ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li>Cherry, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+cardiac+arrest+and+resuscitation+in+the+domestic+pig%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Modeling cardiac arrest and resuscitation in the domestic pig.</a> World J Crit Care Med. 4 (1), 1(2015).</li>
<li>Burgert, J. M., Johnson, A. D., Garcia-Blanco, J. C., Craig, W. J., O'Sullivan, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Effective+and+Reproducible+Model+of+Ventricular+Fibrillation+in+Crossbred+Yorkshire+Swine+%28Sus+scrofa%29+for+Use+in+Physiologic+Research%5BTitle%5D)+AND+%22Comp+Med%22%5BJournal%5D)">An Effective and Reproducible Model of Ventricular Fibrillation in Crossbred Yorkshire Swine (Sus scrofa) for Use in Physiologic Research.</a> Comp Med. 65 (5), 444-447 (2015).</li>
<li>Schwarz, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neither+vasopressin+nor+amiodarone+improve+CPR+outcome+in+an+animal+model+of+hypothermic+cardiac+arrest%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Anaesthesiol+Scand%22%5BJournal%5D)">Neither vasopressin nor amiodarone improve CPR outcome in an animal model of hypothermic cardiac arrest.</a> Acta Anaesthesiol Scand. 47 (9), 1114-1118 (2003).</li>
<li>White, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coagulopathy+during+cardiac+arrest+and+resuscitation+in+a+swine+model+of+electrically+induced+ventricular+fibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22Resuscitation%22%5BJournal%5D)">Coagulopathy during cardiac arrest and resuscitation in a swine model of electrically induced ventricular fibrillation.</a> Resuscitation. 82 (7), 925-931 (2011).</li>
<li>Euler, D. E., Whitman, T. A., Roberts, P. R., Kallok, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+Voltage+Direct+Current+Delivered+Through+Unipolar+Transvenous+Leads%3A+An+Alternate+Method+for+the+Induction+of+Ventricular+Fibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22Pacing+Clin+Electrophysiol%22%5BJournal%5D)">Low Voltage Direct Current Delivered Through Unipolar Transvenous Leads: An Alternate Method for the Induction of Ventricular Fibrillation.</a> Pacing Clin Electrophysiol. 22 (6), 908-914 (1999).</li>
<li>Ruemmler, R., Ziebart, A., Garcia-Bardon, A., Kamuf, J., Hartmann, E. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standardized+Model+of+Ventricular+Fibrillation+and+Advanced+Cardiac+Life+Support+in+Swine%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Standardized Model of Ventricular Fibrillation and Advanced Cardiac Life Support in Swine.</a> J Vis Exp. (155), e60707(2020).</li>
<li>Xanthos, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiopulmonary+arrest+and+resuscitation+in+Landrace%2FLarge+White+swine%3A+a+research+model%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Cardiopulmonary arrest and resuscitation in Landrace/Large White swine: a research model.</a> Lab Anim. 41 (3), 353-362 (2007).</li>
<li>Greenwood, J. C., et al. Carbon monoxide as a cellular protective agent in a swine model of cardiac arrest protocol. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGreenwood%2C+JC+%22PLoS+One%22">PLoS One</a>. Wang, M. 19 (5), e0302653(2024).</li>
<li>Vogel, U., Wanner, T., Bültmann, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extensive+pectoral+muscle+necrosis+after+defibrillation%3A+nonthermal+skeletal+muscle+damage+caused+by+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Intens+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Extensive pectoral muscle necrosis after defibrillation: nonthermal skeletal muscle damage caused by electroporation.</a> Intens Care Med. 24 (7), 743-745 (1998).</li>
<li>Guensch, D. P., et al. Evidence for Acute Myocardial and Skeletal Muscle Injury after Serial Transthoracic Shocks in Healthy Swine. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGuensch%2C+DP+%22PLoS+One%22">PLoS One</a>. Akar, F. G. 11 (9), e0162245(2016).</li>
<li>Rubenstein, J. C., Gupta, M. S., Kim, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effectiveness+of+VF+induction+with+DC+fibber+versus+conventional+induction+methods+in+patients+on+chronic+amiodarone+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Interv+Card+Electrophysiol%22%5BJournal%5D)">Effectiveness of VF induction with DC fibber versus conventional induction methods in patients on chronic amiodarone therapy.</a> J Interv Card Electrophysiol. 38 (2), 137-141 (2013).</li>
<li>Fitzgibbon, E., Berger, R., Tsitlik, J., Halperin, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+the+noise+source+in+the+electrocardiogram+during+cardiopulmonary+resuscitation%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Determination of the noise source in the electrocardiogram during cardiopulmonary resuscitation.</a> Crit Care Med. 30 (4), S148-S153 (2002).</li>
