaaf tijdens het experiment diepe anesthesie om een stabiele toestand te bereiken vóór de inductie van de schok, inclusief lichaamstemperatuur en om een constant ritme aan te houden tijdens bloedafname. Het registreren en verder analyseren van de sublinguale microcirculatie is zeer interessant om het verschil tussen macro- en microcirculatie te bestuderen.
Aan de andere kant zijn deze schoolse tests om de stolling te beoordelen nuttig om de stoornis te analyseren die wordt veroorzaakt door hemodilutie na volume-expansie.
Dit artikel biedt onderzoekers een gedetailleerde handleiding voor het opzetten van een model voor hemorragische shock bij biggetjes. Dit model is ontworpen om de effecten van verschillende reanimatievloeistoffen en therapieën in een gecontroleerde omgeving te bestuderen.
Het vestigen van een reproduceerbaar model van volumegestuurde hemorragische shock bij biggen vult een kritische leemte in het translationele pediatrische onderzoek, waardoor systematische evaluatie van reanimatiestrategieën mogelijk wordt op gebieden waar klinische studies beperkt zijn. Dit model ondersteunt het voorspellende vertrouwen bij de selectie van therapieën en informeert de risico-gecorrigeerde ontwikkeling van vloeistof- en geneesmiddeleninterventies voor pediatrische shock. De kwantitatieve resultaten vergemakkelijken vergelijkingen tussen studies en portfolio's, wat de besluitvorming in de vroege stadia van biofarmaceutische R&D versterkt.
Dit model is geïntegreerd in het continuüm van ontdekking tot prekliniek, waardoor hypothesetesten, targetvalidatie en vergelijkende analyses voor interventies bij pediatrische hemorragische shock mogelijk worden.