Name: Schaalbare transfectie van maïs mesophyl protoplasten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-06-23T12:10:00.000+00:00
Duration: 8 min 38 s
Description: Leer een schaalbaar transfectieprotocol voor maïs mesofylprotoplasten met PEG. Deze methode transformeert miljoenen cellen met 20-50% efficiëntie voor plantenbiotechnologie en synthetische biologie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door het National Human Genome Research Institute Interdisciplinary Training in Genomic Sciences (T32 training grant no. HG000035 to J.T.) en het National Institute of Health (NIGMS 1R35GM139532 to C.Q.) en door de National Science Foundation (RESEARCH-PGR IOS-1748843 en PlantSynBio 2240888 to CQ). We bedanken Andrea Gallovatti van Rutgers University voor de gift van de maïszaden.

1. Groei van het plantmateriaal
<ol><li>Spoel de maïskorrels twee keer af met leidingwater. Week de pitten een nacht in leidingwater op kamertemperatuur.</li>
	<li>Vul de volgende dag een startbak met 72 cellen met bevochtigd 1:1 vermiculiet:veenmos. Spoel de pitten een keer af en plant ze met de dop naar beneden, één pit per cel.</li>
	<li>Kweek onder langdurige dagomstandigheden (16 uur licht, 8 uur donker) bij 25 °C gedurende 3 dagen.</li>
	<li>Overbrengen naar constante duisternis bij 25 °C en 9-11 dagen groeien.</li>
</ol>2. Plasmide isolatie
<ol><li>Transformeer commercieel chemisch competente E. coli met de plasmide (en) van belang volgens de instructies van de fabrikant.</li>
	<li>Kweek de getransformeerde E. coli in 50 ml vloeibaar LB-medium met geschikte antibiotica gedurende een nacht bij 37 °C met schudden.</li>
	<li>Pelleteer de E. coli door gedurende 10 minuten te centrifugeren bij 3.000 x g bij kamertemperatuur. Extraheer de plasmiden met behulp van een in de handel verkrijgbare midiprep plasmide DNA-isolatiekit.</li>
	<li>Schat de plasmide-DNA-concentratie met behulp van een microvolumespectrofotometer. OPMERKING: Materiaal dat geschikt is voor transfectie moet een concentratie hebben van ≥800 ng/μL en een A260/A280 van ≥1,8.</li>
</ol>3. Protoplast isolatie
<ol><li>Bereid 20 ml enzymoplossing.<ol><li>Voeg 2,18 g mannitol, 0,30 g cellulase R-10 en 0,06 g macerozym R-10 toe aan een centrifugebuis van 50 ml. Keer om om de poeders te mengen. Voeg gedeïoniseerd H2O toe aan 15 ml. Voeg 200 μL 1 M MES, pH 5,7 toe. Vortex om te mixen.</li>
		<li>Verwarm de oplossing gedurende 10 minuten op 55 °C. Laat 10 minuten afkoelen op kamertemperatuur.</li>
		<li>Voeg 20 μL 1 M CaCl2, 0,02 g runderserumalbumine en 100 μL 1 M β-mercaptoethanol toe.</li>
		<li>Vul tot 20 ml met gedeïoniseerd H2O. Giet in een in folie verpakt bekerglas van 250 ml.</li>
	</ol></li>
	<li>Haal de maïszaailingen uit het donker. Knip ze een paar centimeter boven de grond met een nieuw scheermesje. Plaats de afgesneden uiteinden in water. Bewaar ze in het donker bij kamertemperatuur terwijl ze niet in gebruik zijn.</li>
	<li>Selecteer de tweede en derde bladeren van elke zaailing en zorg ervoor dat bladeren met bruine of beschadigde gebieden worden uitgesloten. Selecteer 12-16 bladeren. Snijd ~1 cm van de punt van elk blad af en gooi weg. Snijd vervolgens een sectie van 10 cm van elk blad. OPMERKING: Als er meer weefsel nodig is, gebruik dan een extra volume van 20 ml enzymoplossing in een extra bekerglas van 250 ml. Te veel bladmateriaal in een bepaalde hoeveelheid enzymoplossing kan de levensvatbaarheid verminderen.</li>
	<li>Stapel de bladdelen op elkaar met de basale uiteinden op elkaar. Klem de bundel aan het basale uiteinde aan elkaar met behulp van een bindclip. Leg de bundel bladeren op een stuk wit papier.</li>
	<li>Pak de bladeren ~1 cm van het distale uiteinde vast. Snijd met een nieuw scheermesje de bladeren van het distale uiteinde loodrecht op de nerven in dunne (0,5-1 mm) plakjes. Vermijd recht naar beneden hakken, maar maak korte, voorwaartse plakjes door het weefsel.<ol><li>Verwissel de scheermesjes wanneer er zichtbare resten op het papier beginnen te worden afgezet. Zichtbaar residu duidt op pureren van het weefsel als gevolg van een dof mes of een slechte techniek.</li>
	</ol></li>
	<li>Na het snijden van ~ 2 cm van de lengte van de bladbundel, breng de plakjes onmiddellijk over in het bekerglas van enzymoplossing. Laat het materiaal niet uitdrogen, omdat dit het aantal verkregen protoplasten zal verminderen. Draai de enzymoplossing voorzichtig rond om het materiaal nat te maken.<ol><li>Plaats een foliedeksel over het bekerglas om het licht te blokkeren. Herhaal het snij- en overdrachtsproces totdat de hele bundel dicht bij de bindclip is gesneden.</li>
	</ol></li>
	<li>Breng het bekerglas enzymoplossing over in een stolp. Vacuüm-infiltreer tussen −50,8 kPa en −67,7 kPa ten opzichte van de omgevingsdruk gedurende 3 minuten bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Breng het bekerglas over op een tafelbladschudder. Schud bij 40 RPM gedurende 2,5 uur bij kamertemperatuur. Draai het bekerglas voorzichtig met de hand. Wanneer volledig verteerd, zal de enzymoplossing er enigszins melkachtig uitzien. Als de oplossing nog steeds helder is, blijft u nog maximaal een uur schudden bij 40 RPM. Niet langer dan 3,5 uur.</li>
	<li>Maak tijdens de spijsvertering een mannitol + MES + MgCl2 (MMG) -oplossing, een polyethyleenglycol (PEG) -oplossing en een incubatieoplossing.<ol><li>MMG: Voeg 5,47 g mannitol, 200 μL 1 M MES, pH 5,7 en 750 μL 1 M MgCl2 toe aan een centrifugebuis van 50 ml. Vul tot 50 ml met gedestilleerd H2O. Vortex om op te lossen. Plaats op ijs.</li>
		<li>Incubatieoplossing: Voeg 5,47 g mannitol, 200 μl 1 M MES bij pH 5,7 en 200 μl 1 M KCl toe aan een centrifugebuis van 50 ml. Vul tot 50 ml met gedestilleerd H2O. Vortex om op te lossen. Plaats op ijs.</li>
