ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol>
	<li>Mattick JS, et al. Long non-coding RNAs: definitions, functions, challenges and recommendations. Nat Rev Mol Cell Biol. 2023;24(6):430-447.</li>
	<li>Chen LL, Kim VN. Small and long non-coding RNAs: past, present, and future. Cell. 2024;187(23):6451-6485.</li>
	<li>Ferr&#232; F, Colantoni A, Helmer-Citterich M. Revealing protein-lncRNA interaction. Brief Bioinform. 2016;17(1):106-116.</li>
	<li>Yi W, Yan J. Decoding RNA-protein interactions: Methodological advances and emerging challenges. Adv Genet (Hoboken). 2025;6(2):2500011.</li>
	<li>Elguindy MM, Mendell JT. NORAD-induced PUMILIO phase separation is required for genome stability. Nature. 2021;595(7866):303-308.</li>
	<li>Gr&#228;we C, Stelloo S, Van Hout FAH, Vermeulen M. RNA-centric methods: Toward the interactome of specific RNA transcripts. Trends Biotechnol. 2021;39(9):890-900.</li>
	<li>Chu C, Chang HY. ChIRP-MS: RNA-directed proteomic discovery. Methods Mol Biol. 2018;1861:37-45.</li>
	<li>Chu C, et al. Systematic discovery of Xist RNA binding proteins. Cell. 2015;161(2):404-416.</li>
	<li>Suryo Rahmanto A, et al. K6-linked ubiquitylation marks formaldehyde-induced RNA-protein crosslinks for resolution. Mol Cell. 2023;83(23):4272-4289.e10.</li>
	<li>Sun W, et al. Genetically encoded chemical crosslinking of RNA in vivo. Nat Chem. 2023;15(1):21-32.</li>
	<li>Esteban-Serna S, McCaughan H, Granneman S. Advantages and limitations of UV cross-linking analysis of protein-RNA interactomes in microbes. Mol Microbiol. 2023;120(4):477-489.</li>
	<li>Welp LM, et al. Chemical crosslinking extends and complements UV crosslinking in analysis of RNA/DNA nucleic acid-protein interaction sites by mass spectrometry. Nucleic Acids Res. 2025;53(15).</li>
	<li>McHugh CA, Guttman M. RAP-MS: A method to identify proteins that interact directly with a specific RNA molecule in cells. Methods Mol Biol. 2018;1649:473-488.</li>
	<li>Lewandowski JP, et al. The Tug1 lncRNA locus is essential for male fertility. Genome Biol. 2020;21(1):237.</li>
	<li>Wang S, et al. LncRNA Tug1 maintains blood-testis barrier integrity by modulating ccl2 expression in high-fat diet mice. Cell Mol Life Sci. 2022;79(2):114.</li>
	<li>Li Y, et al. The landscape of RNA binding proteins in mammalian spermatogenesis. Science. 2024;386(6720).</li>
	<li>Xu Q, et al. Enhanced Crosslinking Immunoprecipitation (eCLIP) Method for Efficient Identification of Protein-bound RNA in Mouse Testis. J Vis Exp. 2019;(147):59681.&#160;</li>
	<li>Raj A, Van Den Bogaard P, Rifkin SA, Van Oudenaarden A, Tyagi S. Imaging individual mRNA molecules using multiple singly labeled probes. Nat Methods. 2008;5(10):877-879.</li>
	<li>Urdaneta EC, et al. Purification of cross-linked RNA-protein complexes by phenol-toluol extraction. Nat Commun. 2019;10(1):990.</li>
	<li>Van Nostrand EL, et al. Robust transcriptome-wide discovery of RNA-binding protein binding sites with enhanced CLIP (eCLIP). Nat Methods. 2016;13(6):508-514.</li>
	<li>Van Nostrand EL, et al. A large-scale binding and functional map of human RNA-binding proteins. Nature. 2020;583(7818):711-719.</li>
	<li>Dun MD, Aitken RJ, Nixon B. The role of molecular chaperones in spermatogenesis and the post-testicular maturation of mammalian spermatozoa. Hum Reprod Update. 2012;18(4):420-435.</li>
	<li>Urdaneta EC, Beckmann BM. Fast and unbiased purification of RNA-protein complexes after UV cross-linking. Methods. 2020;178:72-82.</li>
	<li>Greenberg JR. Ultraviolet light-induced crosslinking of mRNA to proteins. Nucleic Acids Res. 1979;6(2):715-732.</li>
	<li>Rinn JL, et al. Functional demarcation of active and silent chromatin domains in human HOX loci by noncoding RNAs. Cell. 2007;129(7):1311-1323.</li>
	<li>Clemson CM, et al. An architectural role for a nuclear noncoding RNA: NEAT1 RNA is essential for the structure of paraspeckles. Mol Cell. 2009;33(6):717-726.</li>
	<li>Chen H, et al. Dissecting mammalian spermatogenesis using spatial transcriptomics. Cell Rep. 2021;37(5):109915.</li>
	<li>Hafner M, et al. CLIP and complementary methods. Nat Rev Methods Primers. 2021;1(1):20.</li>
	<li>Ramanathan M, Porter DF, Khavari PA. Methods to study RNA-protein interactions. Nat Methods. 2019;16(3):225-234.</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>0.25% Trypsin-EDTA Solution</td><td>Gibco</td><td>25200056</td><td>voor weefsel dissociatie en bereiding van eencellen suspensie</td></tr><tr><td>100% Ethanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>459844</td><td>voor RNA opruiming</td></tr><tr><td>AffinityScript Reverse Transcriptase</td><td>Agilent</td><td>600107</td><td>voor eCLIP cDNA synthese</td></tr><tr><td>Anti-CCT3 Antilichaam</td><td>Abcam</td><td>Ab225878</td><td>antilichaam voor eCLIP</td></tr><tr><td>Anti-PABPC1 Antilichaam</td><td>Abcam</td><td>Ab312314</td><td>antilichaam voor eCLIP</td></tr><tr><td>Chloroform</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C2432</td><td>voor RNA extractie</td></tr><tr><td>Collageenase Type IV</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C5138</td><td>voor enzymatische dissociatie