Name: Profilering van epidermale groeifactor-DNA-mutaties in circulerende zeldzame cellen met behulp van een celisolatiesysteem en druppeldigitale PCR (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-06-23T13:20:00.000+00:00
Duration: 8 min 29 s
Description: Leer een methode voor het isoleren van circulerende tumorcellen uit bloed en het detecteren van EGFR-mutaties via ddPCR. Deze aanpak ondersteunt precisie-oncologie bij niet-kleincellig longcarcinoom.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

<ol><li>Bidard, F. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((First-line+camizestrant+for+emerging+ESR1-mutated+advanced+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">First-line camizestrant for emerging ESR1-mutated advanced breast cancer.</a> N Engl J Med. 393 (6), 569-580 (2025).</li>
<li>Pawlikowska, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+tumor+cells+%28CTCs%29+for+the+noninvasive+monitoring+and+personalization+of+non-small+cell+lung+cancer+%28NSCLC%29+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Dis%22%5BJournal%5D)">Circulating tumor cells (CTCs) for the noninvasive monitoring and personalization of non-small cell lung cancer (NSCLC) therapies.</a> J Thorac Dis. 11, Suppl 1. S45-S56 (2019).</li>
<li>Tian, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EGFR+mutations+in+non-small+cell+lung+cancer%3A+Classification%2C+characteristics+and+resistance+to+third-generation+EGFR-tyrosine+kinase+inhibitors+%28Review%29%5BTitle%5D)+AND+%22Oncol+Lett%22%5BJournal%5D)">EGFR mutations in non-small cell lung cancer: Classification, characteristics and resistance to third-generation EGFR-tyrosine kinase inhibitors (Review).</a> Oncol Lett. 30 (2), 375(2025).</li>
<li>Riely, G. J., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRiely%2C+GJ+%22NCCN+Clinical+Practice+Guidelines+in+Oncology%3A+Non-Small+Cell+Lung+Cancer%22">NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology: Non-Small Cell Lung Cancer</a>. , Version 5.2026, National Comprehensive Cancer Network. Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.nccn.org">https://www.nccn.org</a> (2026).</li>
<li>Gogoi, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+an+automated+and+sensitive+microfluidic+device+for+capturing+and+characterizing+circulating+tumor+cells+%28CTCs%29+from+clinical+blood+samples%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Development of an automated and sensitive microfluidic device for capturing and characterizing circulating tumor cells (CTCs) from clinical blood samples.</a> PLoS One. 11 (1), e0147400(2016).</li>
<li>Kang, Y. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Label-free+rapid+viable+enrichment+of+circulating+tumor+cell+by+photosensitive+polymer-based+microfilter+device%5BTitle%5D)+AND+%22Theranostics%22%5BJournal%5D)">Label-free rapid viable enrichment of circulating tumor cell by photosensitive polymer-based microfilter device.</a> Theranostics. 7 (13), 3179-3191 (2017).</li>
<li>Alexander, R. F., Spriggs, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+differential+diagnosis+of+tumour+cells+in+circulating+blood%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Pathol%22%5BJournal%5D)">The differential diagnosis of tumour cells in circulating blood.</a> J Clin Pathol. 13 (5), 414-424 (1960).</li>
<li>Pantel, K., Alix-Panabières, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+tumour+cells+in+cancer+patients%3A+Challenges+and+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Circulating tumour cells in cancer patients: Challenges and perspectives.</a> Trends Mol Med. 16 (9), 398-406 (2010).</li>
<li>Allard, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+cells+circulate+in+the+peripheral+blood+of+all+major+carcinomas+but+not+in+healthy+subjects+or+patients+with+nonmalignant+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Tumor cells circulate in the peripheral blood of all major carcinomas but not in healthy subjects or patients with nonmalignant diseases.</a> Clin Cancer Res. 10 (20), 6897-6904 (2004).</li>
<li>Descamps, L., Le Roy, D., Deman, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic-based+technologies+for+CTC+isolation%3A+A+review+of+10+years+of+intense+efforts+towards+liquid+biopsy%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mol+Sci%22%5BJournal%5D)">Microfluidic-based technologies for CTC isolation: A review of 10 years of intense efforts towards liquid biopsy.</a> Int J Mol Sci. 23 (4), 1981(2022).</li>
<li>Rushton, A. J., Nteliopoulos, G., Shaw, J. A., Coombes, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+circulating+tumour+cell+enrichment+technologies%5BTitle%5D)+AND+%22Cancers+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">A review of circulating tumour cell enrichment technologies.</a> Cancers (Basel). 13 (5), 970(2021).</li>