		<li>PEG-oplossing: Voeg 0,44 g mannitol, 1,0 g PEG en 400 μl 1 M CaCl2 toe aan een centrifugebuis van 15 ml. Vul tot 4 ml met gedestilleerd H2O. Vortex om te mengen. Incubeer bij 37 °C met schudden gedurende 30 minuten tot het volledig is opgelost. Bewaren bij kamertemperatuur.</li>
	</ol></li>
	<li>Schud de enzymoplossing bij 80 RPM gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Leg het bekerglas met de enzymoplossing op ijs. Verwijder de foliebedekking niet. Voeg 20 ml ijskoude MMG toe aan de enzymoplossing. Filtreer door een celzeef van 40 μm in een centrifugebuis van 50 ml. OPMERKING: Houd alle oplossingen op ijs voor de volgende stappen tot de toevoeging van de PEG. Houd de protoplasten bedekt met folie om blootstelling aan licht te minimaliseren.</li>
	<li>Splits het filtraat in gelijke volumes van elk 10 ml. Giet elk volume in een glazen centrifugebuis met ronde bodem en draai gedurende 4 minuten bij 100 x g bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Gooi het supernatant weg en voeg 1 ml ijskoude MMG toe aan elke buis. Resuspensie van de pellets door de buizen voorzichtig rond te draaien en te tikken. Combineer de monsters in een enkele glazen centrifugebuis met ronde bodem. Voeg MMG toe aan een totaal volume van 5 ml. Draai 3 minuten terug op 100 x g bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Wassen met 5 ml MMG en 3 minuten laten draaien op 100 x g bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Herhaal de was met 5 ml MMG en draai gedurende 3 minuten op 100 x g bij kamertemperatuur. Na het draaien van de tweede wasbeurt, observeer of het supernatant helder is. Als het bewolkt blijft, voer dan een derde wasbeurt uit.</li>
	<li>Resuspendeer de protoplasten in 1 ml MMG. Dek losjes af met folie en houd op ijs.</li>
	<li>Bepaal de protoplastopbrengst en controleer de levensvatbaarheid.<ol><li>Voeg in een microcentrifugebuis van 1,5 ml 4 μl protoplasten en 72 μl MMG bij elkaar op.</li>
		<li>Voeg in een microcentrifugebuis van 1,5 ml 1 μL 0,5% fluoresceïnediacetaat (FDA) stockoplossing toe aan 49 μL MMG om een 20x werkende oplossing te maken. Voeg 4 μL FDA-werkoplossing toe aan de buis met de verdunde protoplasten. Incubeer gedurende 5 minuten in het donker bij kamertemperatuur.</li>
		<li>Laad 11 μL van het protoplastmengsel op een hemocytometer. Plaats onder een brightfield lichtmicroscoop. Bevestig visueel dat de cellen geen celwanden hebben. Tel vervolgens het aantal protoplasten. Gebruik deze telling om het totale aantal verkregen protoplasten te schatten. Tel vervolgens het aantal protoplasten dat groen fluoresceert onder UV-licht wanneer het wordt gekleurd met de FDA. Succesvolle protoplastisolaties leveren een levensvatbaarheid op van 70%-90%.</li>
	</ol></li>
</ol>4. PEG-gemedieerde transfectie
<ol><li>Begin met de geschatte protoplastconcentratie uit stap 3.17 en pas aan tot ~10.000 protoplasten/μL. Als de concentratie laag is, centrifugeer dan gedurende 3 minuten bij 100 x g en resuspensie in MMG tot een concentratie van ~ 10.000 protoplasten / μL.</li>
	<li>Meng ~ 1.000.000 protoplasten met 15 μg DNA in een microcentrifugebuis van 1,5 ml. Vul het mengsel aan met MMG tot 114,4 μL en incubeer gedurende 30 minuten op ijs.</li>
	<li>Resuspendeer de protoplasten door op de zijkant van de buis te tikken. Voeg 105,6 μL 25% PEG-oplossing toe aan de protoplasten om een eindgewicht/volume van 12% PEG te bereiken. Meng voorzichtig door 5-10 keer om te keren. Protoplasten in PEG-oplossing zijn kwetsbaar; Schud de buis niet. Incubeer gedurende 10 minuten in het donker bij kamertemperatuur. OPMERKING: De transfectie kan worden opgeschaald in veelvouden van de volumes die in stap 4.2 en stap 4.3 worden gegeven. Zo kunnen bijvoorbeeld 10 miljoen protoplasten en 150 μg DNA worden gesuspendeerd in 1.444 μL MMG en worden behandeld met 1.056 μL PEG-oplossing in een centrifugebuis van 50 ml.</li>
	<li>Verdun met 5 volumes incubatieoplossing. Meng voorzichtig door inversie. Draai 4 minuten terug op 100 x g bij kamertemperatuur. OPMERKING: Als u opschaalt, splitst u de protoplasten in meerdere glazen buizen met ronde bodem die elk niet meer dan 10 ml bevatten om volledige pelletering te garanderen. Schaal het volume van de incubatieoplossing dat wordt gebruikt voor het wassen proportioneel op.</li>
	<li>Verwijder het supernatant door pipetteren. Wassen met 1-5 ml incubatieoplossing en gedurende 3 minuten draaien op 100 x g bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Resuspendeer de protoplasten in de incubatieoplossing tot een concentratie van 500-1.000 cellen/μL.</li>
	<li>Incubeer de protoplasten in het donker 's nachts (~16 uur) bij kamertemperatuur.</li>
</ol>5. Protoplast herstel en expressie verificatie
<ol><li>Draai de protoplasten 4 minuten op 100 x g bij kamertemperatuur. OPMERKING: Als u opschaalt, splitst u de protoplasten in meerdere glazen buizen met ronde bodem die elk niet meer dan 10 ml bevatten.</li>
	<li>Wassen met 1-5 ml incubatieoplossing en gedurende 3 minuten draaien op 100 x g bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Resuspendeer en combineer in 1-5 ml incubatieoplossing.</li>
	<li>Als de protoplasten worden getransfecteerd met een fluorescerend reportergen (bijv. GFP), neem dan een aliquot om de transfectie-efficiëntie te controleren. Tel met behulp van een hemocytometer eerst het totale aantal protoplasten met behulp van brightfield-lichtmicroscopie. Tel vervolgens de fractie fluorescerende protoplasten onder UV-licht.</li>
	<li>Centrifugeer de protoplasten gedurende 3 minuten op 100 x g bij kamertemperatuur. OPMERKING: De protoplasten zijn nu klaar voor downstream-toepassingen zoals RNA-extractie met fenol en guanidine-isothiocyanaat.</li>
</ol>

