8 september 2023
Drosophila is een gerenommeerd model voor het bestuderen van sleutelmoleculen die myogenese reguleren. De huidige methoden zijn echter onvoldoende om de mRNA-transcriptiedynamiek en ruimtelijke verdeling binnen syncytie te bepalen. Om deze beperking aan te pakken, optimaliseerden we een RNA-fluorescentie in situ hybridisatiemethode die de detectie en kwantificering van mRNA's op een schaal van één molecuul mogelijk maakt.
In ons team bestudeerden we de cellulaire en moleculaire mechanismen die de ontwikkeling en het herstel van spieren regelen. Het is zelfs bekend dat de speciale verdeling van mRNA-moleculen verschillende cellulaire processen reguleert. En hier gebruiken we de Drosophila als model om te onderzoeken hoe de mRNA's vooral verdeeld zijn in het spierweefsel van de vlieg.
Het is bewezen dat genexpressiedynamiek verschillende spierbiologische processen reguleert. De komst van high-throughput single cell en single nuclei RNA sequencing technieken heeft een uitgebreide verkenning van de transcriptionele dynamiek mogelijk gemaakt. Een opmerkelijke beperking van klassieke omics-technieken is het onvermogen om die ruimtelijke verdeling van mRNA-moleculen in de Drosophila-spiervezels te bieden.
Deze eigenschap kan worden onderzocht door fluorescentie in situ hybridisatie van één molecuul. De huidige methoden zijn onvoldoende om de mRNA-transcriptiedynamiek en ruimtelijke verdeling binnen het Drosophila-spiersysteem te bepalen. Om deze beperking aan te pakken, hebben we een methode geoptimaliseerd om de individuele mRNA-moleculen in Drosophila-spiervezels te detecteren en te codificeren met hoge ruimtelijke resolutie en signaalmolecuulschalen.
Een actuele uitdaging in het veld is het visualiseren van de spierregeneratiedynamiek in realtime en in levende dieren. Daarom proberen we een live imaging-benadering te ontwikkelen om het gedrag van spierstamcellen in hun oorspronkelijke omgeving te visualiseren, en ook om de vraag naar hun modus en migratiebereik aan te pakken, bijvoorbeeld tijdens de spierregeneratie en ook hun differentiatie en dit met een ongekende resolutie.
Deze studie onderzoekt de cellulaire en moleculaire mechanismen van spierontwikkeling en -herstel in Drosophila. Door een methode voor RNA-fluorescentie in situ hybridisatie te optimaliseren, beoogt het onderzoek de distributie van mRNA op een enkelmolecuul-schaal binnen spiervezels te visualiseren en te kwantificeren.
Single-molecule RNA FISH in Drosophila-spieren maakt een nauwkeurige kwantificering en ruimtelijke mapping van mRNA-transcripten mogelijk, waardoor een kritische leemte in het begrip van transcriptionele regulatie binnen complexe syncytiale weefsels wordt opgevuld. Deze mogelijkheid vergroot het voorspellende vertrouwen bij targetvalidatie en mechanistische risicoreductie voor onderzoeksprogramma's naar spierbiologie. De aanpak ondersteunt de translationele continuïteit van vroege ontdekking tot de ontwikkeling van preklinische modellen in therapeutische pijplijnen voor spiergerelateerde aandoeningen.
Deze methode voor kwantificatie van mRNA op enkelmolecuulniveau is geïntegreerd in het continuüm van ontdekking tot preklinisch onderzoek en slaat een brug tussen vroege targetvalidatie, assay-ontwikkeling en translationeel onderzoek in de spierbiologie.