<li>Fehm, T. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnostic+leukapheresis+for+CTC+analysis+in+breast+cancer+patients%3A+CTC+frequency%2C+clinical+experiences+and+recommendations+for+standardized+reporting%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Diagnostic leukapheresis for CTC analysis in breast cancer patients: CTC frequency, clinical experiences and recommendations for standardized reporting.</a> Cytometry A. 93 (12), 1213-1219 (2018).</li>
<li>Markou, A. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preoperative+mutational+analysis+of+circulating+tumor+cells+%28CTCs%29+and+plasma-cfDNA+provides+complementary+information+for+early+prediction+of+relapse%3A+A+pilot+study+in+early-stage+non-small+cell+lung+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cancers+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Preoperative mutational analysis of circulating tumor cells (CTCs) and plasma-cfDNA provides complementary information for early prediction of relapse: A pilot study in early-stage non-small cell lung cancer.</a> Cancers (Basel). 15 (6), 1877(2023).</li>
<li>Smilkou, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+rate+for+ESR1+mutations+is+higher+in+circulating-tumor-cell-derived+genomic+DNA+than+in+paired+plasma+cell-free+DNA+samples+as+revealed+by+ddPCR%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Oncol%22%5BJournal%5D)">Detection rate for ESR1 mutations is higher in circulating-tumor-cell-derived genomic DNA than in paired plasma cell-free DNA samples as revealed by ddPCR.</a> Mol Oncol. 19 (7), 2109-2119 (2025).</li>
<li>Schmid, S., Li, J. J. N., Leighl, N. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+osimertinib+resistance+and+emerging+treatment+options%5BTitle%5D)+AND+%22Lung+Cancer%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of osimertinib resistance and emerging treatment options.</a> Lung Cancer. 147, 123-129 (2020).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Genesis Cell Isolation System</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>12019822</td><td>Instrument (Referred to as "Semi-automated cell isolation system")</td></tr><tr><td>QX200 Droplet Generator</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1864002</td><td>Instrument</td></tr><tr><td>QX200 Droplet Reader or QX600 Droplet Reader</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1864003 or 12013328</td><td>Instrument (Referred to as "Droplet Reader instrument")</td></tr><tr><td>PX1 PCR Plate Sealer</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1814000</td><td>Instrument</td></tr><tr><td>C1000 Touch Thermal Cycler with 96&ndash;Deep Well Reaction Module</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1851197</td><td>Instrument</td></tr><tr><td>Qubit 4 Fluorometer</td><td>Thermo Fisher Scientific Inc.</td><td>Q33226</td><td>Instrument</td></tr><tr><td>Celselect Slides</td><td></td><td></td><td>Consumable (Referred to as Microfluidic Cell Capture Slides)</td></tr><tr><td>Celselect Slides Enrichment Kit 2.0</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>17009455</td><td>Consumable</td></tr><tr><td>DNAzol BD</td><td>Molecular Research Center, Inc.</td><td>DN129</td><td>Reagent</td></tr><tr><td>MseI restriction enzyme</td><td>New England Biolabs</td><td>R0525S</td><td>Reagent</td></tr><tr><td>ddPCR Mutation Detection Assay: EGFR T790M</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>Assay ID dHsaMDV2010019</td><td>Assay</td></tr><tr><td>ddPCR Mutation Detection Assay: EGFR L858R</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>Assay ID dHsaMDV2010021</td><td>Assay</td></tr><tr><td>Qubit 1X dsDNA High Sensitivity Assay Kit</td><td>Invitrogen</td><td>Q33230</td><td>Assay kit</td></tr><tr><td>DG8 Cartridges for QX200 Droplet Generator</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1864008</td><td>Consumable</td></tr><tr><td>Droplet Generation Oil for Probes</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1863005</td><td>Consumable</td></tr><tr><td>Automated Droplet Generation Oil for Probes</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1864110</td><td>Consumable (optional)</td></tr><tr><td>ddPCR Supermix for Probes (No dUTP)</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1863023</td><td>Reagent</td></tr><tr><td>PCR Plate Heat Seal</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>1814040</td><td>Pierceable foil seal</td></tr><tr><td>DNA LoBind Microcentrifuge Tube, 1.5 ml</td><td>Eppendorf</td><td>022431021</td><td>Consumable</td></tr><tr><td>ddPCR 96-Well Plates</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>12001925</td><td>Consumable</td></tr></tbody></table>

profilering van epidermale groeifactor-dna-mutaties in circulerende zeldzame cellen met behulp van een celisolatiesysteem en druppeldigitale pcr

Profiling Epidermal Growth Factor Receptor DNA Mutations in Circulating Rare Cells Using a Cell Isolation System and Droplet Digital PCR

Profilering van epidermale groeifactor-DNA-mutaties in circulerende zeldzame cellen met behulp van een celisolatiesysteem en druppeldigitale PCR

Mutations found within the epidermal growth factor gene (EGFR) are critical for determining the most effective treatments for patients with lung cancer. ...

