February 24th, 2023
De fruitvlieg (Drosophila melanogaster) wordt veel gebruikt voor biologisch en toxicologisch onderzoek. Om het nut van vliegen uit te breiden, ontwikkelden we een instrument, de seriële anesthesie-array, die tegelijkertijd meerdere vliegenmonsters blootstelt aan vluchtige algemene anesthetica (VGA's), waardoor het mogelijk wordt om de neveneffecten (toxisch en beschermend) van VGA's te onderzoeken.
De SAA maakt verwerking met een hoge doorvoer mogelijk voor het onderzoeken van de farmacologie van vluchtige stoffen in ongewervelde modelorganismen die zijn begiftigd met een geavanceerd brein en een uitgebreid repertoire aan gedragingen. In combinatie met de genetische gereedschapskist die beschikbaar is in Drosophila melanogaster, maakt deze techniek het mogelijk om de farmacogenetica van vluchtige stoffen snel en betaalbaar te bestuderen. Veel mensen worden blootgesteld aan vluchtige stoffen als verontreinigende stoffen of therapeutische middelen.
Naast anesthesie hebben vluchtige anesthetica tal van toxische en gunstige neveneffecten. De mate van effect wordt mede bepaald door de genetica, die grotendeels onontgonnen is gebleven. Na het maken van het houten frame, wijzigt u 50 milliliter kroniekbuisdoppen door twee gaten in elke dop te boren met een boor van 9/32 inch.
Schuur de gaten om het rafelige plastic op te ruimen. Schuur ook de bovenkant van de dop om het oppervlak op te ruwen. Snijd vervolgens vijf milliliter serologische pipetten op maat door het plastic te scoren en schoon te breken op de gescoorde lijn.
Schuur de uiteinden van de gesneden of gebroken pipetten. Lijm daarna gaas op de buizen en knip het gaas op de buismaat zodra de lijm droogt. Steek de buizen in de gaten van de conische doppen met beide buizen die boven de dop uitsteken.
Zorg ervoor dat de instroombuis langer in de buis steekt dan de uitstroom. Breng lijm aan op de bovenkanten van de doppen rond de buizen om de onderdelen aan elkaar te bevestigen en te laten drogen. Bevestig zelfklevende kabelbinders aan het frame.
Bevestig de doppen aan het frame met ritssluitingen en knip de uiteinden van de ritssluiting kort. Knip en sluit de lengte van de tygonbuizen aan op de in- en uitstroombuizen op elke gewijzigde dop. Begin aan het stroomopwaartse uiteinde en bevestig de buis eerst aan de instroom en vervolgens aan de uitstroom naar de instroom van de volgende positie.
Voeg vervolgens een stroomindicator toe aan de meest stroomafwaartse instroom. Plaats een conische buis van 50 milliliter in de eerste positie en markeer het watervulmerk. Verwijder de buis.
Vul het met water onder de instroombuis en plaats het terug op zijn plaats. Bereid de interfacing voor de vaporizer voor. Verwijder de zuigers, knip inkepingen uit twee doseerspuiten van 10 milliliter en steek ze in de in- en uitstroom van de verdamper met de inkepingen direct naar de voorkant van de verdamper gericht om uit te lijnen met de gaten.
Sluit het hele systeem aan. Gebruik tygonbuizen om de dragergastank te bevestigen met de regelaar, gasspecifieke flowmeter, verdamper en SAA. Vul lege posities op de array met lege kroniekbuizen van 50 milliliter.
Zet nu de gastank aan. Open de flowmeter tot twee liter per minuut en zet de vaporizer aan op 0%Bevestig de gasstroom door het systeem door de flowmeter stroomopwaarts van de vaporizer en de flow-indicator stroomafwaarts van de laatste kamer van de SAA te controleren op flow. U kunt ook het stroomafwaartse uiteinde van de buis in het water steken en op zoek gaan naar bellen.
24 uur of meer voorafgaand aan de blootstelling aan anesthesie sorteert u de vliegcohorten indien nodig voor het experiment met behulp van de voorkeursmethode. Breng vliegen over van voedselflacons in lege conische buizen van 50 milliliter. Tel en noteer dode vliegen voorafgaand aan blootstelling.
Ontkap en schroef 50 milliliter conische buizen met vliegen op de SAA. Schakel het dragergas in en stel het in op het gewenste debiet. Stel de verdovingsverdamper in op de gewenste concentratie en stel de vliegen bloot voor de gewenste duur.
Aan het einde van de blootstelling spoelt u het systeem met de verse gasstroom met 1,5 liter per minuut gedurende vijf minuten, wat overeenkomt met ongeveer 10x volumes van het totale SAA-volume. Open de hogedrukregelaar volledig en sluit deze vervolgens een halve slag om de gasstroom van de drager te garanderen. Volg de slang voor elke lijn naar de flowmeters en vaporizer en controleer het verdovingsniveau in de vaporizers.
Controleer of wanneer gas stroomt, dit de stroom aangeeft op de stroommeter en op de stroomafwaartse stroomindicator. Laat aan het einde van het experiment vier tot vijf minuten luchtstroom de verdoving uitspoelen. Zeven lijnen geïsoleerd uit een enkele populatie door middel van single pair meetings toonden variatie in iso fluor toxiciteit-geïnduceerde mortaliteit als gevolg van evolutionaire druk in ND23 60114 vliegen.
Pre-conditionering vliegt met 15 minuten 2%iso fluor voorafgaand aan traumatisch hersenletsel verminderde de mortaliteitsindex na 24 uur in witte 1118 en geel/witte stammen. De sterfte-index na 24 uur was niet significant lager in de voorgeconditioneerde Oregon R- en Canton S-lijnen. Tijdens de montage moeten de inkepingen in de gemodificeerde spuiten uitlijnen met de gaten van de verdamperpoorten.
Controleer tijdens de blootstelling periodiek of er stroming door het systeem is. Deze procedure kan worden gevolgd voor een breed scala aan gedrags-, overlevings- en moleculaire studies die kunnen leiden tot inzichten in de farmacologie van vluchtige stoffen.
De seriële anesthesiegootte (SAA) is een nieuw instrument dat is ontworpen voor hoogdoorvoerverwerking van Drosophila melanogaster om de farmacologie van vluchtige algemene anesthetica (VGA's) te bestuderen. Deze methode stelt onderzoekers in staat om zowel toxische als beschermende effecten van VGA's op fruitvliegen te onderzoeken, gebruikmakend van hun genetische diversiteit.
The Serial Anesthesia Array (SAA) enables high-throughput, quantitative investigation of volatile general anesthetics (VGAs) in Drosophila, supporting rapid pharmacogenetic and mechanistic de-risking in early discovery. By allowing simultaneous, controlled exposure of multiple genotypes or biological variables, the SAA advances predictive confidence in target validation and portfolio triage for neuropharmacology and toxicology pipelines. This platform addresses the need for scalable, reproducible systems to interrogate genetic and environmental determinants of drug response.
The SAA integrates into the discovery continuum from early hypothesis testing and target validation through lead identification and preclinical model development.