<li>Babaeizadeh, S., Firoozabadi, R., Han, C., Helfenbein, E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analyzing+cardiac+rhythm+in+the+presence+of+chest+compression+artifact+for+automated+shock+advisory%5BTitle%5D)+AND+%22J+Electrocardiol%22%5BJournal%5D)">Analyzing cardiac rhythm in the presence of chest compression artifact for automated shock advisory.</a> J Electrocardiol. 47 (6), 798-803 (2014).</li>
<li>Ruiz de Gauna, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rhythm+analysis+during+cardiopulmonary+resuscitation%3A+past%2C+present%2C+and+future%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Res+Int%22%5BJournal%5D)">Rhythm analysis during cardiopulmonary resuscitation: past, present, and future.</a> BioMed Res Int. 2014, 386010(2014).</li>
<li>Faldaas, B. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hands-free+continuous+carotid+Doppler+ultrasound+for+detection+of+the+pulse+during+cardiac+arrest+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Ressuc+Plus%22%5BJournal%5D)">Hands-free continuous carotid Doppler ultrasound for detection of the pulse during cardiac arrest in a porcine model.</a> Ressuc Plus. 15 (100412), 1-10 (2023).</li>
<li>Faldaas, B. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+feedback+on+chest+compression+efficacy+by+hands-free+carotid+Doppler+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Ressusc+Plus%22%5BJournal%5D)">Real-time feedback on chest compression efficacy by hands-free carotid Doppler in a porcine model.</a> Ressusc Plus. 18, 100583(2024).</li>
<li>Faldaas, B. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+hands-free+carotid+Doppler+can+identify+spontaneous+circulation+without+interrupting+cardiopulmonary+resuscitation%3A+an+animal+study%5BTitle%5D)+AND+%22Intensive+Care+Med+Exp%22%5BJournal%5D)">A hands-free carotid Doppler can identify spontaneous circulation without interrupting cardiopulmonary resuscitation: an animal study.</a> Intensive Care Med Exp. 12 (1), 121(2024).</li>
<li>Ruiz De Gauna, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rhythm+Analysis+during+Cardiopulmonary+Resuscitation+Past%2C+Present%2C+and+Future%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Res+Int%22%5BJournal%5D)">Rhythm Analysis during Cardiopulmonary Resuscitation Past, Present, and Future.</a> BioMed Res Int. 2014, 1-13 (2014).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Abbott Durata 7120 ICD Single Coil Lead</td><td>Abbott, Abbot Park, IL</td><td>7120</td><td></td></tr><tr><td>Abbott Gallant VR ICD</td><td>Abbott, Abbot Park, IL</td><td>CDVRA500Q</td><td></td></tr><tr><td>Abbott Merlin Programmer</td><td>Abbott, Abbot Park, IL</td><td>3650</td><td></td></tr><tr><td>Central venous catheter Certofix trio</td><td>B. Braun Medical, Melsungen, Germany</td><td>4167408-07</td><td></td></tr><tr><td>Endotracheal tube Portex #7.0</td><td>Smiths Medical, Rockland, MA</td><td>100/150/070</td><td></td></tr><tr><td>Exagon VET (Pentobarbital 400 mg/mL)</td><td>VetViva Richter, Wels, Austria</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Heparin 5000 IU/mL</td><td>Panpharma, Luitséreacute;, Frankrijk</td><td>ETI3M807-1</td><td></td></tr><tr><td>Ketamine 50 mg/mL</td><td>Abcur AB, Helsingborg, Zweden</td><td>LB-12355-01</td><td></td></tr><tr><td>Midazolam 5 mg/mL</td><td>B. Braun Medical, Melsungen, Germany</td><td>753-12612876-0621</td><td></td></tr><tr><td>Morphine</td><td>Abcur AB, Helsingborg, Zweden</td><td>LB-122184-01</td><td></td></tr><tr><td>Normal Saline flush solution</td><td>Fresenius Kabi, Uppsala, Zweden</td><td>B202382-05</td><td></td></tr><tr><td>PentoCur (Thiopental)</td><td>Abcur AB, Helsingborg, Zweden</td><td>LB-122564-01</td><td></td></tr><tr><td>Periphal IV catheter 20G Vasofix</td><td>B. Braun Medical, Melsungen, Germany</td><td>4268113B</td><td></td></tr><tr><td>PiCCO  Monitoring kit (pressure transducer, flush system and thermistor)</td><td>Pulsion, Feldkirchen, Duitsland</td><td>PV8215</td><td></td></tr><tr><td>PiCCO catheter 5 Fr 20 cm</td><td>Pulsion, Feldkirchen, Duitsland</td><td>PV2015L20-A</td><td></td></tr><tr><td>Pressure transducer and flush kit TruWave</td><td>Edwards Lifescience, Irvine, CA</td><td>PX272</td><td></td></tr><tr><td>RescueDoppler</td><td>Cimon Medical, Trondheim, Noorwegen</td><td>N/A</td><td>Propriëtair, niet commercieel verkrijgbaar</td></tr><tr><td>Ringer acetate</td><td>Fresenius Kabi, Uppsala, Zweden</td><td>B203150-02</td><td></td></tr><tr><td>Urinary cather 12 Ch</td><td>Various</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Vascular sheath introducer Prelude 7.0 Fr</td><td>Merit Medical, South Jordan, UT</td><td>PSI-7F-11-035-18G</td><td></td></tr><tr><td>Vue Ultrasound Gel</td><td>Optimum medical, Leeds, United Kingdom</td><td>1157</td><td></td></tr></tbody></table>