Wij isoleren circulerende tumorcellen uit bloed en voeren gevoelige genetische mutatieanalyses uit met behulp van microfluïdica en droplet digital PCR. Dit protocol ondersteunt onderzoek naar vloeibare biopsieën, oncologische studies en het monitoren van tumormutaties in bloedmonsters.Zet ter beginne het Genesis-celisolatiesysteem aan en wacht tot het systeem is geïnitialiseerd, wat tot vijf minuten kan duren. Plaats de afvalpot op de juiste positie aan de basis van de station bays. Bevestig de slang van de afvalpot aan de afvalpot. Bevestig de slang van het semi-automatische celisolatiesysteem aan de uitlaat van de afvalpot. Druk de slang in het knijpventiel. Voer een zelftest uit door op Start te drukken op het startscherm. Tik op Self-Test op het scherm om de procedure te starten. Wanneer de zelftest is voltooid, selecteer dan 2.0 Kit Enrichment bij de protocolopties. Volg de instructies op het scherm en vul de vereiste gegevensvelden in. Voltooi de priming- en assemblageprocedure met 70% ethanol en 1x fosfaatgebufferde zoutoplossing. Laat de primingprocedure ongeveer 20 minuten lopen. Na verificatie van de plaatsing van de slangen en de slide, breng voorzichtig de model circulerende tumorcellen of het CTC-monster, bestaande uit volbloed van mensen gespike met A549- en H1975-longkankercellen, over in de inlaattrechter, waarbij luchtbellen worden vermeden om een consistente stroom en efficiënte celopvang te garanderen. Druk op Resume op het scherm van het semi-automatische celisolatiesysteem om het verrijkingsprotocol voort te zetten. Wanneer de CTC-opvang is voltooid, verwijdert u de afvalpot en bevestigt u het primingreservoir opnieuw, zoals door het systeem wordt aangegeven. Koppel de slang van het semi-automatische celisolatiesysteem los van de afvalpot. Pipetteer vier milliliters verdunningsbuffer in het primingreservoir. Bevestig de terugstroomadapter aan het primingreservoir. Bevestig het primingreservoir opnieuw aan de slang van het semi-automatische celisolatiesysteem. Druk op Resume op het scherm om het verrijkingsprotocol voort te zetten. Laat de opgevangen cellen in de microfluïdische slide via terugstroom in de inlaattrechter vrijkomen. Pipetteer het waterige monster volledig uit de inlaattrechter in een 5-milliliters Eppendorf-buisje om de teruggewonnen cellen te verzamelen. Centrifugeer het teruggewonnen monster bij 600 g gedurende vijf minuten om de opgevangen cellen te pelletteren vóór de cellysis. Verwijder voorzichtig het supernatant van het gepelletteerde monster en ga vervolgens over tot DNA-extractie.Ontdooi de digital droplet polymerase chain reaction (ddPCR) mutatiedetectie-assays op ijs. Vortex elke buis om te zorgen dat de inhoud homogeen is. Centrifugeer de buisen kort om de inhoud naar de bodem van elke buis te sedimenteren. Plaats de buizen terug op ijs. Bereid de geëxtraheerde DNA-monsters voor in een uiteindelijke DNA-concentratie tussen 50 femtogram en 100 nanogram. Bereid vervolgens het reactiemengsel voor door het monster-DNA individueel als laatste reactiecomponent toe te voegen. Laad 20 µL van elk reactiemengsel in de monsterputjes van een DG8 Cartridge. Laad 75 µL droplet-generatie-olie voor probes in de olieputjes. Bedek de cartridge met een pakking en plaats de cartridge in de droplet-generator. Druk op de knop van de droplet-generator om het deksel te sluiten en de droplet-generatie automatisch te laten starten; programmeer de thermische