21 februari 2025
Vereenvoudigde modellen voor traumatisch hersenletsel (TBI) hebben de ontwikkeling van therapeutische benaderingen vergemakkelijkt. Dit protocol schetst de aanmaak van een niersteekwond muiscortex met behulp van naalden, waardoor bloedingen en ontstekingen kunnen worden geanalyseerd. Het steekwond TBI-muismodel biedt het voordeel dat het kan worden uitgevoerd zonder dat er gespecialiseerde apparatuur nodig is.
We zijn geïnteresseerd in het ontwikkelen van een methode om bloedingen te stoppen en ontstekingen bij TVI te onderdrukken, dus hebben we een protocol opgesteld om gemakkelijk een TVI-massamodel te maken met alleen een naald. Ons TVI-model met steekwond is gunstig omdat het bloedingen en grijze activering smeert. Ons protocol heeft drie belangrijke voordelen ten opzichte van andere technieken.
Er zijn geen specifieke apparatuur of gereedschappen vereist. Het kan gemakkelijk en snel worden gedaan, en de wond is zo klein dat het geen invloed heeft op het gedrag van de muis, dus iedereen kan dit met een hoge reproduceerbaarheid uitvoeren. Ons laboratorium zal zich richten op de communicatie van neuronen, grijze cellen en gliacellen en parasieten tijdens het herstel van traumatisch hersenletsel.
Communicatie speelt een cruciale rol bij de reparatie. Tot nu toe wordt het echter niet volledig begrepen. Ons protocol is erg handig voor het analyseren van communicatie.
Leg om te beginnen de verdoofde muis op zijn buikzijde op een papieren handdoek. Bevestig dat de muis diep verdoofd is met een teenknijptest. Desinfecteer de operatieplaats door drie keer afwisselend Betadine en 70% ethanol scrub te geven.
Pak nu de achterhoofdshuid vast met een stompe tang en maak een incisie van één tot 1,5 millimeter breed om het achterhoofdsbeen bloot te leggen zonder de schedel of enig orgaan te beschadigen. Open vervolgens voorzichtig en langzaam de incisie om de grens tussen de hersenschors en het cerebellum door de schedel te observeren. Om een craniotomie bij de muis uit te voeren, maakt u met een naald een klein gaatje in de rechterhersenhelft van het achterhoofdsbeen.
Draai de naald voorzichtig om een inbrengpunt te maken voor steekwondnaalden en zorg ervoor dat u het hersenparenchym niet beschadigt. Steek voor de steekwond de juiste naald vanaf het inbrengpunt in en steek de hersenschors langs de rostrale caudale as. Hecht ten slotte de huidincisie met behulp van een nylon 3-0 hechtdraad met een halfronde naald.
De wond na de ingreep werd bevestigd door middel van microscopie. IGG-extravasatie piekte een dag na het letsel, gevolgd door progressief herstel en een vermindering van de kleuringsintensiteit na drie, vijf en zeven dagen. Evan's lekkage van blauwe kleurstof in het hersenparenchym trad onmiddellijk na het letsel op, waarbij de concentratie met een uur piekte.
De kleurstofconcentratie nam na één en drie dagen geleidelijk af. Piekaccumulatie van IBA1-positieve microglia en GFAP-positieve astrocyten trad respectievelijk vijf en drie dagen na het letsel op, waarbij hun aanwezigheid met zeven dagen afnam. Inflammatoire cytokinen, waaronder tumornecrosefactor alfa, interleukine zes en interleukine één bèta, vertoonden één dag na het letsel een piek in mRNA-expressie, terwijl transformerende groeifactor bèta één drie dagen na het letsel een piek bereikte.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie presenteert een protocol voor het creëren van een steekwond-muismodel voor traumatisch hersenletsel (TBI) om onderzoek naar bloedingen en ontsteking te faciliteren. Door gebruik te maken van een eenvoudige naaldtechniek maakt dit model een effectieve analyse van de cerebrale cortex van de muis mogelijk, terwijl de impact op het gedrag tot een minimum wordt beperkt. Deze aanpak is ontworpen voor gebruiksgemak en biedt een hoge reproduceerbaarheid, waardoor deze toegankelijk is voor onderzoekers.
Het steekwondmuismodel voor traumatisch hersenletsel (TBI) biedt een reproduceerbaar en schaalbaar platform voor het onderzoeken van bloedings- en ontstekingsmechanismen die relevant zijn voor de ontdekking van geneesmiddelen bij neurotrauma. Door een nauwkeurige, gelokaliseerde beschadiging mogelijk te maken zonder verstorende gedragseffecten, ondersteunt dit model de validatie van targets in een vroeg stadium en het mechanistisch minimaliseren van risico's voor anti-inflammatoire en hemostatische therapeutische kandidaten. De operationele eenvoud en kwantitatieve resultaten maken het tot een waardevol instrument voor portfolletriage en de verdere ontwikkeling van de preklinische pijplijn.
Dit model integreert in het continuüm van ontdekking naar preklinische fase door hypothesetoetsing, targetvalidatie en compoundscreening in een ziekte-relevante context mogelijk te maken.