varkens-hartstilstandsmodel met een implanteerbare defibrillator

Porcine Cardiac Arrest Model Using an Implantable Defibrillator

Varkens-hartstilstandsmodel met een implanteerbare defibrillator

This study presents a reproducible porcine cardiac arrest model utilizing an implantable cardioverter-defibrillator (ICD) for reliable induction and ...

We wilden een eenvoudig, betrouwbaar model ontwikkelen van ventriculaire fibrillatie en cardioversie dat stabielere resultaten geeft en ons in staat stelt om minder dieren te gebruiken in reanimatieonderzoeken. We maken gebruik van een implanteerbare cardioverter-defibrillator om betrouwbaar ventriculaire fibrillatie op te wekken, cardioversie uit te voeren en intracardiale elektrocardiogrammen te registreren. Nadat het varken is voorbereid, wordt het diep geanestheseerde dier in rugligging geplaatst en worden de ledematen gefixeerd met een gaasverband.Desinfecteer de nek, kaken, lies en buik met chloorhexidine in een concentratie van 5 mg/mL in ethanol en dek de gedesinfecteerde gebieden af met steriele doeken. Strek een achterpoot om de arteria iliaca te verlengen. Lokaliseer de arteria iliaca met behulp van echografie en breng een 5 French pulse index continue cardiac output arteriele katheter in via de Seldinger-techniek.Sluit de arteriële katheter aan op een vooraf gevulde druktransducer en spoelset. Nadat de transducer op nul is gezet, bevestigt u een goede arteriële drukcurve en laat u vervolgens het achterpoot los. Breng het varken in de Trendelenburg-positie en verhoog de positieve expiratoire einddruk van de ventilator naar 10 centimeters water om de halsvenen te distenderen.Lokaliseer onder echogedreven begeleiding de rechter vena jugularis externa en breng een zeven French vasculaire introduceur in met behulp van de Seldinger-techniek. Bevestig de veneuze terugstroom en spoel de introduceur door met zoutoplossing. Plaats vervolgens een 9 French 2-lumen centraal veneuze toegangset met een hemostaseklep.Bevestig de veneuze terugstroom via de lumen. Verplaats de sedatie- en vloeistofinfusen naar de katheter. Sluit vervolgens een druktransducer aan op een van de katheterlumen en bevestig een centraal veneuze drukgolfvorm.Verlaag de positieve eind-expiratoire druk (PEEP) van de ventilator naar 5 centimeter water. Voer een enkelspoelige implanteerbare cardioverter-defibrillator (ICD) elektrode in via de vasculaire introduceerder en breng deze voort tot de apex van de rechterventrikel. Verbind vervolgens de ICD-lead met een pacing-systeemanalyse-apparaat met behulp van de specifieke connector.Zorg ervoor dat de intracardiace R-topamplitude groter is dan 6 millivolt. Gebruik een scalpel om een horizontale huidincisie van 4 centimeter onder het linker sleutelbeen te maken. Gebruik vervolgens diathermie gevolgd door botte dissectie met de vinger om een subcutane pocket te creëren die groot genoeg is om de ICD te accommoderen.Sluit de elektrode aan op de ICD en plaats het apparaat in de subcutane pocket. Bevestig dat de elektrode in de rechterventrikel in een stabiele positie blijft. Programmeer de pacing-modus naar de gewenste instellingen nadat de ICD is aangesloten op de programmeur en controleer de R-golf pacing-drempel en de impedanties.Programmeer vervolgens de parameters voor de tachyaritmiebehandeling. Selecteer op het scherm van de programmeerunit het pictogram Test en open de map Ventricular Fibber en NIPS. Selecteer onder Ventricular Fibber de optie DC Fibber en stel deze in op 7,5 volt gedurende twee seconden om ventriculaire fibrillatie op te wekken.Wanneer ventriculaire fibrillatie wordt geïnduceerd, gebruik dan de automatische toediening zodat het apparaat therapie kan toedienen volgens de geprogrammeerde parameters. Induceer ventriculaire tachycardie door op het icoon Ventricular NIPS te klikken. Kies het icoon Burst en