17 juni 2025
Hier presenteren we een protocol voor het oogsten en verwerken van conjunctivale biopsie om slijmvliespemfigoïd te identificeren.
We proberen de acceptatie van conjunctivale biopsie te vergroten voor de diagnose van slijmvliespemfigoïd, een chronische cicatriserende conjunctivitis, en indien onbehandeld, kan het blindheid veroorzaken. Directe immunofluorescerende kleuring van de conjunctivale biopsie voor afzetting van het immuuncomplex in het membraan van de patiënt is diagnostisch voor MMP, maar wordt in veel centra over de hele wereld niet uitgevoerd. Het document met de huidige methoden beschrijft de technieken van de conjunctivale biopsie van het oogsten en het gebruik van een optimaal snijtemperatuurmedium gevuld met cartridges voor monsteroverdracht en bloedbereiding, waardoor de monsterverwerking wordt verminderd.
Plan om te beginnen een biopsie van beide ogen van de patiënt die verdacht wordt van pemfigoïd onder lokale of lokale verdoving met behulp van een operatiemicroscoop. Vraag geïnformeerde toestemming van de patiënt en leg duidelijk de mogelijke bijwerkingen uit, waaronder bloedingen, littekens en de mogelijke noodzaak om na de operatie met topische steroïden te beginnen. Voordat u een biopsie neemt, bereidt u de cartridges voor door ze schoon te maken met een normale zoutoplossing en ze voor elk oog afzonderlijk te vullen met de optimale snijtemperatuur, of OCT-medium.
Plaats nu een speculum in het geselecteerde oog, rechts of links. Als de patiënt na het aanbrengen van topische proparacaïne nog steeds pijn ervaart, injecteer dan 0,2 milliliter 2% lidocaïne subconjunctivaal met behulp van een tuberculinespuit van 1 milliliter tot tuberculine. Nadat u het bindvlies van de sclera hebt opgetild met behulp van een ledemaattang, voert u een lineaire excisie uit van ongeveer 4-5 millimeter lang en 2-3 millimeter breed met een Westcott-schaar.
Breng de gehele biopsie onmiddellijk over naar een optimaal snijtemperatuurmedium. Vries de ingebedde monsters snel in met vloeibare stikstof of droogijs. Bewaar ze dan een nacht bij 80 graden Celsius.
Verdeel het bevroren weefsel in plakjes van 4-6 micrometer dik met behulp van een cryostaat die op 20 tot 25 graden Celsius wordt gehouden. Monteer de secties op positief geladen microscoopglaasjes met polylysinecoating om hechting te garanderen. Wikkel de dia's vervolgens in aluminiumfolie voordat ze bij 80 graden Celsius worden bewaard tot ze vlekken maken.
Ontdooi de glaasjes 10 minuten bij kamertemperatuur. Fixeer het weefsel vervolgens nog 10 minuten in 100% koude aceton om antigenen te behouden en weefselbeschadiging te minimaliseren. Spoel de objectglaasjes nu drie keer af met OBS, elk gedurende vijf minuten om achtergebleven OCT-medium en aceton te verwijderen.
Breng verdunde geconjugeerde antilichamen, anti-IgG, anti-IgA, anti-IgM en anti-IgC3 aan op de objectglaasjes. Breng de antilichamen voor het negatieve controleglaasje niet aan. Incubeer de dia's nu in een bevochtigde kamer bij 37 graden Celsius gedurende 45-60 minuten.
Was de objectglaasjes vervolgens drie keer gedurende vijf minuten met PBS om ongebonden antilichamen te verwijderen. Tegenvlek met een montagemedium dat DAPI bevat voor nucleaire visualisatie. Plaats ten slotte een dekglaasje over elke dia en laat ze 20 minuten uitharden.
Onderzoek de objectglaasjes met behulp van een fluorescentiemicroscoop die is uitgerust met de juiste filters, waaronder een groen excitatiefilter op 488 nanometer voor detectie van fluoroforen. Het basaalmembraan werd bevestigd in conjunctivale biopsieën met behulp van PAS-kleuring, die verscheen als een ononderbroken felroze band aan de basis van het epitheel. Directe immunofluorescentiepositiviteit werd gevisualiseerd als heldergroene fluorescentie langs het basaalmembraan.
Directe immunofluorescentie-positieve biopsieën toonden fluorescentie voor immunoglobulinen IgM, IgA en IgG, terwijl negatieve biopsieën geen fluorescentie vertoonden. De positieve controle vertoonde een sterke groene fluorescentie bij het basaalmembraan.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een protocol voor het afnemen en verwerken van een conjunctivale biopsie om slijmvliespemphigoïd (MMP) te diagnosticeren, een ernstige aandoening die onbehandeld tot blindheid kan leiden.
Directe immunofluorescentie (DIF) van een conjunctiva-biopt biedt een definitief diagnostisch instrument voor sluimvliespemphigoïde (MMP), een ziekte met een grote onvervulde behoefte vanwege het risico op onomkeerbare blindheid. Gestandaardiseerde biopt- en DIF-protocollen maken een betrouwbare detectie van immuuncomplexen mogelijk, wat vroege interventie ondersteunt en diagnostische ambiguïteit in oogheelkundige en immunopathologische trajecten vermindert. De adoptie van deze methoden verhoogt het voorspellende vertrouwen op het diagnostische omslagpunt, wat verdere therapeutische strategieën en portfolioprioritering informeert.
Dit biopsie- en DIF-protocol integreert op de interface tussen diagnostiek en ontdekking, waardoor zowel klinische als preklinische onderzoekspijplijnen worden geïnformeerd.