van testiculaire weefsel</td></tr><tr><td>Defosforyleringsreagentia (T4 PNK)</td><td>New England Biolabs</td><td>M0201S</td><td>voor eCLIP RNA defosforylering</td></tr><tr><td>DMEM Hoog Glucose Medium</td><td>Gibco</td><td>11965092</td><td>voor celkweek en weefsel dissociatie buffer</td></tr><tr><td>Dynabeads MyOne Streptavidin C1 Magnetische Kralen</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>65001</td><td>voor het vastleggen van biotinyleerde probe-RNA-eiwit complexen</td></tr><tr><td>DynaMag-15 Magneet</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12301D</td><td>voor magnetische kralenscheiding</td></tr><tr><td>DynaMag-2 Magneet</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12321D</td><td>voor magnetische kralenscheiding</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E9884</td><td>voor het cheleren van divalente cationen in lysis- en wasbuffers</td></tr><tr><td>Exonuclease I</td><td>New England Biolabs</td><td>M0293S</td><td>voor eCLIP cDNA zuivering</td></tr><tr><td>Foetaal Rund Serum (FBS)</td><td>Gibco</td><td>10099141C</td><td>voor het stoppen van trypsine spijsvertering</td></tr><tr><td>Formamide</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM9342</td><td>voor hybridisatie buffer bereiding</td></tr><tr><td>Hybridisatie Oven</td><td>TUOHE</td><td>LF-I</td><td>voor sonde hybridisatie en kralen wassen</td></tr><tr><td>Laag-Smelt Temperatuur Agarose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9414</td><td>voor eCLIP bibliotheek grootte selectie</td></tr><tr><td>MinElute Gel Extractie Kit</td><td>Qiagen</td><td>28604</td><td>voor eCLIP bibliotheek grootte selectie</td></tr><tr><td>miRNeasy Mini Kit</td><td>Qiagen</td><td>217004</td><td>voor RNA zuivering</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7653</td><td>voor het bereiden van hoge zout wasbuffer</td></tr><tr><td>Nitrocellulose Membraan</td><td>GE Healthcare / Amersham</td><td>10600002</td><td>voor eCLIP western blot overdracht</td></tr><tr><td>NP-40</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>85125</td><td>voor wasbuffer detergent</td></tr><tr><td>Nuclease- en protease-vrij water</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10977035</td><td>voor het bereiden van nuclease-vrije oplossingen</td></tr><tr><td>NuPAGE 4-12% Bis-Tris Gel</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>NP0322BOX</td><td>voor eCLIP grootte selectie</td></tr><tr><td>NuPAGE Bis-Tris Precast Gels</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>NP0321BOX</td><td>voor SDS-PAGE eiwitscheiding</td></tr><tr><td>PBS (pH 7.4)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10010023</td><td>voor cel wassen en resuspenderen</td></tr><tr><td>Fenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7626</td><td>serine protease remmer voor cel lysis buffer; vers toegevoegd voor gebruik</td></tr><tr><td>Protease Inhibitor Cocktail</td><td>Roche</td><td>4693132001</td><td>breed-spectrum protease remmer voor cel lysis buffer; vers toegevoegd voor gebruik</td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4850</td><td>voor eiwit spijsvertering in RNA extractie</td></tr><tr><td>qRT-PCR Master Mix</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11704044</td><td>voor kwantitatieve RT-PCR om RNA verrijking te bevestigen</td></tr><tr><td>RNase/Protease-Vrije DNase I Oplossing</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>EN0521</td><td>voor weefsel dissociatie</td></tr><tr><td>RNeasy Mini Kit</td><td>Qiagen</td><td>74104</td><td>voor RNA zuivering</td></tr><tr><td>SDS-PAGE Sample Loading Buffer</td><td>Beyotime</td><td>P0286</td><td>voor eiwit monster voorbereiding</td></tr><tr><td>Garnaal Alkalische Fosfatase</td><td>New England Biolabs</td><td>M0371S</td><td>voor eCLIP cDNA zuivering</td></tr><tr><td>Zilver Stain Kit</td><td>Beyotime</td><td>P00175</td><td>voor het visualiseren van eiwitten in SDS-PAGE gels</td></tr><tr><td>Natrium Deoxycholate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D6750</td><td>voor wasbuffer detergent</td></tr><tr><td>Natrium dodecylsulfaat (SDS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L3771</td><td>voor cel lysis en eiwit denaturatie</td></tr><tr><td>Superase-in RNase Remmer</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM2694</td><td>speciale RNase remmer; vers toegevoegd voor gebruik</td></tr><tr><td>T4 RNA Ligase</td><td>New England Biolabs</td><td>M0204</td><td>voor eCLIP adapter ligatie</td></tr><tr><td>Tris&ndash;HCl (pH 7.0)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T5941</td><td>voor het bereiden van lysis, hybridisatie en was buffers</td></tr><tr><td>TRIzol Reagent</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15596026CN</td><td>voor RNA extractie</td></tr><tr><td>Ultrasoon cel breker</td><td>ATPIO</td><td>ATPIO-650D</td><td>voor cel lysis en DNA fragmentatie</td></tr><tr><td>Ultraviolet Crosslinker</td><td>Analytik Jena</td><td>UVP CL-1000</td><td>voor UV crosslinking van RNA-eiwit interacties</td></tr><tr><td>ureum</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>U5128</td><td>voor eCLIP eiwit degradatie op membraan</td></tr></tbody></table>