stel de gewenste cycluslengte in, bijvoorbeeld 240 milliseconds.Druk vervolgens op Hold om een burst tot maximaal 20 seconden toe te passen. Indien er ventriculaire tachycardie of ventriculaire fibrillatie wordt geïnduceerd, dient de therapie te worden toegediend volgens de programmainstellingen in de map Tachy. Selecteer het Parameters-icoon om de instellingen te controleren en ervoor te zorgen dat het sinusritme is hersteld.Monitor de arteriële druk via de iliacale arteriekatheter. Vul dit aan met continue Doppler-monitoring van de bloedstroom door de handsfree probe loodrecht op de linker arteria carotis te plaatsen. Controleer of het Doppler-scherm een duidelijke flowcurve van de arteria carotis laat zien.Zet vervolgens de probe stevig vast met plakband. Monitor het hartritme met behulp van het intracardiale elektrocardiogram van de pacemaker en het oppervlakte-elektrocardiogram op de monitor. Observeer na het induceren van ventriculaire fibrillatie of ventriculaire tachycardie het stoppen van de carotische flow op de Doppler-trace en handhaaf de no-flow-periode volgens het studieprotocol.Begin vervolgens met handmatige reanimatie, mechanische compressies of andere interventies. Bevestig het herstel van de spontane circulatie met behulp van de invasieve arteriële druk en de niet-invasieve echogeleide stroomsnelheid. Indien nodig, breng het varken terug naar het sinusritme door een handmatige DC-schok toe te dienen.Beëindig de ventriculaire fibrillatie binnen 120 seconden om de kans op een succesvolle conversie te maximaliseren. Als het dier ventriculaire tachycardie vertoont, gebruik dan anti-tachycardie pacing of gesynchroniseerde cardioversie. Laat het dier tot slot rusten en zorg voor de normalisatie van de fysiologische parameters, waaronder de bloeddruk, de end-tidale koolstofdioxide en de pH.De Ventricular Fibber-modus induceerde ventriculaire fibrillatie of ventriculaire tachycardie bij alle 11 dieren. De ICD leverde therapie, waardoor het sinusritme en de spontane circulatie in elk dier werden hersteld. De gemiddelde succesrate voor het bereiken van de terugkeer van de spontane circulatie na geïnduceerde ventriculaire fibrillatie was ongeveer 92%. De ICD induceerde gemiddeld 18 ventriculaire aritmieën per dier, bestaande uit ventriculaire fibrillatie en ventriculaire tachycardie.Vergeleken met andere methoden behaalde onze aanpak een succespercentage van 92% bij het herstellen van de circulatie met ritmebewaking van een kunstmatig hart tijdens cardiopulmonale reanimatie. De belangrijkste uitdaging is de behoefte aan gespecialiseerde apparatuur en bekwame operators voor de implantatie en programmering van de ICD. Ons model verhoogt het reanimatiesucces van ongeveer 50 naar 90%, waardoor herhaalde cycli van ventriculaire fibrillatie, CPR en cardioversie per dier mogelijk worden, en vermindert het gebruik van dieren aanzienlijk.

porcine-cardiac-arrest-model-using-an-implantable-defibrillator

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Dit artikel beschrijft een rattenmodel van elektrisch geïnduceerde ventrikelfibrillatie en reanimatie door borstcompressie, ventilatie en toediening van elektrische schokken die een episode van plotselinge hartstilstand en conventionele cardiopulmonale reanimatie simuleert. Het model maakt het mogelijk om inzichten te verzamelen over de pathofysiologie van hartstilstand en het verkennen van nieuwe reanimatiestrategieën.

Een Rat Model van ventriculaire fibrillatie en Reanimatie door conventionele Closed-borst Techniek

We hebben een varkensmodel ontwikkeld voor de doelgerichte toediening van farmacologische middelen in de pericardiale ruimte/vloeistof. Met deze aanpak kunnen de relatieve voordelen van toegediende middelen op geïnduceerde atriumfibrillatie, relatieve refractaire perioden en/of ischemische bescherming worden onderzocht.