<ol><li>Jiang, F., Zhu, J., Liu, H. -L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protoplasts%3A+A+useful+research+system+for+plant+cell+biology%2C+especially+dedifferentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Protoplasma%22%5BJournal%5D)">Protoplasts: A useful research system for plant cell biology, especially dedifferentiation.</a> Protoplasma. 250 (6), 1231-1238 (2013).</li>
<li>Wang, S., Tiwari, S. B., Hagen, G., Guilfoyle, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AUXIN+RESPONSE+FACTOR7+restores+the+expression+of+auxin-responsive+genes+in+mutant+Arabidopsis+leaf+mesophyll+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">AUXIN RESPONSE FACTOR7 restores the expression of auxin-responsive genes in mutant Arabidopsis leaf mesophyll protoplasts.</a> The Plant Cell. 17 (7), 1979-1993 (2005).</li>
<li>Hirner, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arabidopsis+LHT1+is+a+high-affinity+transporter+for+cellular+amino+acid+uptake+in+both+root+epidermis+and+leaf+mesophyll%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Arabidopsis LHT1 is a high-affinity transporter for cellular amino acid uptake in both root epidermis and leaf mesophyll.</a> The Plant Cell. 18 (8), 1931-1946 (2006).</li>
<li>Hwang, I., Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-component+circuitry+in+Arabidopsis+cytokinin+signal+transduction%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Two-component circuitry in Arabidopsis cytokinin signal transduction.</a> Nature. 413 (6854), 383-389 (2001).</li>
<li>Tan, M. -L. M. C., Rietveld, E. M., van Marrewijk, G. A. M., Kool, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+of+leaf+mesophyll+protoplasts+of+tomato+cultivars+%28L.+esculentum%29%3A+Factors+important+for+efficient+protoplast+culture+and+plant+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Regeneration of leaf mesophyll protoplasts of tomato cultivars (L. esculentum): Factors important for efficient protoplast culture and plant regeneration.</a> Plant Cell Reports. 6 (3), 172-175 (1987).</li>
<li>Brandt, K. M., Gunn, H., Moretti, N., Zemetra, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+streamlined+protocol+for+wheat+%28Triticum+aestivum%29+protoplast+isolation+and+transformation+with+CRISPR-Cas+ribonucleoprotein+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">A streamlined protocol for wheat (Triticum aestivum) protoplast isolation and transformation with CRISPR-Cas ribonucleoprotein complexes.</a> Frontiers in Plant Science. 11, 769(2020).</li>
<li>Nadakuduti, S. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+methods+to+assess+in+vivo+activity+of+engineered+genome-editing+nucleases+in+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Evaluation of methods to assess in vivo activity of engineered genome-editing nucleases in protoplasts.</a> Frontiers in Plant Science. 10, 110(2019).</li>
<li>OECD, Food and Agriculture Organization of the United Nations. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((OECD-FAO+Agricultural+Outlook+2021-2030%5BTitle%5D)+AND+%22OECD%2C+Food+and+Agriculture+Organization+of+the+United+Nations%22%5BJournal%5D)">OECD-FAO Agricultural Outlook 2021-2030.</a> OECD, Food and Agriculture Organization of the United Nations. , Paris, France. (2021).</li>
<li>Gallois, P., Marinho, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leaf+disk+transformation+using+Agrobacterium+tumefaciens-expression+of+heterologous+genes+in+tobacco%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Gene+Transfer+and+Expression+Protocols%22%5BJournal%5D)">Leaf disk transformation using Agrobacterium tumefaciens-expression of heterologous genes in tobacco.</a> Plant Gene Transfer and Expression Protocols. 49, 39-48 (1995).</li>
<li>Schäffner, A. R., Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maize+rbcS+promoter+activity+depends+on+sequence+elements+not+found+in+dicot+rbcS+promoters%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Maize rbcS promoter activity depends on sequence elements not found in dicot rbcS promoters.</a> The Plant Cell. 3 (9), 997-1012 (1991).</li>
<li>Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+underlying+the+differential+expression+of+maize+pyruvate%2C+orthophosphate+dikinase+genes%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms underlying the differential expression of maize pyruvate, orthophosphate dikinase genes.</a> The Plant Cell. 3 (3), 225-245 (1991).</li>
<li>Jores, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+plant+enhancers+and+their+constituent+elements+by+STARR-seq+in+tobacco+leaves%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Identification of plant enhancers and their constituent elements by STARR-seq in tobacco leaves.</a> The Plant Cell. 32 (7), 2120-2131 (2020).</li>
<li>Jores, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+promoter+designs+enabled+by+a+comprehensive+analysis+of+plant+core+promoters%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Plants%22%5BJournal%5D)">Synthetic promoter designs enabled by a comprehensive analysis of plant core promoters.</a> Nature Plants. 7 (6), 842-855 (2021).</li>
<li>Ricci, W. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Widespread+long-range+cis-regulatory+elements+in+the+maize+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Plants%22%5BJournal%5D)">Widespread long-range cis-regulatory elements in the maize genome.</a> Nature Plants. 5 (12), 1237-1249 (2019).</li>
<li>Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signal+transduction+in+maize+and+Arabidopsis+mesophyll+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiology%22%5BJournal%5D)">Signal transduction in maize and Arabidopsis mesophyll protoplasts.</a> Plant Physiology. 127 (4), 1466-1475 (2001).</li>
<li>Jeon, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+transient+expression+and+transformation+of+PEG-mediated+gene+uptake+into+mesophyll+protoplasts+of+pepper+%28Capsicum+annuum+L.%29%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%2C+Tissue+and+Organ+Culture%22%5BJournal%5D)">Efficient transient expression and transformation of PEG-mediated gene uptake into mesophyll protoplasts of pepper (Capsicum annuum L.).</a> Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 88 (2), 225-232 (2007).</li>
<li>Pindel, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+isolation+conditions+of+Cymbidium+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Folia+Horticulturae%22%5BJournal%5D)">Optimization of isolation conditions of Cymbidium protoplasts.</a> Folia Horticulturae. 19, 79-88 (2007).</li>
<li>Ren, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+efficient+leaf+base+protoplast+isolation+and+transient+expression+systems+for+orchids+and+other+important+monocot+crops%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Highly efficient leaf base protoplast isolation and transient expression systems for orchids and other important monocot crops.</a> Frontiers in Plant Science. 12, 626015(2021).</li>
<li>Yoo, S. -D., Cho, Y. -H., Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arabidopsis+mesophyll+protoplasts%3A+A+versatile+cell+system+for+transient+gene+expression+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Arabidopsis mesophyll protoplasts: A versatile cell system for transient gene expression analysis.</a> Nature Protocols. 2 (7), 1565-1572 (2007).</li>
</ol>

De auteurs verklaren geen tegenstrijdige belangen te hebben.

