5 juli 2024
Hier wordt een protocol gepresenteerd voor het bepalen van nucleïnezuurmetaboliserende enzymen, met behulp van voorbeelden van ligase-, nuclease- en polymerase-enzymen. De test maakt gebruik van fluorescerend gelabelde en niet-gelabelde oligonucleotiden die kunnen worden gecombineerd om duplexen te vormen die RNA- en/of DNA-schade of tussenproducten van de route nabootsen, waardoor het enzymgedrag kan worden gekarakteriseerd.
Dus mijn onderzoeksgroep, we zijn echt geïnteresseerd in enzymen die betrokken zijn bij DNA-replicatie en -reparatie. In het bijzonder bestuderen we enzymen van extremofiele micro-organismen en ook van ziekteverwekkers, omdat we willen begrijpen hoe deze enzymen die organismen milieu-uitdagingen laten overleven. We zijn zowel geïnteresseerd in de biologische functie van de enzymen als in de biotechnologische toepassingen.
We werken dus veel met DNA- en RNA-ligassen, en we hebben onlangs de rol vastgesteld van een minimaal type DNA-ligase dat naar de buitenkant van een bacteriële cel lijkt te worden getransporteerd. En we hebben vastgesteld dat dit een rol speelt bij de vorming van biofilm in de ziekteverwekker Neisseria gonorrhoeae. We hebben ook, samen met onze medewerkers van ArcticZymes, een nieuw RNA-naar-DNA-ligase gekarakteriseerd dat in staat is om DNA-adapters aan beide uiteinden van een stuk RNA te bevestigen.
Dus onze medewerkers bij ArcticZymes, die ook hebben bijgedragen aan dit protocol, karakteriseren verschillende DNA- en RNA-metaboliserende enzymen die potentiële toepassingen hebben in de moleculaire biologie. En dus gebruiken ze dit type protocol als een eerste stap om het spectrum van activiteiten van deze enzymen te begrijpen en deze te benchmarken ten opzichte van wat er al op de markt beschikbaar is. Het protocol biedt een eenvoudiger en veiliger alternatief voor het testen van nucleïnezuurmetaboliserende enzymen in vergelijking met het gebruik van radioactief gelabelde substraten.
De fluorescerend gelabelde DNA- of RNA-substraten maken onze aanpak efficiënter, omdat we de oligonucleotiden kunnen mixen en matchen om een verscheidenheid aan substraten te maken. Dus op dit moment zijn we echt gefocust op het begrijpen van de biologische functie van enkele nieuwe nucleasen die we hebben ontdekt in een Antarctisch milieugenoom. Deze nucleasen hebben homologen in andere extremofiele organismen, en dus proberen we te begrijpen welke rol ze spelen bij het laten overleven van deze microben.
We zijn ook erg geïnteresseerd in de activiteit van sommige van onze nieuwe enzymen op niet-natuurlijke nucleïnezuuranalogen en hun mogelijke toepassingen als onderdeel van een moleculair-biologische toolkit met niet-natuurlijke DNA- en RNA-substraten.
Dit artikel presenteert een protocol voor het analyseren van enzymen die nucleïnezuren metaboliseren, met de nadruk op ligase-, nuclease- en polymerase-enzymen. De analyse maakt gebruik van fluorescent gelabelde en ongelabelde oligonucleotiden om duplexen te creëren die RNA- en DNA-schade nabootsen, waardoor de karakterisering van het enzymgedrag wordt gefaciliteerd.
Gemodificeerde synthetische oligonucleotidesays maken een snelle, niet-radioactieve karakterisering van nucleïnezuur-metaboliserende enzymen mogelijk, wat bijdraagt aan targetvalidatie in een vroeg stadium en mechanische risicoreductie in biofarmaceutische R&D. Fluorescente labeling en substraatoptimalisatie vergemakkelijken een high-throughput, kwantitatieve beoordeling van enzymspecificiteit, cofactorvoorkeur en substraatcompatibiliteit. Deze mogelijkheden stroomlijnen de evaluatie van nieuwe ligasen, nucleasen en polymerasen, waardoor de portfolio-triage wordt versneld en de biologische onzekerheid in discovery-pipelines wordt verminderd.
Deze op oligonucleotiden gebaseerde assays positioneren enzymkarakterisering op het grensvlak van vroege ontdekking, lead-identificatie en preklinisch onderzoek, ter ondersteuning van iteratieve hypothesetoetsing en mechanistische validatie.