3 juli 2025
In vivo confocale microscopie is een veelbelovende beeldvormingstechniek met een hoge resolutie. We presenteren de volgende procedure voor clinici om Demodex aan de ooglidrand in vivo te detecteren.
We ontwikkelen een gestandaardiseerd in vivo confocaal microscopieprotocol voor het detecteren van het ooglid van demodex-mijten om de klinische acceptatie uit te breiden. We passen het laatste van het gestandaardiseerde IVCM-protocol aan, dat de detectie van demodex-mijten in vivo in de klinische praktijk beperkt. Het biedt niet-invasieve, pijnloze en snelle in vivo detectie met eenvoudige follow-up, waardoor appellatiepijn en de resterende milde problemen worden geëlimineerd.
[Verteller] Reinig om te beginnen de lens van het apparaat met lensreinigingsdoekjes. Gebruik met alcohol doordrenkte wattenbolletjes om de hoofdsteun en kinsteun grondig te desinfecteren. Druk de twee zwarte hendels samen en trek de kinsteun naar voren totdat deze vastklikt om er zeker van te zijn dat deze in de juiste horizontale positie staat. Draai nu de stelschroef om de camera voor het onderzoek van de patiënt weg te halen. Breng ongeveer 0,02 milliliter oogheelkundige gel op basis van carbomeer aan op de voorkant van de microscooplens van het apparaat. Verwijder vervolgens een steriele wegwerpdop van polymethylmethacrylaat uit de beschermkap. Druk de zijkanten van de dop stevig op de microscooplens zonder het voorste oppervlak aan te raken. Breng vervolgens een druppel gelscheurvervanger aan op de voorkant van de dop. Maak een nieuw patiëntendossier aan in de software. Breng nu een druppel proparacaïnehydrochloride aan op de rand van het te onderzoeken ooglid. Beweeg de scancamera naar links vanuit het oogpunt van de bediener. Draai vervolgens aan de objectieflens van de CCD-camera om het controlebeeld loodrecht op de optische as van de lasercamera van de scanner aan te passen. Start een nieuw onderzoek met behulp van de software. Selecteer op het tabblad Onderzoeksgegevens de optie Heidelberg Retina Tomograph Cornea in de vervolgkeuzelijst Apparaat en bekijk het dialoogvenster Instellingen van de hoornvliesmodule. Kies FOV 400 in de vervolgkeuzelijst Veldlens en klik op OK om te bevestigen. Wacht vervolgens tot het acquisitievenster wordt geopend en controleer de weergave van het livebeeld en het controlebeeld van de scannende lasercamera. Stel vervolgens de factoren in het acquisitievenster in. Selecteer 1x in de vervolgkeuzelijst CCD-zoomfactor om de beeldgrootte van de besturing in te stellen. Vink de vakjes voor automatische helderheid en automatisch aan om automatische helderheidsregeling in te schakelen. Zorg ervoor dat het sectiescantype is geselecteerd. Om een referentiebeeld te verkrijgen, schakelt u de automatische helderheidsregeling uit. Pas vervolgens het brandpuntsvlak aan met de stelpen totdat het live-beeld donkerder wordt en vervolgens een heldere reflectie verschijnt die het voorste oppervlak van de polymethylmethacrylaatkap aangeeft. Klik op Resetten in het gedeelte Micrometer voor scherpstelpositie en wacht tot de waarde 0 bereikt. Schakel vervolgens het vakje Automatische helderheid in en schakel Automatisch resetten uit. Pas nu de hoogte van de onderzoekstafel aan. Plaats de kin van de patiënt op de kinsteun en het voorhoofd tegen de voorhoofdssteun. Stel de hoogte van de kinsteun in met behulp van de zwarte schroef zodat de bovenste oogleden van de patiënt zijn uitgelijnd met de rode markeringen op de hoofdsteunkolom. Instrueer de patiënt om naar beneden te kijken in de richting van de vaste lichtbron en een vaste blik te houden. Draai met een wattenstaafje het bovenste ooglid om en leg de wimperwortel en ooglidrand volledig bloot. Draai aan de stelschroef om de reflectie van de laserstraal op het bovenste ooglid uit te lijnen. Verplaats vervolgens de scanlasercamera totdat de rand van het bovenste ooglid voorzichtig contact maakt met het midden van de polymethylmethacrylaatkap. Scan de wimperwortel zorgvuldig van de temporale naar de neuszijde met behulp van minieme horizontale bewegingen van de ooglidrand. Draai de microscooplens met de klok mee of tegen de klok in om de scherpstelling te wijzigen en observeer hele follikels en wortels. Neem alle verdachte demodexbeelden op met het voetpedaal. Nadat u het examen hebt beëindigd, selecteert u Snel sorteren op acquisitietijd in het dialoogvenster Opties om afbeeldingen van de tijdelijke naar de nasale kant weer te geven. In 2024 nam het aantal proefpersonen dat in vivo confocale microscopie onderging voor demodexdetectie aanzienlijk toe in alle leeftijdsgroepen in vergelijking met 2023, met het hoogste aantal waargenomen in de leeftijdsgroep van 21 tot 30 jaar. De standaardprocedure die in 2024 werd geïntroduceerd, maakte het mogelijk om proefpersonen van slechts vier jaar tot ouder dan 90 jaar op te nemen.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een gestandaardiseerd in vivo confocale microscopieprotocol voor het detecteren van Demodex-mijten aan de ooglidrand. De methode is non-invasief en is erop gericht de klinische adoptie te bevorderen.
Gestandaardiseerde in vivo confocale microscopie (IVCM) voor de detectie van Demodex-mijten aan de ooglidrand beantwoordt aan een kritieke behoefte aan niet-invasieve, reproduceerbare en kwantitatieve beeldvorming in onderzoek naar het oogoppervlak. Dit protocol maakt een snelle, pijnloze beoordeling mogelijk over een breed leeftijdsspectrum, wat de translationele continuïteit ondersteunt en de procedurele variabiliteit in workflows voor vroege ontdekking en klinische validatie vermindert. De adoptie van IVCM vergroot het voorspellend vertrouwen in oogziektemodellen en faciliteert organisatiebrede standaardisatie voor vergelijkbaarheid tussen verschillende studies.
IVCM integreert in het continuüm van ontdekking tot preklinisch onderzoek door een gestandaardiseerde, kwantitatieve beeldvormingsmodaliteit te bieden voor onderzoek naar het oogoppervlak en anti-parasitaire screening.