June 23rd, 2023
Hier bespreken we een workflow om levende explant-hersenen van Drosophila melanogaster derde instarlarven voor te bereiden, te ontleden, te monteren en in beeld te brengen om de cellulaire en subcellulaire dynamiek onder fysiologische omstandigheden te observeren.
Ons onderzoek richt zich op het bestuderen van de impact van asymmetrische celdeling of ACD, op stamcelproliferatie en differentiatie. We gebruiken Drosophila neurale stamcellen of neuroblasten als een model om de mechanismen, voorschriften en effecten van asymmetrische celdeling op ontwikkeling en neurogenese te begrijpen. De recente ontwikkelingen in kunstmatige intelligentie hebben grote vooruitgang geboekt in beeldkwantificering en -analyse, wat het gebied van beeldvorming van levenscellen aanzienlijk heeft verbeterd.
Het handhaven van de samplekwaliteit voor een langetermijnfilm is een langdurige uitdaging. Hoewel het inzichtelijk is om een monster acht tot 10 uur te observeren, maken logistieke beperkingen, zoals de beeldvormingsvereisten van het monster en de beschikbare beeldvormingstools, het moeilijk. Ons protocol pakt dit aan door langetermijnbeeldvorming aan te tonen zonder de kwaliteit van het monster te beïnvloeden.
Onze techniek kan gemakkelijk worden overgenomen en toegepast op het veld door nieuwkomers. Met enige tijd en oefening kan men op korte en lange termijn films genereren, die het potentieel hebben om inzichtelijke en zinvolle gegevens op te leveren.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Dit artikel bespreekt een werkstroom voor het voorbereiden, dissekeren, monteren en beeldvorming van levende explantaat hersenen van Drosophila melanogaster derde instar larven. De focus ligt op het observeren van cellulaire en subcellulaire dynamica onder fysiologische omstandigheden, met name in de context van asymmetrische celdeling in neurale stamcellen.
Live-cell imaging of Drosophila third instar larval brains enables direct observation of neural stem cell asymmetric division, supporting mechanistic de-risking and target validation in neurodevelopmental research. This workflow addresses the challenge of maintaining sample viability for extended imaging, providing robust, quantitative data on cell polarity, spindle orientation, and differentiation. The method enhances predictive confidence at early discovery inflection points and supports translational continuity for neurogenesis-focused portfolios.
This live-cell imaging protocol integrates from early discovery through lead identification and preclinical research in neurobiology-focused pipelines.