28 maart 2025
De bio-energetica van CD8 T-cellen kan worden ondervraagd met behulp van de Mito-stresstest. Deze methodologie kan worden gebruikt om acute en chronische metabole programmering te bestuderen. Dit protocol beschrijft benaderingen om de relaties tussen T-celreceptorbiologie en bio-energetische analyse te onderzoeken.
Ons laboratorium bestudeert immuuntolerantie, immuunbewaking en antigeenreceptorsignalering door lymfocyten. We ontdekten dat lysofosfatidinezuur de cytotoxiciteit van CD8 T-cellen verstoort en perifere tolerantie bevordert door de metabole flexibiliteit in effectorcellen te verminderen. We gebruiken technologieën om het mitochondriale metabolisme en de energiecapaciteiten in CD8 T-cellen te meten.
Ons laboratorium heeft aangetoond dat lysofosfatidinezuur de metabole fitheid van CD8 T-cellen moduleert en een belangrijke bepalende factor kan zijn voor T-celfenotypes. Ons hier beschreven protocol beoordeelt het functionele metabolisme en de bio-energetica van T-celreceptorsignalering in realtime. Voeg om te beginnen 200 microliter gedestilleerd water toe aan elke put van een plaat.
Plaats een sensorcartridge op de drukplaat en zorg ervoor dat de uiteinden van de sensorcartridge onder water staan voor een goede hydratatie. Incubeer de gebruiksplaat met de sensorcartridge bij 37 graden Celsius gedurende minimaal 10 uur in een niet-kooldioxide-incubator. Vul vervolgens een conische buis van 50 milliliter met 50 milliliter kalibrantoplossing en incubeer.
Veeg de volgende dag op de plaat om het gedestilleerde water te verwijderen. Rehydrateer de plaat met 200 microliter calibrant. Plaats de sensorcartridge terug op de drukplaat en plaats de koolzuurplaat terug in de kooldioxidevrije couveuse.
Gebruik vervolgens een meerkanaalspipet om 10 miljoen CD8 T-cellen opnieuw te suspenderen in 4,5 milliliter compleet medium. Pipetteer 90 microliter van de suspensie naar elk putje, gevolgd door 90 microliter van het aangewezen medium per putje tijdens de voorbehandeling. Pipetteer 180 microliter compleet medium in de hoekputten om verdamping te voorkomen.
Plaats vervolgens de microtiterplaat met de CD8 T-cellen in een niet-kooldioxide-incubator. Plaats de plaatadapters stevig op de sensorcartridge. Gebruik na de incubatie plaatadapters om oligomycine, FCCP, rotenon en antimycine A in de respectievelijke poorten te pipetteren.
Plaats de microplaat één uur voor aanvang van de test in de niet-kooldioxide-incubator. Open de software en kalibreer de instrumentenanalysator 30 minuten voordat u de microplaat laadt. Label de putjes en bekijk het injectieschema in het softwaresysteem.
Plaats vervolgens de sensorcartridge in het instrument tijdens de kalibratie. Voer de test uit via de software. Voor extra injecties wijzigt u de injectieschema's met behulp van de extra kamer voor de injectie.
Plaats anti-CD3 en anti-CD28 in poort A van de sensorcartridge. Laad oligomycine in poort B, FCCP in poort C en rotenon en antimycine A in poort D. Voor individuele anti-CD3- en anti-CD28-stimulatie pipetteert u 20 microliter gebiotinyleerd anti-CD3 met 10 microgram per milliliter in de daarvoor bestemde putjes van de sensorcartridge. Pipetteer 20 microliter anti-CD28 en streptavidine in de daarvoor bestemde putjes.
Voor anti-CD3- of CD28-stimulatie combineert u 20 microliter gebiotinyleerd anti-CD3, anti-CD28 en streptavidine en pipetteert u deze in de daarvoor bestemde putjes. Bereid de controleputjes voor door media te injecteren. Gebruik voor gecombineerde anti-CD3- en CD-28-stimulatie een één-op-één kraal-tot-celverhouding en pipetteer vijf microliter anti-CD3 CD-28 magnetische kralen in de daarvoor bestemde putjes met 200.000 cellen per putje.
Bereid de controleputjes met media alleen voor op injectie. Pas de vergiften in elke poort aan om de uiteindelijke concentraties na injectie te bereiken. Zorg ervoor dat het injectieschema bijgewerkte tijdstippen weergeeft voordat u de microplaat in het instrument laadt.
Programmeer de software om de acute TCR-stimulatietest in totaal 140 minuten uit te voeren. Wijzig het schema om 10 tijdstippen op te nemen voorafgaand aan de injectie van oligomycine. Acute TCR-stimulatie met behulp van gebiotinyleerde anti-CD3 en/of anti-CD28 met streptavidine en anti-CD3 en/of CD-28 magnetische kralenstimulatie resulteerde in een verhoogd zuurstofverbruik en extracellulaire verzuringssnelheid in vergelijking met controles met alleen media.
Anti-CD3 en CD-28 magnetische parelstimulatie vertoonde metabole responsen vergelijkbaar met gebiotinyleerde anti-CD3- en CD-28-injecties met een vergelijkbare toename van het zuurstofverbruik en de extracellulaire verzuringssnelheid.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie onderzoekt de impact van lysofosfatidisch zuur op de cytotoxiciteit en metabole flexibiliteit van CD8 T-cellen. De methodologie omvat de Mito Stress Test om de bioenergetica en receptor-signalering van T-cellen te analyseren.
Kwantitatieve beoordeling van de mitochondriale functie in naïeve en effector CD8 T-cellen maakt mechanische risicoreductie van immunometabole targets in de vroege ontdekkingsfase mogelijk. Real-time bio-energetische profilering ondersteunt het voorspellend vertrouwen in functionele toestanden van T-cellen, wat bijdraagt aan targetvalidatie en translationele continuïteit. Deze workflow positioneert immunometabolisme als een kritische as voor portfoliotriage en immuunmodulatiestrategieën.
Deze bio-energetische analysemethode is integreerbaar vanaf de vroege ontdekkingsfase tot en met de identificatie van lead-verbindingen en preklinische studies naar immuunmodulatie.