23 februari 2024
Hier presenteren we een geoptimaliseerd protocol voor de cytokinese-blok-micronucleustest op gecryopreserveerde volbloedmonsters. Deze geoptimaliseerde methode voor cryopreservatie van volbloed voor micronucleusanalyse is een betrouwbare techniek voor grootschalige bemonstering en multicenter studies en kan ook worden gebruikt voor andere bloedgerelateerde tests.
Ons onderzoek richt zich vooral op het onderzoeken van de impact van ioniserende straling op gezonde weefsels. We bestuderen de chromosomale radiogevoeligheid van mensen met kanker en mensen met DNA-herstelstoornissen. Daarnaast zijn we betrokken bij biologische dissymmetrie, waarbij we de DNA-schade beoordelen die wordt veroorzaakt door blootstelling aan ioniserende straling.
Om het onderzoek in ons vakgebied vooruit te helpen, gebruiken we geautomatiseerde microscopische systemen voor analyse met een hoge doorvoer. Verse volbloedmonsters zijn het meest geprefereerde monstertype voor de micronucleustest, omdat het gemakkelijk te verkrijgen is met minimaal ongemak voor de patiënt. De noodzaak van onmiddellijke verwerking kan echter een logistieke uitdaging zijn onder tijdsdruk.
Het invriezen van volbloedmonsters maakt herhaalde analyse mogelijk zonder dat er verder extra monsters nodig zijn. Deze procedure is een gemakkelijke en tijdbesparende manier om bloedmonsters op te slaan in grootschalige en multicenter onderzoeken. Het protocol van de cryopreservatie van volbloed zal niet alleen voordelen bieden voor de micronucleustest, maar ook voor andere cytogenetische assays of functionele assays die de proliferatie van lymfocyten vereisen.
Dit artikel presenteert een geoptimaliseerd protocol voor de cytokinesis-block micronucleus assay met behulp van gecryopreserveerde hele bloedmonsters. De methode verbetert de betrouwbaarheid voor grootschalige en multi-center studies, toepasbaar op verschillende bloedgerelateerde assays.
The cytokinesis-block micronucleus (CBMN) assay on cryopreserved whole blood enables scalable, reproducible genotoxicity and radiosensitivity testing critical for early-stage drug discovery and translational research. By decoupling sample collection from immediate processing, this protocol supports large-scale, multi-center studies and enhances portfolio-wide assay standardization. The approach directly addresses logistical barriers in biopharma R&D, facilitating robust mechanistic de-risking and predictive confidence in DNA damage assessment workflows.
This protocol integrates from early discovery through lead identification and preclinical validation, supporting hypothesis-driven research and standardized analytics in DNA damage assessment.