cyclusparameters op de thermocycler. Wanneer de droplet-generatie voltooid is en alle indicatielampjes constant groen branden, druk dan op de knop om de droplet-generator te openen. Verwijder de cartridgehouder en de cartridge uit het instrument. Na het verwijderen van de wegwerppakking van de cartridge, aspireer dan 45 µL droplets uit de cartridge terwijl de pipetpunt onder een lichte hoek wordt gehouden om droplet-shearing te voorkomen. Doseer de droplets in de ddPCR 96-well plaat. Gebruik de PX1 plaatsealer om de plaat te verzegelen met een hittebehandeling. Start de thermische cyclusprocedure nadat de verzegelde 96-well plaat met droplets is overgebracht naar de voorbereide thermocycler. Start het ddPCR droplet-reader-instrument en de aangesloten computer waarop de QX manager-software is geïnstalleerd en geconfigureerd. Nadat de thermische cyclus is voltooid, brengt u de verzegelde 96-well plaat over naar het droplet-reader-instrument. Klik in de QX manager-software op het icoon Add Plate om de knop Configure Plate te activeren, en configureer een nieuwe plaatindeling op basis van het experimentele ontwerp. Om de platinformatie onder het menu Create New Plate in te vullen, voert u de velden plate name, supermix en save in. Selecteer vervolgens Acquire Wells by Columns. Selecteer vervolgens onder het menu voor well-selectie de gewenste wells en klik op Include Selected Wells. Klik onder het menu voor well-informatie om automatisch de velden experiment type en assay type in te vullen en klik vervolgens op Apply om de details aan de geselecteerde wells toe te wijzen. Selecteer de individuele wells, voer de beschrijvingen van het monster en het target in, en klik vervolgens op Apply om de invoercondities van het target voor de geselecteerde wells aan te geven voordat u de run start. Nadat het proces van het lezen van de droplets is voltooid, klikt u op Browse onder het gedeelte data-analyse om het databestand te openen. Zodra de gegevens zijn geladen, klikt u op Plate Editor om de well-informatie te controleren. Keer terug naar de 2D amplitude-weergave. Selecteer de gewenste well uit de plaatindeling. Klik op het Settings-tandwielicoon om de schaal te kiezen en voer de drempelwaarden voor de assen in om de wild-type en mutante signalen te onderscheiden. Controleer de gerapporteerde concentratiewaarden van de mutante en wild-type signalen, weergegeven als kopie-aantallen per µL van de uiteindelijke 1x ddPCR-reactie. Beoordeel de kopie-aantallen per µL waarden over de wells binnen de plaat om de EGFR-mutatieniveaus in verschillende cellijnen te analyseren.Het Genesis-celisolatiesysteem met microfluïdische celvangst-slides isoleerde gemiddeld 78,1% van de toegevoegde A549-cellen en 90% van de H1975-cellen in bloedmonsters die 25 tot 250 cellen per milliliter bevatten. ddPCR-plots toonden positieve EGFR-mutatiesignalen in H1975-cellen, terwijl er geen mutatiesignalen werden gedetecteerd in de negatieve controle-A549-cellen.Dit protocol maakt sensitieve detectie en kwantificering van genetische mutaties in circulerende tumorcellen mogelijk, met EGFR als voorbeeld. Het behouden van een consistente herstelsnelheid en het waarborgen van de DNA-kwaliteit zijn cruciaal voor een nauwkeurige downstream mutatieanalyse. Toekomstig werk kan de mutatiepanels uitbreiden, longitudinale monitoring mogelijk maken en de analyse van circulerende tumorcellen en circulerend tumor-DNA integreren.