Zoals eerder gemeld, is de kwaliteit van het plantaardige materiaal dat wordt gebruikt voor protoplasting essentieel voor het verkrijgen van hoogwaardige protoplasten16,17,18. Het is cruciaal om gezonde onbevlekte bladeren te selecteren. Hierbij werd gebruik gemaakt van het populaire onderzoek maïs cultivar B73. We hebben geen andere cultivars getest. De maïszaailingen die voor dit protocol werden gebruikt, werden in het donker gekweekt omdat geëtioleerde bladeren 16 uur na transfectie protoplasten produceren met een grotere levensvatbaarheid in vergelijking met protoplasten van groene bladeren. Voor toepassingen die geen nachtelijke incubatie vereisen, zou het gebruik van groen of vergroenend bladmateriaal mogelijk zijn.
Een cruciale stap is het goed snijden van het bladmateriaal in dunne plakjes voor enzymatische vertering. Dit proces vergroot het oppervlak voor de mesofylcellen om te worden blootgesteld aan de enzymoplossing, waardoor het aantal teruggewonnen protoplasten toeneemt. De distale bladpunten worden weggegooid en dunne (≤1 mm) plakjes worden gesneden met nieuwe scheermesjes, die onmiddellijk worden uitgeschakeld wanneer ze dof beginnen te worden. Voor een bepaalde hoeveelheid weefsel leveren dunnere plakjes meer protoplasten op, mits de juiste techniek wordt gebruikt om het verpletteren van de bladeren te minimaliseren.
Het correct wassen van de protoplasten is ook belangrijk, omdat ze vrij delicaat zijn na het verwijderen van de celwand. Na de spijsvertering worden alle oplossingen op ijs bewaard en worden de donkergekweekte protoplasten beschermd tegen licht. De osmolariteit en pH worden gebufferd door de wasbeurten in MMG-oplossing uit te voeren. Om de protoplasten te isoleren van het minder dichte celafval, vindt centrifugatie plaats bij 100 x g. Protoplasten gecentrifugeerd bij 200 x g vertonen een vergelijkbare levensvatbaarheid na isolatie, maar lagere levensvatbaarheid de volgende dag, en ze transformeren ook ongeveer de helft. We raden aan om de levensvatbaarheid van de protoplasten te controleren door te kleuren met FDA (fluoresceïnediacetaat) onmiddellijk na isolatie; De normale levensvatbaarheid varieert tussen 70% -90%. Protoplasten met een levensvatbaarheid van minder dan 40% na isolatie leveren weinig transformanten op.

Pelleteren en wassen zijn gemakkelijker bij het werken met veel protoplasten omdat er na transfectie een duidelijk zichtbare pellet wordt verkregen. Om deze reden wordt transfectie uitgevoerd met 1 miljoen of meer protoplasten. Bij het opschalen van het protocol moet een vat van de juiste grootte worden geselecteerd voor de incubatiestappen (1,5 ml, 15 ml of 50 ml centrifugebuis) en moet het volume van de oplossing dat wordt gebruikt voor de wasstappen dienovereenkomstig worden geschaald. In ieder geval is het gunstig om te centrifugeren in ≤10 ml aliquots om ervoor te zorgen dat de protoplasten niet in het supernatant achterblijven. Een innovatie van dit protocol is het verwijderen van de 1 uur incubatie- en wasstap in W5-oplossing die wordt vermeld in andere protocollen14,19, die in onze handen onnodig bleken.
Zoals in andere studies te zien is, zijn de hoeveelheid en kwaliteit van DNA beide van cruciaal belang voor een succesvolle transfectie19. Voor plasmiden in het bereik van 4-6 kb wordt 15 μg DNA gebruikt per 1 miljoen protoplasten. DNA-preparaten van slechte kwaliteit kunnen leiden tot verminderde levensvatbaarheid na transfectie, dus we raden aan een commerciële DNA-extractiekit te gebruiken bij het isoleren van plasmiden van bacteriën. Het incuberen van de protoplasten gebeurt 's nachts bij kamertemperatuur in het donker om de transcriptie van de plasmide- of plasmidebibliotheek mogelijk te maken en tegelijkertijd stress te minimaliseren. Na nachtelijke incubatie wordt ongeveer de helft van het aantal oorspronkelijk getransfecteerde protoplasten teruggevonden. Protoplasten worden verdund tot een concentratie van 500-1.000 cellen/μL voor nachtelijke incubatie. Protoplasten die 's nachts moeten worden geïncubeerd bij concentraties hoger dan 1.000 cellen / μL hebben lagere herstelpercentages en een lagere levensvatbaarheid. Bij hogere concentraties kan puin van beschadigde en dode protoplasten bijdragen aan de dood van naburige protoplasten. Het wassen van de protoplasten na nachtelijke incubatie dient zowel om dit vuil te verwijderen als om het overtollige plasmide te verwijderen.
Protocollen als deze hebben de beperking dat niet alle plantensoorten of weefselsoorten vatbaar zijn voor protoplasting. Bovendien kunnen genexpressieverschillen worden geïnduceerd door het protoplastische proces.
Samenvattend hebben we een eenvoudig en schaalbaar protocol beschreven om miljoenen levensvatbare protoplasten te isoleren en transfecteren uit het basislandbouwgewas Z. mays. Deze methode kan veel meer protoplasten transfecteren met behulp van PEG, met een transformatie-efficiëntie die bijna net zo hoog is als op elektroporatie gebaseerde methoden15. Het grotere netto aantal transformanten maakt het mogelijk om honderden of duizenden constructies te testen in grootschalige experimenten zoals massively-parallel reporter assays12,13. Toekomstige experimenten op genoomschaal in maïs zullen wetenschappers in staat stellen om de genexpressie en genregulatie van maïs beter te begrijpen.

