17 oktober 2025
Dit protocol schetst een methode voor het produceren van huidorganoïden die haarzakjes bevatten van door mensen geïnduceerde pluripotente stamcellen met behulp van een vlak, fysiologisch relevant lucht-vloeistof-interfacecultuursysteem om de huidarchitectuur en -functie na te bootsen.
De reikwijdte van mijn onderzoek is om een UVB-geïnduceerd schademodel te ontwikkelen zodat ik de pathogeniciteit van een zeldzame ziekte, xeroderma pigmentosum, of preciezer gezegd, XPA, kan bestuderen. Een van de uitdagingen van deze in vitro-modellen is dat het behoorlijk lang duurt om te kweken, ongeveer vier maanden, en omdat het nog een vrij jong vakgebied is, moeten we ze nog wat beter karakteriseren. De voordelen van dit model, zoals het hiPSC-afgeleide 3D-model, de cultuur van de lucht-vloeistofinterface, recapituleren de menselijke huidarchitectuur en hebben een huidaanhangsel zoals talgklier en haarzakjes.
Bereid eerst een oplossing van één molar door natriumhydroxidepellets toe te voegen aan een lege buis van 15 milliliter. Voeg gedestilleerd water toe aan de pellets en laat de buis vortexen om de pellets op te lossen. Filter 0,1 molaire natriumhydroxideoplossing met een membraanfilter van 0,2 micrometer poriegrootte.
Verdun collageen type I oplossing op ijs met 10 keer PBS, vijf millimolaire natriumhydroxide en gedestilleerd water om het uiteindelijke volume aan te passen. Verdeel 150 microliter van deze collageenoplossing in elke insert, geplaatst in een standaard plaat met 12 putjes. Incubeer de plaat op 37 graden Celsius gedurende 30 minuten zodat de collageengel kan polymeriseren.
Vervolgens snijd je P1000-punten af met een verwarmde scalpel om brede looppunten te maken. Gebruik vervolgens de brede openingspunten om een geselecteerde cystische structuur met een kleine hoeveelheid medium op het deksel van een 10 centimeter grote petrischaal te plaatsen. Verwijder zorgvuldig alle bijproducten van de structuur met een steriel scalpel, terwijl je deze stabiliseert met steriele tangen aan de andere kant.
Verwijder ongeveer één millimeter van beide uiteinden van een cystisch huidorganoïde naast de eerste incisie met een scalpel. Vouw voorzichtig de bovenste huidlaag met een steriele tang open. Snijd het weefsel in twee tot vier stukken, afhankelijk van de grootte.
Vervolgens plaats je met steriele tang elk stuk op een collageenbedekte inzetplaat met de epidermis naar boven gericht. Voeg 600 microliter OMM toe aan elke put van een standaard 12-put plaat. Breng de insert terug naar de 12-well plaat met OMM.
Plaats vervolgens de plaat in een incubator van 37 graden Celsius met 5% kooldioxide. Een enkele, dichte cellulaire aggregaat die het merendeel van de cellen bevat, werd gevormd op dag nul door zorgvuldig hanteren en centrifugeren. Een juiste inductie van de oppervlakte-epiderm leidde tot een dun, helder epitheel dat zich op de buitenste laag van het aggregate tegen dag drie vormde. Op dag 12 had zich een dunne laag mesenchymale cellen opgehoopt op één pool van de cyste.
Haarplacodes en pinnetjes werden zichtbaar tussen dag 50 en 80, na epitheel- en mesenchymale co-inductie. Organoïden zonder zichtbare placoden vertoonden extreem dun epitheel en werden uitgesloten van de vlakke overgang. Alleen cysten van minstens vijf millimeter diameter met gepolariseerde bijproducten werden geselecteerd voor de generatie van organoïden van de planaire huid.
Haarzakjes verlengden zich geleidelijk gedurende de 27 dagen van lucht-vloeistof interfacecultuur. Talgklieren werden zichtbaar rond dag 14 in de vlakke configuratie. De pigmentatie in de organoïden nam geleidelijk toe in de loop van de tijd.
Hematoxyline- en eozinkleuring toonde een gelaagd epitheel en een basale membraan die het van de dermis scheidden. Immunofluorescentiekleuring bevestigde een huidachtige structuur van de mens in planaire huidorganoïden.
Deze studie ontwikkelt een UVB-geïnduceerd schademodel om xeroderma pigmentosum te onderzoeken, met de focus op de generatie van huidorganoïden die haarfollikels bevatten, afgeleid van menselijke geïnduceerde pluripotente stamcellen. De organoïden worden gekweekt met gebruik van een fysiologisch relevante lucht-vloeistofinterface om de architectuur en functie van de menselijke huid effectief na te bootsen.
Menselijke iPSC-afgeleide planaire haarhoudende huid-organoïden, gekweekt op het lucht-vloeistofgrensvlak, bieden een fysiologisch relevant in vitro-systeem voor het onderzoeken van de huidbiologie en de vorming van huidappendages. Dit platform maakt predictieve modellering mogelijk van weefselreacties op omgevingsfactoren en farmacologische agentia, wat translationeel onderzoek en mechanistische risicoreductie in dermatologisch R&D ondersteunt. Deze benadering vergroot het vertrouwen in de portfolio door robuuste, reproduceerbare huidmodellen mogelijk te maken voor vroege ontdekking en preklinische evaluatie.
Dit organoïdesysteem integreert processen van vroege ontdekking tot preklinisch onderzoek, waardoor hypothesetoetsing, verduidelijking van signaalpaden en voorspellende analyses voor de biologie van de huid mogelijk worden.