een uv-gebaseerde chirp-methode voor de verifieerbare identificatie van eiwitten die direct interageren met lncrna: van gekweekte cellen tot muistestikels

A UV-Based ChIRP Method For The Verifiable Identification of Proteins That Directly Interact With LncRNA: From Cultured Cells To Mouse Testis

Een UV-gebaseerde ChIRP-methode voor de verifieerbare identificatie van eiwitten die direct interageren met LncRNA: van gekweekte cellen tot muistestikels

Long non-coding RNAs (lncRNAs) have emerged as important regulators of diverse biological processes. However, the molecular mechanisms underlying the ...

Ons onderzoek heeft cPDiRT ontwikkeld, een UV-crosslinkingmethode om interacties tussen RNA en eiwitten direct in kaart te brengen in zowel gekweekte cellen als in natuurlijk weefsel, zoals de testes, en om de moleculaire mechanismen van TUG1 bij de spermatogenese te ontrafelen. Dit protocol maakt het mogelijk om interacties tussen RNA en eiwitten direct in kaart te brengen in een breder scala aan systemen, van gekweekte cellen tot intact natuurlijk weefsel. Begin met het drie keer wassen van de GC2-cellen met PBS om resten van het kweekmedium te verwijderen.Voeg vervolgens drie milliliter PBS toe aan de schaal en verdeel dit gelijkmatig vóór het crosslinken. Bestraal de cellen in een ultraviolette crosslinker van 254 nanometer met een dosis van 4.000 millijoules per vierkante centimeter. Verzamel de cellen in PBS en centrifugeer de celsuspensie bij 3000G gedurende vijf minuten bij vier graden Celsius.Gooi het supernatant weg, weeg het pellet en bevestig dat de minimale pelletmassa 500 milligram per monster bedraagt. Verzamel de testikels van vier weken oude mannelijke C57BL6-muizen. Was het gedecapsuleerde testikelweefsel tweemaal met 5 tot 10 milliliter DMEM.Incubeer vervolgens 100 mg weefsel met 10 mL DMEM bevatten 1 mg/mL collagenase IV bij 37 °C. Zet de digestie voort gedurende 5 tot 15 minuten totdat de zaadbuisjes zijn vrijgekomen. Centrifugeer de suspensie daarna bij 1000G gedurende één minuut bij 4 °C en verwijder het supernatant.Was de pellet met 5 tot 10 milliliters DMEM. Centrifugeer de suspensie opnieuw bij 1000G gedurende één minuut bij vier graden Celsius. Resuspendeer de pellet vervolgens in 0,25% trypsine bevattend één milligram per milliliter deoxyribonuclease I. Incubeer de suspensie bij 37 graden Celsius gedurende 5 tot 15 minuten.Voeg vervolgens een gelijk volume DMEM aan, aangevuld met 10%FBS, om de enzymatische digestie te stoppen. Filtreer de suspensie door een cellzeef van 70 micrometer. Centrifugeer de cellen bij 2000G gedurende vijf minuten bij vier graden Celsius.Verwijder het supernatant en was het pellet met 5 tot 10 milliliters PBS. Centrifugeer de suspensie opnieuw bij 2000G gedurende vijf minuten bij vier graden Celsius. Resuspendeer de enkelcel-suspensie in PBS en verdeel deze gelijkmatig over een 15-centimeter kweekschaal.Crosslink de testiculaire cellen zoals eerder gedemonstreerd voor GC2-cellen. Laat de bestraling weg voor de controlecellen. Verzamel de gecrosslinkte cellen.Centrifugeer de suspensie bij 3000G gedurende vijf minuten bij vier graden Celsius en gooi het supernatant weg. Zorg voor een minimale pelletmassa van 500 milligram door testiculaire cellen te poolen die geïsoleerd zijn van ten minste 10 tot 12 muizen. Resuspendeer de pellet na het wegen in cellysebuffer in een verhouding van 100 milligram pellet per één milliliter buffer.Sonicate het monster na het vortexen met een gefocuste ultrasone cleaner of een waterbad-sonicator totdat het lysaat visueel helder