Voorbijgaande genexpressie is een krachtig hulpmiddel in de plantenbiologie. Plantencellen zijn echter moeilijk te transfecteren omdat ze omgeven zijn door een celwand. Deze barrière voor DNA-invoer is niet aanwezig in andere vaak bestudeerde celtypen zoals zoogdier- of insectencellen. Eerder onderzoek pakte deze uitdaging aan door gebruik te maken van protoplasten: plantencellen waarvan de celwanden zijn verteerd en verwijderd. In tegenstelling tot onbewerkt bladweefsel zijn plantaardige protoplasten gemakkelijk om mee te werken in suspensie en vatbaar voor transfectietechnieken gemedieerd door elektroporatie of polyethyleenglycol (PEG)1. Plantencellen behouden veel van hun functionaliteit, zelfs na verwijdering van de celwand. Zo worden protoplasten in verschillende planten gebruikt om gen- en eiwitfunctie 2,3 te bestuderen, signaaltransductie4 te begrijpen en mogelijke doelen voor plantenveredeling te identificeren5. Protoplasten zijn ook een handig vehikel voor het screenen van genoombewerkingsconstructies in diverse gewassoorten, waaronder tarwe en aardappel 6,7. Kortom, transiënte assays in protoplasten zijn onmisbaar voor de landbouwbiotechnologie.
Maïs (Zea mays L.) is 's werelds grootste graanoogst in tonnage; Als zodanig is het een belangrijke focus van fundamenteel en toegepast plantenwetenschappelijk onderzoek8. In tegenstelling tot modelplanten zoals Nicotiana tabacum9 wordt transgene expressie in intacte maïsbladeren echter niet routinematig uitgevoerd. Protoplasting is gebruikt voor het verkrijgen en transfecteren van maïsblad mesofylcellen10,11. Eerdere methoden hebben transfectie-efficiënties tot 75% bereikt met behulp van elektroporatie en produceerden getransfecteerde protoplasten op de schaal van tienduizenden10,15.
Dit protocol beschrijft hoe miljoenen maïsmesofylcellen kunnen worden geprotoplast en getransfecteerd met een efficiëntie die vergelijkbaar is met eerdere methoden. De belangrijkste stappen zijn het kweken van geëtioleerde maïszaailingen, het oogsten van het bladweefsel, het verteren van de celwand van de plant en het leveren van plasmide-DNA in de cellen met behulp van PEG. De belangrijkste bijdrage van dit protocol is de mogelijkheid om protoplasttransfectie op te schalen met behoud van de levensvatbaarheid van de cellen die nodig zijn voor functionele assays. Dit maakt het gebruik van experimenten op genoomschaal mogelijk, zoals massaal parallelle reporter-assays, die de functie van honderdduizenden regio's in het maïsgenoom kunnen testen. Deze methode is onlangs gebruikt om grote bibliotheken van cis-regulerende DNA-elementen te onderzoeken, waaronder versterkers en promotors 12,13,14.

<table><tbody><tr><td>1.5 mL graduated microcentrifuge tubes</td><td>VWR</td><td>490004-444</td><td></td></tr><tr><td>15 mL Falcon conical centrifuge tube</td><td>Corning</td><td>05-527-90</td><td></td></tr><tr><td>250 mL Pyrex glass beaker</td><td>Fisher</td><td>50-121-5005</td><td></td></tr><tr><td>40 um nylon mesh cell strainer</td><td>Fisher</td><td>22363547</td><td></td></tr><tr><td>50 mL Falcon tube</td><td>Corning</td><td>14-432-22</td><td></td></tr><tr><td>72 cell propagation tray</td><td>T.O. Plastics</td><td>725607C</td><td></td></tr><tr><td>Aluminum foil</td><td>VWR</td><td>89107-732</td><td></td></tr><tr><td>Bell jar</td><td>Bel-Art</td><td>F42022-0000</td><td></td></tr><tr><td>Benchtop centrifuge</td><td>Eppendorf</td><td>5424-R</td><td></td></tr><tr><td>Beta-mercaptoethanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6250-250ML</td><td>Los op in ultrapuur H2O om een 1M stockoplossing te maken. Bewaren bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>Bovine serum albumin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>Calcium chloride dihydrate (CaCl2*2H2O)</td><td>PhytoTech Labs</td><td>C135</td><td>Los op in ultrapuur H2O om een 1M stockoplossing te maken. Bewaren bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>Cellulase Onozuka R-10</td><td>Duchefa Biochemie</td><td>C8001.0010</td><td></td></tr><tr><td>D-Mannitol</td><td>PhytoTech Labs</td><td>M562</td><td></td></tr><tr><td>Dissecting scope</td><td>Reichert</td><td>Microstar IV</td><td></td></tr><tr><td>Fluorescein Diacetate (FDA)</td><td>Thermofischer Scientific</td><td>F1303</td><td>Los op in aceton bij 0,5% gewicht/volume om een 1000X stockoplossing te maken. Bescherm tegen licht en bewaar bij -20 &deg;C.</td></tr><tr><td>Fluorescence Illumination Systems</td><td>Prior</td><td>Lumen200</td><td></td></tr><tr><td>Fluorescence microscope</td><td>Leica</td><td>MDG36</td><td></td></tr><tr><td>High-capacity centrifuge</td><td>Eppendorf</td><td>5810 R</td><td></td></tr><tr><td>Macerozyme</td><td>Duchefa Biochemie</td><td>M8002.0005</td><td></td></tr><tr><td>Magnesium chloride (MgCl2)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M292-1KG</td><td>Los op in ultrapuur H2O om een 1M stockoplossing te maken. Bewaren bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>Maize seeds</td><td>B73</td><td>USDA-ARS</td><td>https://npgsweb.ars-grin.gov/gringlobal/accessiondetail?accid=PI+550473</td></tr><tr><td>Medium binder clip</td><td>Uline</td><td>S-24649</td><td></td></tr><tr><td>MES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M5287-250G</td><td>Los op in ultrapuur H2O om een 1M stockoplossing te maken. Pas pH aan tot 5,7 met KOH. Bescherm tegen licht en bewaar bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>Micropipette 20-200 uL</td><td>Gilson</td><td>F123601G</td><td></td></tr><tr><td>Nanodrop microvolume spectrophotometer</td><td>Thermofischer Scientific</td><td>ND-1000</td><td></td></tr><tr><td>NEB 5-alpha competent E. coli</td><td>New England BioLabs</td><td>C2987H</td><td></td></tr><tr><td>Neubauer hemocytometer</td><td>Daigger Scientific</td><td>EF16034F</td><td></td></tr><tr><td>No. 9 Single-edge razor blade</td><td>Excel</td><td>20009</td><td></td></tr><tr><td>Orbital shaker</td><td>VWR</td><td>89032-104</td><td></td></tr><tr><td>Poly(ethylene) glycol 4,000</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>81240-1KG</td><td></td></tr><tr><td>Potassium chloride (KCl)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9541-1KG</td><td>Los op in ultrapuur H2O om een 1M stockoplossing te maken. Bewaren bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>Professional Grade Vermiculite</td><td>NK Lawn &amp; Garden</td><td>G208</td><td></td></tr><tr><td>Round-bottom glass centrifuge tube 30 mL</td><td>Kimble Chase</td><td>45500-30</td><td></td></tr><tr><td>Rubber adapter for Corex centrifuge tubes</td><td>Corning</td><td>CLS8445AO</td><td></td></tr><tr><td>Sphagnum peat moss</td><td>Premier Horticulture</td><td>0128P</td><td></td></tr><tr><td>TRIzol Reagent</td><td>Thermofischer Scientific</td><td>15596018</td><td></td></tr><tr><td>Tygon vacuum tubing</td><td>VWR</td><td>76336-844</td><td></td></tr><tr><td>Vacuum gauge</td><td>Wika</td><td>4269978</td><td></td></tr></tbody></table>

