21 april 2023
Het huidige protocol belicht een gemodificeerde methode voor het detecteren en kwantificeren van DNA-eiwit crosslinks (DPC's) en hun posttranslationele modificaties (PTM's), waaronder ubiquitylering, SUMOylation en ADP-ribosylatie geïnduceerd door topoisomeraseremmers en door formaldehyde, waardoor de vorming en reparatie van DPC's en hun PTM's kan worden bestudeerd.
Welnu, mijn onderzoek richt zich op DNA-schadeherstel. In het bijzonder het herstel van DNA-schade veroorzaakt door topoisomeraseremmers, door PARP-remmers en door aldehyden. Ik probeer de moleculaire mechanismen te illustreren waarmee de cellen DNA-eiwitverbindingen repareren die door deze medicijnen worden geïnduceerd.
Recente ontwikkelingen in de reparatie van DNA-eiwit crosslinks omvatten de identificatie van nieuwe reparatieroutes voor DNA-eiwit crosslinks en de posttransplantatie modificatiemechanismen die deze reparatieroutes reguleren. In Vivo Complex of Enzyme assay en de Rapid Approach to DNA Adduct Recovery assay zijn de meest gebruikte methoden om DNA-eiwit crosslinks te meten en bepaalde DNA eiwit crosslinks, zoals topoisomerase één DNA eiwit crosslinks, kunnen worden gedetecteerd door immunofluorescentie met behulp van een specifiek antilichaam. Een van de grootste uitdagingen is de studie van de rol van posttranslationele modificaties bij het herstel van DNA-eiwit crosslinks.
Het was een grote uitdaging om posttranslationele modificator geconjugeerde DNA-eiwit crosslinks te verrijken en te detecteren vanwege hun zeer lage abundantie. Dit protocol biedt details over de detectie van een kwantificering van gedeubiquityleerde en ADP-ribosylated DNA-eiwit crosslinks, waardoor onderzoekers de kinetiek en vorming van deze modificaties in de reparatie van DNA-eiwit crosslinks uit verschillende bronnen kunnen bestuderen. Andere protocollen voor de detectie van DNA-eiwit crosslinks bevatten geen stappen die de detectie van hun posttranslationele modificaties beschrijven.
Hoewel dit protocol details biedt zoals medicijnconcentraties en tijdsduur om de wijzigingen en methoden om wijzigingen te scheiden en te detecteren, evenals methoden om wijzigingen te stabiliseren, te induceren. Er zijn dus verschillende posttransplantatiemodificaties geïdentificeerd bij het herstel van DNA-eiwit crosslinks. Hoe ze de reparatie coördineren, blijft grotendeels onbekend.
Het samenspel tussen deze wijzigingen rechtvaardigt dus nader onderzoek.
Dit protocol beschrijft een aangepaste methode voor het detecteren en kwantificeren van DNA-eiwit-crosslinks (DPC's) en hun posttranslationele modificaties (PTM's). De focus ligt op de effecten van topoisomerase-remmers en formaldehyde op de vorming en het herstel van DPC's.
Kwantitatieve detectie van DNA-proteïne-crosslinks (DPC's) en hun posttranslationele modificaties (PTM's) pakt een kritiek knelpunt aan in het begrijpen van DNA-schadereparatiemechanismen die relevant zijn voor geneesmiddelenonderzoek. Deze mogelijkheid maakt mechanische risicoreductie en voorspellende betrouwbaarheid mogelijk voor verbindingen die zich richten op DNA-reparatiepaden, vooral in de context van blootstelling aan chemotherapeutica en crosslinking-middelen. Robuuste detectie en kwantificering van PTM-geconjugeerde DPC's ondersteunen targetvalidatie in een vroeg stadium en informeren risico-gecorrigeerde portfoliobeslissingen.
Deze immunoassay is geïntegreerd in het continuüm van ontdekking naar preklinisch onderzoek en maakt kwantitatieve analyse mogelijk van DPC-herstelmechanismen en PTM-dynamiek na blootstelling aan geneesmiddelen of agentia.