22 maart 2024
Het protocol dat in deze studie wordt gepresenteerd, illustreert de effectiviteit van de cAMP Difference Detector In Situ bij het meten van cAMP door middel van twee methoden. Eén methode maakt gebruik van een spectrofotometer met 96 putjes voor plaatlezen met HEK-293-cellen. De andere methode demonstreert individuele HASM-cellen onder een fluorescerende microscoop.
We bedienen de organisatie van fietsende KP-microdomeinen met een focus op het ophelderen van hoe deze compartimenten worden gevormd en in stand gehouden. We proberen de belangrijkste componenten bloot te leggen die cellen in staat stellen ruimtelijke signalen binnen deze domeinen te onderscheiden, variatie in hun interpretatie te onderzoeken en hoe deze kenmerken worden veranderd bij ziekten zoals astma en COPD. Het infecteren van primaire cellen met behulp van de Beckman-vector is een uitdaging.
Hiervoor moet de toestand worden geoptimaliseerd voor het individuele celtype om voldoende expressie van de biosensor te bereiken. Dit protocol maakt de real-time detectie en monitoring mogelijk, variërend van minuten tot uren, en het meten van cyclo campu-dynamiek in levende cellen. Deze biosensor heeft een hoge specificiteit om zich te houden aan cyclo camp P. Bijgevolg correleren de signalen die door dit essay worden gegenereerd rechtstreeks met cyclische P-niveaus, waardoor de mogelijke interferentie van de andere cellulaire componenten aanzienlijk wordt verminderd en betrouwbare resultaten worden geleverd.
Deze studie presenteert een protocol voor het meten van cAMP-niveaus met behulp van de cAMP Difference Detector In Situ. Het benadrukt twee methoden: een waarbij een 96-well plate reading spectrofotometer met HEK-293 cellen wordt gebruikt en een andere met individuele HASM cellen onder een fluorescentiemicroscoop.
Real-time quantification of cAMP dynamics in live cells is critical for de-risking early discovery and validating signaling targets in disease-relevant systems. The cADDis biosensor enables continuous, quantitative measurement of cAMP in both immortalized and primary cells, supporting predictive confidence in pathway interrogation. This capability strengthens portfolio triage by providing robust, reproducible data on intracellular signaling events relevant to respiratory and other disease models.
The cADDis biosensor integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis testing, screening, and translational research in live cell systems.