schaalbare transfectie van maïs mesophyl protoplasten

Scalable Transfection of Maize Mesophyll Protoplasts

De transfectie van maïsmesofylcellen omvat vaak het verteren van de celwanden van de plant om protoplasten te maken en vervolgens DNA in te brengen via elektroporatie of polyethyleenglycol (PEG). Eerdere methoden werden ontwikkeld om tienduizenden getransfecteerde protoplasten tegelijk te produceren. Hier beschrijven we een eenvoudige methode om miljoenen bladmesophylprotoplasten in maïs (Zea mays L.) te isoleren en te transfecteren. Dit gestroomlijnde proces verwijdert bepaalde veel voorkomende protoplastingstappen, zoals wassen in W5. Bovendien zijn stappen zoals centrifugeren, PEG-gemedieerde transfectie en incubatie aangepast om met een groter aantal protoplasten te werken. Het vermogen om grote bibliotheken van plasmideconstructen tot expressie te brengen, maakt experimenten op genoomschaal mogelijk, zoals massaal parallelle reporter-assays in maïs.

Het weefsel dat het meest geschikt is voor protoplastisolatie zijn de tweede en derde bladeren van 10-11 dagen oude zaailingen (figuur 1). In dit werk verkregen we ongeveer 10 miljoen protoplasten uit 16 bladsecties, die elk 10 cm lang waren. Het aantal geïsoleerde protoplasten is afhankelijk van de massa van het bladmateriaal en de breedte van de bladplakken die in de enzymoplossing worden verteerd.
Onder een helderveldlichtmicroscoop verschijnen onbeschadigde protoplasten ruwweg bolvormig, met plastiden die het oppervlak bespikkelen (figuur 2A). Alvorens over te gaan tot transfectie, kan de levensvatbaarheid worden gecontroleerd door een klein aliquot protoplasten te kleuren met fluoresceïnediacetaat (FDA). FDA-gekleurde protoplasten die fluoresceren onder UV-licht worden als levensvatbaar beschouwd (figuur 2B, C). Niet alle protoplasten die onbeschadigd lijken, zijn nog steeds levensvatbaar en sommige levensvatbare protoplasten kunnen sterven door evacuolatie (figuur 2C). In deze cellen zwelt de vacuole op en zal uiteindelijk uit het celmembraan worden geworpen.
Figuur 3 toont protoplasten getransformeerd met pJT01, een maïsexpressieplasmide van 4,3 kb afgeleid van CD3-911 (ABRC)15. Transfectie resulteert in de expressie van sGFP gelabeld met een C-terminal nucleair lokalisatiesignaal van c-Myc (Figuur 3A). Het aandeel sGFP-tot expressie brengende protoplasten werd gemeten over meerdere experimenten met behulp van een hemocytometer. De mediane transfectie-efficiëntie die met deze methode werd bereikt, was 40% na nachtelijke incubatie (n = 9, figuur 4, tabel 1), wat vergelijkbaar is met eerder gepubliceerde methoden15. Afhankelijk van de experimentele toepassing, als de plasmide- of plasmidebibliotheek geen fluorescerende reporter heeft, wordt aanbevolen om een positieve controle op te nemen om transfectie te bevestigen.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64991/64991fig01.jpg"> Figuur 1: Representatieve etiolatiemaïszaailing gekweekt in het donker gedurende 10 dagen na ontkieming. De pijlen geven het tweede en derde blad aan, die het meest geschikt zijn voor protoplasting. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64991/64991fig01large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64991/64991fig02.jpg"> Figuur 2: Fluorescentiemicroscopie van de levensvatbaarheid van protoplasten na isolatie. (A) Brightfield-beeld van protoplasten onmiddellijk na isolatie. (B) Het fluorescentiesignaal van de fda-gekleurde protoplasten. (C) Overlapping van brightfield en fluorescentie met de levensvatbare protoplasten. De pijl toont een protoplast die evacuolatie ondergaat. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64991/64991fig02large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64991/64991fig03.jpg"> Figuur 3: Fluorescentiemicroscopie van protoplasten getransfecteerd met sGFP. (A) Brightfieldbeeld van protoplasten na transfectie. (B) Het fluorescentiesignaal van de getransfecteerde protoplasten in het GFP-kanaal. (C) Overlapping van lichtveld en fluorescentie van de getransformeerde protoplasten. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64991/64991fig03large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64991/64991fig04.jpg"> Figuur 4: Percentage protoplasten met GFP-fluorescentie na 16 uur incubatie. De transfectie-efficiëntie varieerde tussen onafhankelijke onderzoeken, met de laagste efficiëntie rond 20% en de hoogste in de buurt van 50%. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64991/64991fig04large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>Proces</td>
			<td>GFP-cellen geteld</td>
			<td>Totaal aantal getelde cellen</td>
			<td>GFP-percentage</td>
		</tr><tr><td>1</td>
			<td>104</td>
			<td>261</td>
			<td>39.8</td>
		</tr><tr><td>2</td>
			<td>148</td>
			<td>298</td>
			<td>49.5</td>
		</tr><tr><td>3</td>
			<td>84</td>
			<td>258</td>
			<td>32.6</td>
		</tr><tr><td>4</td>
			<td>137</td>
			<td>271</td>
			<td>50.6</td>
		</tr><tr><td>5</td>
			<td>127</td>
			<td>299</td>
			<td>42.5</td>
		</tr><tr><td>6</td>
			<td>107</td>
			<td>235</td>
			<td>45.5</td>
		</tr><tr><td>7</td>
			<td>83</td>
			<td>360</td>
			<td>23.1</td>
		</tr><tr><td>8</td>
			<td>134</td>
			<td>549</td>
			<td>24.4</td>
		</tr><tr><td>9</td>
			<td>61</td>
			<td>201</td>
			<td>30.3</td>
		</tr><tr><td>Bedoelen</td>
			<td>109</td>
			<td>304</td>
			<td>36</td>
		</tr><tr><td>Standaarddeviatie</td>
			<td>29</td>
			<td>102</td>
			<td>10</td>
		</tr></tbody></table>Tabel 1: Representatieve protoplasttransfectie-efficiëntie. Gegevens van negen recente protoplasting-onderzoeken in het laboratorium van de auteurs.
Aanvullend bestand 1: GenBank-geformatteerd tekstbestand met de volgorde van pJT01. Een 4,3 kb sGFP-expressieplasmide dient als positieve controle in getransfecteerde maïsprotoplasten. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64991/pJT01_gfp_cmyc.gb.zip" target="_blank">Klik hier om dit bestand te downloaden.</a>

