10 november 2023
Hier wordt een gedetailleerd protocol gepresenteerd om micro-omgevingspopulaties in het beenmerg te isoleren en te karakteriseren op basis van muizenmodellen van myelodysplastische syndromen en acute myeloïde leukemie. Deze techniek identificeert veranderingen in de niet-hematopoëtische beenmergniche, inclusief de endotheliale en mesenchymale stromale cellen, met ziekteprogressie.
Ons onderzoek heeft tot doel te onderzoeken hoe de veranderende omgeving van het beenmerg de tumorgroei beïnvloedt. We ontwikkelden een flowcytometrieprotocol om de niet-immuuncellen in beenmerg en botweefsel te analyseren, met de nadruk op hematologische maligniteiten bij muizen. Deze methode is aanpasbaar voor het bestuderen van beenmerg in verschillende muizenmodellen.
Onze studie richt zich op het isoleren en identificeren van veranderingen in stromale beenmergpopulaties tijdens kankerprogressie. Inzicht in hun impact op het begin en de vooruitgang van de ziekte zou de weg kunnen vrijmaken voor nieuwe behandelingen die gericht zijn op deze kankerbevorderende veranderingen in de stromale cellen van het beenmerg. Ons protocol combineert op unieke wijze mechanische en enzymatische vergistingen, magnetische depleties en flowcytometrie om de cellulaire samenstelling van de micro-omgeving van het beenmerg af te bakenen.
Het onderscheidt zich door gebruik te maken van magnetische scheiding en cellen van zowel bot als merg op te nemen, waardoor een uitgebreidere weergave van deze micro-omgeving wordt geboden.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een gedetailleerd protocol voor het isoleren en karakteriseren van micro-omgevingspopulaties van beenmerg in muizenmodellen van myelodysplastische syndromen en acute myeloïde leukemie. De studie richt zich op het analyseren van niet-immuuncellen in het beenmerg en hun veranderingen tijdens kankerprogressie.
Dissecting the bone marrow microenvironment in myelodysplastic syndrome (MDS) and acute myeloid leukemia (AML) addresses a critical challenge in understanding disease initiation and progression. High-resolution phenotyping of stromal and endothelial populations enables mechanistic de-risking and informs target validation for therapies aimed at the tumor-supportive niche. This capability strengthens predictive confidence at the discovery-to-preclinical inflection point for hematological malignancy portfolios.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling high-fidelity isolation and analysis of bone marrow niche populations in murine models of MDS and AML.