10 november 2023
We presenteren twee op sondes gebaseerde in-house eenstaps RT-qPCR-kits voor veel voorkomende respiratoire virussen. De eerste test is voor SARS-CoV-2 (N), Influenza A (H1N1 en H3N2) en Influenza B. De tweede is voor SARS-Cov-2 (N) en MERS (UpE en ORF1a). Deze testen kunnen met succes worden geïmplementeerd in elk gespecialiseerd laboratorium.
Het algemene doel van deze test is het beheren van een multiplexbenadering voor de gelijktijdige detectie van vaak circulerende respiratoire virussen zoals SARS-CoV-2, MERS, influenza A en influenza B. De heersende technologieën die de vooruitgang in ons vakgebied stimuleren, zijn onder meer CRISPR, laterale flow-aminotesten, op papier gebaseerde biomoleculaire sensoren, Sherlock-testen in één pot, DNA-aptameren en multiplex RT-qPCR geïntegreerd met lus-gemedieerde isotherme amplificatie, LAMP. Multiplex RT-qPCR is echter de meest gevoelige, meest voorkomende en is de gouden standaard voor het diagnosticeren van verschillende virussen. De huidige experimentele uitdaging is het opstellen van een protocol dat kan worden gebruikt om RNA-kopieën van slechts 10 kopieën te detecteren.
We gebruikten een interne RT-qPCR-kit voor de test, wat tijd- en kostenbesparend is. Bereid om te beginnen de 2x buffer voor RT-qPCR voor in DNAs/RNA's-vrij water Bewaar de buffer bij min 20 graden Celsius tot verder gebruik. Meng vervolgens de primers en de sondes in een tube van 1,5 milliliter.
Vul het volume aan met elutiebuffer en bewaar de tube vervolgens bij min 20 graden Celsius. Bereid een enzymenmix met taq-polymerase en MMLV-RT in een tube van 1,5 milliliter op ijs. Vul het volume aan met de opslagbuffer van taq-polymerase.
Resuspendeer nu de virale synthetische RNA's in afzonderlijke buisjes met 100 microliter Tris-EDTA-buffer om voorraden van 10 tot de zesde RNA-kopieën per microliter te maken. Om de virusvoorraden te mengen, voegt u vijf microliter SARS-CoV-2, influenza A en B toe aan 50 microliter Tris-EDTA-buffer. Meng op dezelfde manier SARS-CoV-2 en MERS-CoV om een tweede virale mix te verkrijgen.
Verdun beide mengsels tienvoudig om een uiteindelijke verdunning van 10 RNA-kopieën per microliter te verkrijgen. Pipetteer in elk putje van een plaat met 96 putjes 2x buffer, primer, enzym, DNAs/RNA's-vrij water en de bijbehorende RNA-mengsels. Sluit de plaat af met een zelfklevende plaatafdichting.
Centrifugeer vervolgens de plaat gedurende een minuut om de vloeistof op de bodem van de put op te vangen. Programmeer vervolgens de PCR-machine om het snelle bloktype met 96 putjes te accepteren, waarbij het experimentele type is ingesteld op de standaardcurve. Stel de reagentia in op TaqMan-reagentia en selecteer de eigenschappen van de standaarduitvoering.
Definieer de gendoelen en de reporterkleurstof. Definieer vervolgens de monsternamen voor elke te testen reactie en wijs doelen en monsters toe aan de plaatlay-out. Voer nu het cyclusprogramma in het instrument in.
Breng de plaat in de juiste richting over naar de real-time QPCR-machine en druk op run om de cyclus te starten. Kies de bestandslocatie om de experimentele gegevens op te slaan. Onderzoek vervolgens de versterkingsplots die door het QPCR-programma worden geleverd.
De twee ontwikkelde kits waren in staat om alle drie de doelgenen met succes tegelijkertijd te amplificeren, met slechts 10 RNA-kopieën per reactie. De amplificatie-efficiëntie voor alle virale titraties was meer dan 99%
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie presenteert de ontwikkeling van twee probe-gebaseerde one-step RT-qPCR-kits, ontworpen voor de simultane detectie van veelvoorkomende respiratoire virussen, waaronder SARS-CoV-2, MERS en diverse stammen van Influenza. Deze kits verbeteren de diagnostische mogelijkheden van gespecialiseerde laboratoria door middel van een kosteneffectieve en tijdsefficiënte aanpak.
Multiplex real-time RT-qPCR-assays voor SARS-CoV-2, Influenza A/B en MERS-CoV voorzien in de dringende behoefte aan een snelle, gevoelige en specifieke detectie van co-circulerende respiratoire virussen in fundamenteel en translationeel onderzoek. Deze assays maken een betrouwbare differentiatie van virale targets mogelijk, wat een robuuste targetvalidatie ondersteunt en ambiguïteit bij de vroegtijdige ontwikkeling van diagnostica vermindert. De integratie ervan verhoogt het voorspellend vertrouwen en de operationele efficiëntie binnen R&D-portfolio's die gericht zijn op infectieziekten.
Multiplex RT-qPCR-assays passen binnen het continuüm van ontdekking tot preklinische fase en ondersteunen vroege hypothese-testen, assay-ontwikkeling en translationeel onderzoek voor portfolio's van infectieziekten.