Hier presenteren we een high-throughput protocol om miljoenen maïsprotoplasten tijdelijk te transfecteren voor het testen van grote bibliotheken van plasmiden in maïsmesofylcellen.

Schaalbare transfectie van maïs mesophyl protoplasten

The transfection of maize mesophyll cells often involves digesting the plant cell walls to create protoplasts and then inserting DNA via electroporation ...

Hello.Today laten we je een protocol zien dat miljoenen maïsmesofylcellen protoplasteert en ze met hoge efficiëntie transformeert. De belangrijkste stappen van het protocol zijn eerst het verteren en verwijderen van de celwand van de plant, het vrijgeven van de protoplasten en vervolgens het transformeren van de protoplast met behulp van PEG. Het grote verschil tussen dit protocol en andere is de schaal van transformatie.De meeste protocollen eindigen met tussen de 1.000 en 10.000 getransformeerde protoplasten. Ons protocol geeft echter miljoenen getransformeerde maïsprotoplasten. Hier hebben we maïszaailingen die negen tot 11 dagen na het ontkiemen in het donker worden gekweekt.Knip de zaailingen net boven het grondniveau en plaats ze in water. Houd de planten in het donker wanneer ze niet in gebruik zijn. Selecteer de tweede en derde bladeren van elke zaailing en zorg ervoor dat bladeren met bruine of beschadigde gebieden worden uitgesloten.Selecteer 12 tot 16 bladeren en snijd een centimeter van de uiteinden af. Snijd vervolgens een sectie van 10 centimeter van elk blad. Stapel bladsecties op elkaar met de basale uiteinden tegen elkaar.Klem de bundel aan het basale uiteinde aan elkaar met behulp van een bindclip. Leg de bundel bladeren op een stuk wit papier. Snijd bladplakken die 0,5 tot een millimeter breed zijn.Het is belangrijk om dunne consistente plakjes te snijden. Nadat u een deel van de bladbundel hebt gesneden, brengt u de plakjes over in de enzymoplossing. Laat het materiaal niet uitdrogen.Draai de enzymoplossing voorzichtig rond om het materiaal nat te maken. Plaats folie over het bekerglas om licht te blokkeren. Herhaal dit proces totdat de hele bundel dicht bij de binderclip is gesneden.Na het snijden moet de oplossing er als volgt uitzien. Breng het bekerglas enzymoplossing over in een stolp. Vacuüm infiltreer gedurende drie minuten bij kamertemperatuur.Incubeer op een tafelblad shaker bij 40 RPM bij kamertemperatuur gedurende twee en een half uur. Geef de oplossing na incubatie een werveling. Het moet er melkachtig uitzien, wat wijst op een succesvolle spijsvertering.Incubeer op de tafelblad shaker bij 80 RPM bij kamertemperatuur voor nog eens 10 minuten. Plaats het bekerglas met enzymoplossing op ijs. Stop de spijsvertering door één volume ijskoude MMG toe te voegen.Filtreer door een celzeef van 40 micron in een centrifugebuis van 50 milliliter. Splits de oplossing in aliquots van niet meer dan 10 milliliter per stuk. Giet in gekoelde glazen buizen met ronde bodem.Centrifugeer de buisjes gedurende vier minuten op 100 G. Verwijder het supernatant en zorg ervoor dat de pellet niet wordt verstoord. Opnieuw suspenderen en vervolgens monsters poolen voor volgende wasbeurten.Was protoplasten twee keer met vijf milliliter MMG. Draai elke keer drie minuten op 100 G. De pellet moet een mooie, felgele groene kleur hebben.Je kunt de pellet resuspenderen door de buis voorzichtig rond te draaien. Resuspendie in één milliliter MMG en verdun een kleine aliquot 10 tot 20x voor het tellen. Het is belangrijk om goed te resuspenderen voordat je gaat aliqouten, omdat de protoplasten snel zullen bezinken.Laad de verdunde protoplasten in de hemocytometer. Tel de protoplasten onder een lichtmicroscoop. Een goede voorbereiding zal niet veel overtollig vuil hebben dat ronddrijft na het wassen.Goede protoplasten zijn cirkelvormig met zichtbare plastiden. Gebruik het aantal cellen om het totale aantal te berekenen. Deze voorbereiding resulteerde in iets meer dan 10 miljoen protoplasten.We raden aan om de levensvatbaarheid te controleren met fluoresceïnediacetaatkleurstof. Succesvolle protoplastisolaties leveren de levensvatbaarheid tussen 70 en 90% Meng de protoplasten met uw plasmide van belang. Dit voorbeeld gebruikt 1 miljoen protoplasten en 15 microgram DNA.Incubeer gedurende 30 minuten op ijs. Resuspendeer door op de zijkant van de buis te tikken. Voeg PEG-oplossing toe om een eindconcentratie van 12% PEG te bereiken.Meng voorzichtig door meerdere keren om te keren. Protoplasten en PEG-oplossing zijn kwetsbaar, dus schud de buis niet. Incubeer in het donker bij kamertemperatuur gedurende 10 minuten.Verdun met vijf volumes incubatieoplossing en meng voorzichtig door inversie. Centrifugeer de buisjes gedurende vier minuten op 100 G. Was één keer met één milliliter incubatiebuffer.Pas op dat u de pellet niet verstoort. Draai drie minuten op 100 G. Resuspendie in incubatiebuffer tot een concentratie van 500 tot 1000 cellen per microliter.Incubeer in het donker een nacht bij kamertemperatuur. Draai de volgende dag vier minuten op 100 G. Was twee keer met gekoelde incubatieoplossing.Draai elke keer drie minuten op 100 G bij kamertemperatuur. Resuspenseer opnieuw en laad vervolgens een kleine aliquot op de hemocytometer voor de laatste controle. Tel eerst het totale aantal protoplasten onder brightfield.Observeer nu de fractie van protoplasten die fluoresceren onder UV om transfectie te verifiëren. De protoplasten drukken onze GFP-verslaggever uit. Laten we nu enkele statistieken krijgen over transfectie-efficiëntie.In deze voorbereiding verkregen we in totaal 10 miljoen protoplasten, waarvan we er 1 miljoen transfecteerden. De volgende dag hebben we er 335.000 teruggevonden. Daarvan hadden we een transformatiesnelheid van 30,3% Dit laat ons achter met ons totaal van ongeveer 100.000 protoplasten die GFP uitdrukken.De transfectie-efficiëntie kan variëren. Zoals u in de grafiek kunt zien, zien we routinematig efficiënties tussen 20 en 50% bij herhaalde voorbereidingen. Dit protocol maakt het mogelijk om miljoenen maïs mesophyll protoplasten te verzamelen en te verwerken.Een van de beste onderdelen van het protocol is de mogelijkheid om op te schalen. Door zowel de hoeveelheid volume als het aantal protoplasten dat bij transformatie wordt gebruikt te schalen, kunt u uw transformatie met meer dan een orde van grootte verhogen ten opzichte van wat we vandaag hebben laten zien. Tot op heden begon ons grootste experiment met één buis met 20 miljoen protoplasten en 200 microgram DNA en eindigde de volgende dag met 3,1 miljoen getransformeerde protoplasten.Dit protocol met hoge doorvoer is vooral handig wanneer u veel verschillende plasmideconstructies moet testen, maar medewerkers hebben dit protocol gebruikt voor doeleinden waarvoor niet de mogelijkheid nodig is om op te schalen, zoals het ontwerpen van synthetische gencircuits en maïs. Bedankt voor het bekijken van onze video. We hopen dat het heeft geholpen.

