5 december 2025
Dit protocol beschrijft een high-throughput benadering voor het evalueren van plantionenlekkage, peroxidaseactiviteit en calloseproductie in hetzelfde monster.
Mijn laboratorium werkt aan interacties tussen plantenmicroben met als ultiem doel de resistentie tegen zeehondengewassen te verbeteren met genetica. Recente ontwikkelingen hebben aangetoond dat microbiële secundaire metabolieten een sleutelrol spelen bij het bevorderen van de gevoeligheid of resistentie van planten. Gebruik om te beginnen een kurkboring met een diameter van vier millimeter om drie bladschijven per plant te verzamelen, terwijl je de middenader vermijdt.
Met het scherpe uiteinde breng je een draaibeweging uit om te voorkomen dat het weefsel wordt gemacereerd. Voeg secundaire metabolieten of oplosmiddelbehandelingen toe aan de gewenste concentratie in individuele putten van een plaat met 96 putjes om een uiteindelijk volume van 200 microliter te bereiken. Plaats de bladschijven voorzichtig in de holtes.
Plaats de 96-well-plaat met het deksel verwijderd in een belly met een vacuümmond. Bevestig vervolgens de vacuümslangen aan de nozzle van de belljar en zet de vacuümdruk aan op 9,8 pond per vierkante inch gedurende 10 seconden. Zet het vacuüm uit en laat de druk langzaam los gedurende 10 seconden, en herhaal dan de vacuümcyclus.
Plaats nu het deksel terug op de 96-well plaat en incubeer het op een orbitale shaker onder een lichtbron. Vier uur lang 23 centimeter boven de shaker staan. Was de sonde in ultrazuiver water en dep hem lichtjes op een pluisvrije doek om te drogen.
Noteer de geleidingskracht van het water voor toekomstige referentie. Meet en registreer de geleidbaarheid in individuele putten tussen vier en zes uur na de behandeling door de sonde onder te dompelen in de vloeistof rondom de bladschijf. Houd de plaat onder een hoek van 45 graden om ervoor te zorgen dat de sonde volledig ondergedompeld is.
Na het spoelen van de probe wordt eerder gedemonstreerd, test af en toe de geleidbaarheid van het water om de stabiliteit van de probe te bevestigen. Plaats vervolgens een plastic plafondfilm over de 96-well plaat en breng deze terug in de orbitale shaker voor de incubatie gedurende de nacht. Om het peroxidasesubstraat te bereiden, verhit je 40 milliliter gedestilleerd steriel water tot 70 graden Celsius in een beker met een roerstang.
Los 50 milligram van vijf aminosalicylzuur op in verwarmd water. Voeg vervolgens extra water toe om het totale volume op 50 milliliter te brengen en stel de pH bij op zes met natriumhydroxide. Bescherm de lichtgevoelige oplossing door de container af te dekken met aluminiumfolie.
In een 50 milliliter amberkleurige kegelvormige buis bereid je een 1% waterstofperoxideoplossing in ultrazuiver water. Voeg vervolgens 10 microliter van de 1% waterstofperoxideoplossing per milliliter van vijf aminosalicylzuuroplossingen toe die nodig zijn om het assaymedium te genereren. Op het gewenste tijdstip mengt u vijf keer en brengt u vervolgens 50 microliter van elke put van de monsterplaat over op een nieuwe plaat.
Voeg 50 microliter van het assaymedium toe en laat het drie minuten op kamertemperatuur incuberen. Om de reactie te stoppen, voeg je 20 microliter van twee normale natriumhydroxide toe aan elke put en gebruik je een plaatlezer om de absorptie van elke put op 595 nanometer te meten. Water en 0,1% dimethylsulfoxide veroorzaakten vergelijkbare ionenlekken en peroxidase-activiteit, wat hun gebruik als negatieve controles bevestigde.
Behandeling met één micromolair FLG 22 induceerde significant ionenlekkage, peroxidaseactiviteit en calloseproductie, wat bevestigde dat het een robuuste positieve controle was. Gramillinebehandeling veroorzaakte aanzienlijke ionenlekkage en calloseproductie, maar had variabele effecten op de peroxidaseactiviteit. Surfactine op 10 micromolair niveau induceerde zowel peroxidase-activiteit als callose-productie, terwijl ionenlekkage onveranderd bleef.
Behandeling met T-2-toxine onderdrukte de peroxidase-activiteit, stimuleerde de productie van callose en had geen effect op ionenlekkage. Onze hydro-assay stelt onderzoekers in staat drie verschillende stressreacties in hetzelfde monster te bemonsteren, waardoor onderzoekers optimaal gebruik kunnen maken van beperkte hoeveelheden microbiële secundaire metabolieten. De mogelijkheid om 96 monsters op dezelfde plaat te vergelijken, stelt onderzoekers in staat om populatiegenetica-niveauscreens of systeembiologie uit te voeren om interacties tussen plantenmicroben te begrijpen.
Mijn onderzoek zal zich blijven richten op interacties tussen plantenmicroben en het karakteriseren van de plantgenen die we kunnen benutten om ziekteresistentie in graangewassen te ontwikkelen.
Dit protocol beschrijft een high-throughputbenadering voor het evalueren van ionlekkage in planten, peroxidase-activiteit en calloseproductie in hetzelfde monster. De methode stelt onderzoekers in staat om meerdere stressresponsen gelijktijdig te beoordelen, wat de efficiëntie van experimenten met microbiële secundaire metabolieten verhoogt.
Hoogdoorvoer-kwantificering van plantstressresponsen op microbiële secundaire metabolieten maakt systematisch onderzoek naar plant-microbe-interacties op grote schaal mogelijk. Deze gemultiplexte aanpak ondersteunt snelle vergelijkende analyses tussen genotypen en behandelingen, wat bijdraagt aan vroege ontdekking en doelwitvalidatie in R&D voor gewasbescherming. Het vermogen van de methode om meerdere stressmarkers parallel te analyseren, verhoogt het voorspellend vertrouwen voor downstream-pipelines voor de ontwikkeling van bioprotectantia en eigenschappen.
Deze high-throughput assay is geïntegreerd in het continuüm van ontdekking tot preklinische fase voor de ontwikkeling van gewaskenmerken en biologische beschermingsmiddelen.