19 augustus 2025
Op massaspectrometrie gebaseerde proteomische gegevens zijn beschikbaar in open databases en toegankelijk met behulp van gratis tools. Gezien de complexiteit van het doorzoeken en beschrijven van databases, missen veel biologen de kennis om deze datasets te gebruiken. Hier bieden we een gids over het gebruik van gratis tools voor het doorzoeken van basisproteomische gegevens.
Ons werk biedt een gids voor biologen om complexe proteomische gegevens te analyseren met behulp van gratis tools. We streven ernaar hen in staat te stellen bevindingen te valideren en openbare datasets te verkennen. Veel biologen kunnen geen openbare proteoomgegevens gebruiken vanwege een gebrek aan een duidelijke gids.
Ons werk overbrugt dit, waardoor validatie mogelijk is zonder nieuwe experimenten met wilde dieren. Ons werk maakt gebruik van gratis state-of-the-art software die leveranciersonafhankelijk is. Deze tools zijn sneller, gevoeliger en bieden een nauwkeurigere ontdekking van proteoom dan veel traditionele tools.
Download om te beginnen het referentieproteoom FASTA-bestand uit de UniProt-database. Klik op de knop FASTA toevoegen om het referentieproteoombestand in de DIA-NN-software te laden. Selecteer de twee opties, FASTA digest voor het gratis genereren van bibliotheken door bibliotheken en op deep learning gebaseerde spectra, RT's en IM's voorspelling onder de sectie precursor ion generation.
Klik vervolgens op de knop Uitvoeren om een voorspelde spectrale bibliotheek te genereren. Schakel de twee opties uit onder het gedeelte voor het genereren van voorloperionen. Klik op de typeknop die overeenkomt met het bestandsformaat onder het invoergedeelte om de DIA-gegevens te laden.
Stel nu zowel de massanauwkeurigheid als de MS1-nauwkeurigheid in op nul delen per miljoen onder het algoritmegedeelte. Pas de instellingen voor het massabereik van de voorloper en het fragment aan onder het gedeelte over het genereren van voorloperionen volgens de experimentele opstelling. Houd de andere software-instellingen ongewijzigd.
Klik vervolgens op de knop Uitvoeren. Wacht tot klaar wordt weergegeven op de bedieningsinterface, wat aangeeft dat de analyse is voltooid. Klik na installatie op het frag-pijppictogram in de map van de prullenbak.
Navigeer naar het configuratietabblad om alle afhankelijke instellingen weer te geven. Controleer of MSFragger-, IonQuant-, diaTracer-, DIA-NN- en Python-modules beschikbaar zijn op uw systeem. Als er modules ontbreken, klik dan op update downloaden of downloaden om ze op te halen.
Schakel nu over naar het tabblad Werkstroom. Selecteer standaard in de vervolgkeuzelijst voor workflows en klik op workflow laden. Klik vervolgens op bestanden toevoegen om de bestandspaden in te voeren.
Wijs de naam van het experiment en het biologische replicatienummer toe onder Bestanden toewijzen of laat het leeg. Klik vervolgens op het tabblad database om ernaar over te schakelen. Laad een FASTA-bestand vanaf de schijf of download een bestand dat overeenkomt met de voorbeeldsoort.
Selecteer tijdens het downloaden de opties die alleen worden beoordeeld, sequenties, voeg lokvogels toe en voeg veelvoorkomende verontreinigingen toe voor een eenvoudige run. Klik op het tabblad MSFragger om de weergave te wijzigen. Selecteer gesloten zoekfunctie standaard configuratie en klik op laden.
Behoud onder de instellingen voor piekovereenkomsten alle standaardwaarden. Selecteer voor zowel kalibratie als optimalisatie geen om de verwerkingstijd te verkorten. Voor eiwitvertering past u de parameters aan op basis van de vereisten van uw experiment en behoudt u de resterende standaardinstellingen.
Schakel nu over naar het tabblad validatie. Schakel RT voorspellen en spectra voorspellen uit, omdat deze opties bedoeld zijn voor gegevensonafhankelijke acquisitieworkflows. Klik op het tabblad quant MS1.
Selecteer MS1 quant uitvoeren en klik vervolgens op load quant defaults. Kies ion quant en laat alle andere instellingen op de standaardwaarden staan. Klik ten slotte op het tabblad Uitvoeren om verder te gaan.
Selecteer de gewenste uitvoermap en klik op uitvoeren om te beginnen met het analyseren van de gegevens. Bij patiënten met ductaal adenocarcinoom van de pancreas, of PDAC, vertoonden SERPINA5 en HPSE een significant verminderde expressie, terwijl FGB een verhoogde expressie in serum vertoonde in vergelijking met normale individuen. In tumormonsters van hepatocellulair carcinoom vertoonden ENO3, PLS3, MTAP, SERPINB9 en ITPR2 verminderde expressie ten opzichte van gepaarde weefsels, terwijl ME1, CYP27A1, RPS16 en ATP5PF significant waren verhoogd.
Visualisatie van heatmaps toonde consistent verhoogde eiwitexpressie in het serum van PDAC-patiënten in vergelijking met normale individuen. Genontologische verrijkingsanalyse van PDAC-serum toonde significante opregulatie van processen die verband houden met coagulatie en hemostase. GO-analyse van hepatocellulaire carcinoomtumoren identificeerde verrijking in nucleotide en metabole processen, waaronder purinenucleotidemetabolisme en NAD-metabole routes.
Analyse van de verrijking van de KEGG-route van het PDAC-serum onthulde een significante activering van de complement- en stollingscascaderoute, samen met de afbraak van glycosaminoglycaan. KEG-analyse in tumormonsters van hepatocellulair carcinoom identificeerde verrijking in PPAR-signalering, koolstofmetabolisme en neurodegeneratieve ziekteroutes, zij het met een lagere statistische significantie. Het eiwit-eiwitinteractienetwerk voor opgereguleerde PDAC-serumeiwitten onthulde een centraal cluster met stollingsfactor 11, fibrinogeen-bètaketen en plasmaserineproteaseremmer, evenals verschillende geïsoleerde eiwitten, waaronder HPSE, CD5-antigeenachtig en CRISP3.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie biedt biologen een uitgebreide gids voor het analyseren van complexe proteomische gegevens met behulp van gratis, geavanceerde tools.
Proteomics op basis van massaspectrometrie is steeds centraler in vroegtijdige ontdekking en translationeel onderzoek, maar de complexiteit van de gegevens en het gebrek aan toegankelijke workflows beperken de bredere adoptie in biopharma R&D. Dit artikel demonstreert hoe gratis, leverancier-onafhankelijke computationele tools robuuste ondervraging en validatie van publieke proteomische datasets mogelijk maken, waardoor hypothese-gestuurd onderzoek wordt ondersteund zonder extra experimentele last. Gestroomlijnde data-analyseworkflows verhogen het voorspellend vertrouwen en vergemakkelijken vergelijkingen tussen studies, wat een directe impact heeft op targetvalidatie en pipelines voor biomarkerontdekking.
Deze workflow positioneert de analyse van massaspectrometriegegevens vanaf de vroege ontdekkingsfase tot aan de identificatie van lead-verbindingen en translationeel onderzoek, waarbij gebruik wordt gemaakt van openbare repositories en gratis computationele hulpmiddelen.