scalable-transfection-of-maize-mesophyll-protoplasts

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Een methode voor het isoleren van specifieke celtypen uit plantaardig materiaal wordt gedemonstreerd. Deze techniek maakt gebruik van transgene marker lijnen uitdrukken fluorescerende eiwitten in het bijzonder celtypen, cellulaire dissociatie en fluorescentie geactiveerde cel sortering. Daarnaast wordt een groei setup hier vast te staan ​​dat vergemakkelijkt de behandeling...

Fluorescentie geactiveerde celsortering van plantenprotoplasten

Macromoleculaire de handel tussen de plantencellen kan worden beoordeeld door kortstondig te drukken een fluorescent-gelabeld eiwit van belang en de analyse van de intra-en intercellulaire distributie door confocale microscopie.

Een cel-cel Macromoleculaire Transport Assay In Planta Door gebruik te maken biolistische Bombardement

Source: Beernink, B. M. et al. Direct Agroinoculation of Maize Seedlings by Injection with Recombinant Foxtail Mosaic Virus and Sugarcane Mosaic Virus Infectious Clones. J. Vis. Exp. (2021)This video demonstrates the Agrobacterium-mediated delivery of recombinant viral clones into maize seedlings for gene silencing. It outlines the process of Agrobacterium infection, systemic viral spread, and RNA interference-driven phenotypic changes.

Agrobacterium-Mediated Delivery of Recombinant Viral Clones into Maize Seedlings for Gene Silencing

Een high-throughput, geautomatiseerde, tabak protoplast productie en transformatie methode is beschreven. Het robotsysteem maakt massively parallel genexpressie en ontdekking in het model BY-2 systeem dat vertaalbaar naar niet-model gewassen zou moeten zijn.

Een Robotic Platform voor High-throughput protoplastisola- en Transformatie

Bestaande methoden voor het modificeren van planten hebben een beperkte toepasbaarheid. De nieuwe peptide-afgeleide technologie die hier wordt voorgesteld, belooft zowel eenvoud als efficiëntie in de introductie van exogeen eiwit of genen in de gewenste intracellulaire compartimenten van intacte planten.

-Peptide afgeleide methode om genen en eiwitten Across Cellulaire en organellen Barriers in Planten Transport

We ontwikkelden een eenvoudige en efficiënte protocol voor de voorbereiding van grote hoeveelheden soja protoplasten om te studeren van de ingewikkelde regelgeving en signalering mechanismen in levende cellen.

Een eenvoudige methode voor het isoleren van soja protoplasten en toepassing op voorbijgaande gen expressie Analyses

Dit werk beschrijft het klonen van een Ustilago maydis Trojaans paard stam voor de in-situ levering van secreted maïseiwitten in drie verschillende types van maïs weefsels.

Met behulp van Ustilago maydis als een paard van Troje voor In Situ levering van maïs eiwitten

Plant morfogene genen kunnen worden gebruikt om de genetische transformatie van recalcitrante genotypes te verbeteren. Hier beschreven is een Agrobacterium-gemedieerde genetische transformatie (QuickCorn) protocol voor drie belangrijke openbare maïs inteelt lijnen.

Agrobacterium-Gemedeerde onrijpe embryotransformatie van recalcitrante maïsinteeltlijnen met behulp van morfogene genen

Een agrobacterium-based injection (agroinjectie) protocol wordt gepresenteerd voor de inenting van vossenstaart mozaïek virus en suikerriet mozaïek virusclones in maïs zaailingen. Inenting op deze manier leidt tot virale infectie, virus-geïnduceerde gen-uitschakeling van markergenen en virale overexpressie van GFP.

Directe agroinoculatie van maïszaailingen door injectie met recombinant vossenstaartmozaïekvirus en suikerrietmozaïekvirus Infectieuze klonen

Dit manuscript beschrijft een geoptimaliseerd inoculatieprotocol dat gebruik maakt van losse maïsbladomhulsels voor reproduceerbare cytologische, fysiologische en moleculaire studies van maïsinteracties met schimmelpathogenen van planten. De bladomhulsels vergemakkelijken real-time observatie van cellulaire interacties tussen de levende plant en de schimmel in niet-gefixeerde weefsels.

Losse maïsomhulsels voor levende beeldvorming van infectie door schimmelpathogenen van bladmaïs

Leer een schaalbaar transfectieprotocol voor maïs mesofylprotoplasten met PEG. Deze methode transformeert miljoenen cellen met 20-50% efficiëntie voor plantenbiotechnologie en synthetische biologie.

Schaalbare transfectie van maïs mesophyl protoplasten

Meer video's verkennen