wordt. Verdeel vervolgens ongeveer 10 µL van het lysaat in microcentrifugebuisjes voor RNA- en eiwitanalyse. Voeg 30 µL vooraf gewassen magnetische beads toe aan het lysaat.Incubeer de monsters 30 minuten bij 37 °C met voorzichtig mengen in een hybridisatieoven. Plaats de monsters ongeveer één minuut op een magnetische standaard of totdat de oplossing helder wordt. Breng het geklaarde lysaat over naar een nieuwe buis.Plaats de nieuwe buis op het magnetische rek. Draag het lysaat vervolgens over naar een andere buis om eventuele resterende beads te verwijderen. Voeg aan elk monster twee volumes hybridisatiebuffer toe die is voorverwarmd tot 37 °C.Voeg gebiotineerde DNA-sondes toe in een verhouding van één microliter 100 micromolair sonde-stockoplossing per één milliliter lysaat. Incubeer de monsters gedurende 12 tot 16 uur bij 37 graden Celsius met end-over-end rotatie in een hybridisatieoven. Was vlak voor gebruik 100 microliters streptavidine-magnetische kralen drie keer met cellysebuffer.Verwijder vervolgens de resterende buffer na de laatste wasbeurt. Centrifugeer de hybridisatiereactiebuisjes kort. Voeg daarna het gehybridiseerde monster toe aan de gewassen beads en meng dit voorzichtig.Breng de kraal-suspensie terug in de oorspronkelijke buis en incubeer deze 30 tot 40 minuten bij 37 °C onder menging. Centrifugeer de monsters na incubatie kortstondig. Plaats de buizen één tot twee minuten op een magneethouder, of totdat de oplossing helder wordt.Verwijder vervolgens het supernatant. Om de beads te wassen, voegt u één milliliter van de wasbuffer toe en incubeert u de buisjes in de hybridisatieoven bij 37 °C gedurende vijf minuten. Na vijf wasbeurten brengt u 1-10% van de beads over naar een nieuw buisje voor RNA-analyse.Voeg tot slot 40 µL 1X SDS-monsterbuffer toe aan de resterende beads. Kook de monsters 30 minuten lang bij 95 °C om de eiwitten te elueren en de cross-links ongedaan te maken. Herwin de eiwitten voor verdere analyse middels massaspectrometrie.Analyse via ChIRP-massaspectrometrie identificeerde meer dan 190 eiwitten die verrijkt waren ten opzichte van de negatieve controle in GC2-cellen. Bij een UV-dosis van 4 000 millijoules per vierkante centimeter identificeerde cPDiRT-MS een selectievere set eiwitten. Meer dan tweederde van deze eiwitten overlapte met de eiwitten die waren geïdentificeerd via conventionele ChIRP-MS.De meeste eiwitten die werden geïdentificeerd met ten minste twee unieke peptiden, werden reproduceerbaar gedetecteerd in biologische replica's van zowel GC2-cellen als muizenteisjes. Gene ontology-analyse van de reproduceerbaar geïdentificeerde eiwitten onthulde biologische processen die grotendeels consistent waren met de bekende functies van TUG1. Vergelijking van de datasets van de GC2-cellen en muizenteisjes identificeerde 15 eiwitten die gemeenschappelijk verrijkt waren.Verbeterde cross-linking immunoprecipitation sequencing onthulde duidelijke en specifieke bindingspieken op het TUG1-transcript voor PABPC1 en CCT3. cPDiRT stelt onderzoekers in staat om eiwitten te identificeren en te kwantificeren die direct interageren met specifiek gekoppeld RNA, zowel in kweekcellen als in native weefsels. De belangrijkste uitdaging is het bereiken van een efficiënte UV-cross-linking, terwijl een hoge specificiteit voor directe RNA- en eiwitinteracties wordt gewaarborgd.Ons protocol zal toekomstige studies ondersteunen om deze aanpak toe te passen op andere RNA's en weefsels, om zo de directe interactie tussen RNA en proteïnen tijdens de ontwikkeling en voortplanting in kaart te brengen.