Het testen van de werkzaamheid van farmacologische middelen in een Pericardvocht Target Delivery Model in het Swine

Hier tonen we een protocol om te standaardiseren bemonsteringsprocedures van een gevestigde varkens model van acuut myocardinfarct teneinde haar translationeel waarde in de kennis van de pathofysiologie van myocardiale ischemie/reperfusie letsel en het testen van nieuwe drugkandidaten.

Verbetering van een gesloten borst varkens myocardiaal infarct Model door standaardisatie van weefsel en bloed bemonsteringsprocedures

We hebben getracht een varkensmodel van hartfalen op te stellen dat werd veroorzaakt door linker slagaderblokkades en snelle pacing om het effect en de veiligheid van intramyocardiale toediening van stamcellen voor celgebaseerde therapieën te testen.

Vaststelling van een varkensmodel van post-myocard hartinfarct voor stamcelbehandeling

Cardiopulmonale reanimatie en defibrillatie zijn de enige effectieve therapeutische opties tijdens een hartstilstand veroorzaakt door ventriculaire fibrillatie. Dit model presenteert een gestandaardiseerd regime om deze fysiologische toestand in een varkensmodel te induceren, te beoordelen en te behandelen, waardoor een klinische benadering wordt geboden met verschillende mogelijkheden voor het verzamelen en analyseren van gegevens.

Gestandaardiseerd model van ventriculaire fibrillatie en geavanceerde cardiale life support in Varkens

Het algemene doel van de huidige studie is om de technieken van inductie van myocardinfarct (MI) en post-myocardinfarct hartfalen (post-MI HF) in gesloten borst, volwassen Göttingen minipigs en de karakterisering van post-MI HF model in Göttingen minipigs in vergelijking met Landrace varkens te presenteren.

Post-Myocardinfarct Hartfalen in gesloten borst Coronaire Occlusie/Reperfusie Model in Göttingen Minipigs en Landrace Varkens

We beschrijven een steriel pericarditismodel bij minivarkens om atriale myopathie en atriale fibrillatie (AF) te bestuderen. We presenteren chirurgische en anesthesietechnieken, strategieën voor vasculaire toegang en een protocol om de induceerbaarheid van AF te bestuderen.

Steriele pericarditis bij Aachener minivarkens als model voor atriale myopathie en atriumfibrilleren

Myocardinfarct (MI) diermodellen die het natuurlijke proces van de ziekte bij mensen nabootsen, zijn cruciaal voor het begrijpen van pathofysiologische mechanismen en het testen van de veiligheid en werkzaamheid van nieuwe opkomende therapieën. Hier beschrijven we een MI-varkensmodel dat is gemaakt door een percutane embolisatiespoel in te zetten.

Myocardinfarct door percutane embolisatie spoelinzet in een varkensmodel

Dit protocol beschrijft drie methoden voor het toedienen van cardioactieve therapeutische middelen in een varkensmodel. Vrouwelijke landrasvarkens werden behandeld door middel van: (1) thoracotomie en transepicardiale injectie, (2) transendocardiale injectie op basis van katheter, of (3) intraveneuze infusie via halsaderosmotische minipomp.

Levering van cardioactieve therapieën in een model voor een myocardinfarct bij varkens

Dit protocol presenteert een model van langdurig ventriculaire fibrillatie in rattenharten geïnduceerd door continue stimulatie met laagspanningswisselstroom. Dit model heeft een hoog slagingspercentage, is stabiel, betrouwbaar en reproduceerbaar, heeft een lage impact op de hartfunctie en veroorzaakt slechts mild myocardletsel.

Een model van langdurige ventriculaire fibrillatie in geïsoleerde rattenharten

Dit protocol beschrijft een neonataal varkensmodel van cardiopulmonale bypass (CPB), met bloedsomloop en hartstilstand als hulpmiddel voor het bestuderen van ernstige hersenbeschadiging en andere complicaties secundair aan CPB.

Pediatrisch diermodel van extracorporale cardiopulmonale reanimatie na langdurige circulatiestilstand

Nord University.  Dit protocol demonstreert het gebruik van een implanteerbare cardioverter-defibrillator (ICD) om ventriculaire aritmieën betrouwbaar te induceren, interne cardioversie uit te voeren en intracardiale ECG-opnames te verkrijgen in een varkensmodel.

Varkens-hartstilstandsmodel met een implanteerbare defibrillator

Meer video's verkennen