10 mei 2024
We presenteren een protocol dat recombinasepolymeraseamplificatie combineert met een CRISPR/Cas12a-systeem voor sporendetectie van DNA-virussen en draagbare smartphonemicroscopie bouwt met een door kunstmatige intelligentie ondersteunde classificatie voor point-of-care DNA-virusdetectie.
Ons protocol introduceert een snel en zeer gevoelig detectiesysteem voor kikkervirus 3. Het is veelbetekenend dat deze methode point-of-care detectie van DNA-virussen mogelijk maakt, wat een cruciale rol speelt bij het voorkomen van het optreden van pandemische ziekten. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ligt in de integratie van RPA met het CRISPR/Cas12a-systeem, aangevuld met een draagbare smartphone-gebaseerde microscoop en AI-classificatie.
Deze integratie verbetert de efficiëntie en nauwkeurigheid van de detectie aanzienlijk, terwijl tegelijkertijd fouten die worden toegeschreven aan menselijke factoren worden verminderd. Voeg om te beginnen de vier belangrijkste RPA-enzymen toe aan de reactiebuffer. Voeg vervolgens de vooraf ontworpen primers toe aan het mengsel.
Draai het mengsel grondig. Voeg een microliter van het doel-DNA verkregen van kikkervirus 3 toe aan elke RPA-reactie en vortex om goed te mengen. Pipetteer vervolgens zeven microliter 100 millimolair magnesiumchloride om de reactie op gang te brengen.
Incubeer het mengsel gedurende 30 minuten bij 37 graden Celsius om de test te voltooien. Bereid het Lachnospiraceae-bacterie CAS12a-eiwit voor met CRISPR-RNA om functionele complexen te vormen. Meng het bacterieel eiwit en 10 X CRISPR/Cas12a reactiebuffer.
Voeg nu 500 nanomolaire enkelstrengs DNA-reportersonde toe. Voeg een microliter RPA-reactieproduct toe aan het CRISPR/Cas12a CRISPR RNA-reactiemengsel. Incubeer het mengsel 30 minuten bij 37 graden Celsius.
Meet de fluorescerende signalen met een microplaatlezer. Voor detectie met een smartphonemicroscoop pipetteert u eerst het bereide reactiemengsel op een teruggetrokken objectglaasje. Dek het vervolgens af met een dekglaasje voor incubatie.
Plaats het objectglaasje op de tafel van de smartphonemicroscoop en pas de brandpuntsafstand en helderheid aan. Maak een afbeelding om de fluorescerende signalen te meten. Gebruik ImageJ om de gemiddelde grijswaarde van elke afbeelding en de standaarddeviatie van de gemiddelde grijswaarde in een concentratiegroep te meten.
Gebruik het deep learning-model AlexNet 33 voor classificatie. Gebruik nu Python om de invoerafbeeldingen opnieuw vorm te geven naar 224 bij 224 door drie kanalen. Gebruik ten slotte een vooraf getraind backbone-netwerk met ImageNet-gegevensset om afbeeldingskenmerken te extraheren.
Het zesde paar primers zorgde voor de maximale versterkingsefficiëntie en werd geselecteerd. CRISPR RNA-3 bleek het meest efficiënt te zijn voor collaterale splitsing. Het gebruik van een ontwikkeld detectiesysteem met geselecteerde RPA-primers en CRISPR-RNA resulteerde in significante verschillen tussen 10 aM FV3 en controle.
Het belangrijkste punt om te onthouden is de specifieke CAS 12a-detectiestap. Het CRISPR-RNA van de reactie kan worden gewijzigd of opnieuw worden ontworpen om andere DNA-virussen aan te pakken op basis van CAS 12a-detectie. De voorgestelde methode kan helpen bij de voorlopige beoordeling van de hoeveelheid van het doelvirus.
Op basis hiervan kunnen andere methoden zoals qPCR worden gebruikt om een nauwkeurigere virale lading te verkrijgen. Deze techniek biedt een eerste poging tot draagbare detectie van DNA-virussen. Wat betreft het kikkervirus 3 dat in dit protocol wordt gebruikt, kan tijdige detectie leiden tot effectieve beschermende maatregelen, waardoor verliezen in de fokindustrie worden verminderd.
Deze studie presenteert een snel en gevoelig detectiesysteem voor frog virus 3, waarbij de nadruk ligt op de integratie van recombinase polymerase amplification (RPA) met het CRISPR/Cas12a-systeem om point-of-care detectie van DNA-virussen mogelijk te maken. Deze innovatieve methode is erop gericht de nauwkeurigheid en efficiëntie van de detectie te verbeteren, wat cruciaal is voor het voorkomen van potentiële pandemische uitbraken.
Snelle, draagbare systemen voor de detectie van DNA-virussen zijn essentieel voor vroegtijdige interventie en indamming, zowel in onderzoek als in toegepaste biofarmaceutische omgevingen. De integratie van RPA-CRISPR/Cas12a met smartphone-gebaseerde microscopie en deep learning maakt gevoelige, sequentie-specifieke detectie mogelijk op de locatie van zorg (point-of-care), waardoor de afhankelijkheid van centrale laboratoria wordt verminderd. Deze benadering ondersteunt versnelde besluitvorming en risicobeperking in discovery- en translationele pipelines.
Dit systeem slaat een brug tussen vroege ontdekking, assay-ontwikkeling en translationeel onderzoek door een draagbaar, kwantitatief detectieplatform te bieden dat aanpasbaar is aan meerdere DNA-virussen.