profiling-epidermal-growth-factor-receptor-dna-mutations-circulating

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Kankeronderzoek

In this video, we present a step-by-step procedure to generate emulsified nano-droplets to detect target nucleic acids by digital polymerase chain reaction or dPCR.

Droplet Digital Polymerase Chain Reaction: A Method to Generate Nanodroplet PCR Reactions for Detecting Rare Tumor Mutations

Het doel van deze video wijzen voor geautomatiseerde DNA-extractie van formaline gefixeerde in paraffine ingebedde (FFPE) referentiestandaard cellijnen en digitale druppeltje PCR (ddPCR) analyse zeldzame mutaties te detecteren in een klinische setting voeren. Detecteren van mutaties in FFPE monsters toont de klinische bruikbaarheid van ddPCR in FFPE monsters.

Gebruikmakend Digital Droplet PCR om BRAF V600E Mutaties Detect in formaline gefixeerde paraffine-ingebedde Reference Standard cellijnen

Er wordt een geïntegreerd systeem beschreven voor gerichte next-generation sequencing van oncologische monsters. Dit cross-platform systeem is geoptimaliseerd voor tumorbiopsies van lage kwaliteit en lage hoeveelheid, past zich aan lage DNA-inputs aan, omvat goed gekarakteriseerde multi-variant controles en beschikt over een nieuwe variant caller die wordt geïnformeerd door kwantitatieve pre-analytische kwaliteitscontrolemaatregelen.

Integratie van Nat en droog Bench Processen Optimaliseert Gerichte next-generation sequencing van lage kwaliteit en lage hoeveelheid tumorbiopten

Dit manuscript beschrijft een techniek voor het opsporen van mutaties van lage frequentie in ctDNA, ER-Seq. Deze methode is onderscheiden zich door het unieke gebruik van twee-directionele foutcorrectie, een speciale achtergrond filter en efficiënte moleculaire verwerving.

Detectie van zeldzame mutaties in CtDNA met behulp van de volgende generatie Sequencing

Dit protocol is te herstellen en zeldzame doelcellen een mengsel met de doelsoort achtergrond cellen voorbereiden moleculaire genetische karakterisering op het niveau van één cel. DNA kwaliteit is gelijk aan niet-behandelde afzonderlijke cellen en zorgt voor eencellige toepassing (beide screening gebaseerd en gerichte analyse).

Target cel pre verrijking en hele genoom versterking voor eencellige Downstream karakterisering

Detectie van circulerende RNA acid (cRNA) van bloed is een unmet behoefte in klinische diagnostiek. Hier beschrijven we methoden die kenmerkend zijn voor cRNA van niet-kleincellige longkanker kankerpatiënten met behulp van gevoelige en specifieke digitale polymerase-kettingreactie. De tests voldoen aan ontwerp te detecteren fusion varianten binnen 72 uur.

Een bloed-gebaseerd testen voor de detectie van ROS1 en RET Fusion Transcripts from circulerende RNA zuur met behulp van digitale Polymerase-kettingreactie

Hier presenteren we een protocol om meerdere genetische wijzigingen van een target gebied in een enkele reactie drop-off ddPCR met een unieke combinatie van hydrolyse sondes nauwkeurig te kwantificeren.

Één druppel digitale Polymerase-kettingreactie voor alomvattende en gelijktijdige detectie van mutaties in Hotspot regio 's

Hier presenteren we een protocol voor het opsporen van tumor somatische mutaties in het Circulerend DNA dat aanwezig is in patiënt biologische vloeistoffen (biovloeistoffen). Onze druppel digitale polymerase kettingreactie (dpcr)-gebaseerde methode maakt kwantificering van de tumor mutatie allel Frequency (MAF) mogelijk, waardoor een minimaal invasieve aanvulling op de diagnose en temporele monitoring van de tumorrespons wordt vergemakkelijkt.

Detectie en monitoring van tumor geassocieerd Circulerend DNA bij patiënt biovloeistoffen

We beschrijven de oprichting van orthotopische colorectale tumoren via injectie van tumorcellen of organoïden in de cecum van muizen en de daaropvolgende isolatie van circulerende tumorcellen (CTC's) uit dit model.

Isolatie van circulerende tumorcellen in een orthotopische muismodel van colorectale kanker

Een dierlijk model is nodig om het ontcijferen van de rol van circulerende tumorcellen (CTCs) bij de bevordering van longkanker kolonisatie tijdens kanker uitzaaiingen. Hier, we vastgesteld en met succes uitgevoerd een in vivo assay op specifiek proef de eis van polymere fibronectine (polyFN) vergadering over CTCs voor longkanker kolonisatie.

De oprichting van een Long kolonisatie Assay voor het circulerende Tumor visualisatie van de cel in de weefsels van de longen

Leer een methode voor het isoleren van circulerende tumorcellen uit bloed en het detecteren van EGFR-mutaties via ddPCR. Deze aanpak ondersteunt precisie-oncologie bij niet-kleincellig longcarcinoom.

Profilering van epidermale groeifactor-DNA-mutaties in circulerende zeldzame cellen met behulp van een celisolatiesysteem en druppeldigitale PCR (Video) | JoVE Journal

Profilering van epidermale groeifactor-DNA-mutaties in circulerende zeldzame cellen met behulp van een celisolatiesysteem en druppeldigitale PCR

Meer video's verkennen