a-uv-based-chirp-method-for-verifiable-identification-proteins-that

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Biochemie

Een stap voor stap-protocol om het isoleren en identificeren van RNA bijbehorende complexen door middel van RIP-Chip.

Werkwijze voor het isoleren en identificeren van mRNAs, microRNA en eiwitcomponenten van ribonucleoproteïne complexen uit celextracten met RIP-Chip

Chirp is een nieuwe en snelle techniek om genomische bindingsplaatsen van niet-coderende RNA's lang (lncRNAs) in kaart te brengen. De methode maakt gebruik van de specificiteit van anti-sense oligonucleotiden tegels aan de lijst van lncRNA-gebonden genomische locaties mogelijk te maken.

Chromatine Isolatie door RNA-zuivering (Chirp)

Wij presenteren een variatie van de QUICK (kwantitatieve Immunoprecipitatie combinatie met Knockdown) benadering die eerder werd onderscheid te maken tussen echte en valse eiwit-eiwit interacties. Onze aanpak is gebaseerd...

Een protocol voor de identificatie van eiwit-eiwit interacties op basis van<sup&gt; 15</sup&gt; N Metabole Labeling, Immunoprecipitatie, kwantitatieve Massaspectrometrie en Affiniteit Modulatie

This video demonstrates the enhanced crosslinking immunoprecipitation (eCLIP) method for identifying RNA-binding proteins in mouse testis. eCLIP enables the precise identification of binding sites where RNA-binding proteins (RBPs) interact with their target RNAs.

An Enhanced Crosslinking Immunoprecipitation Method for Efficient Identification of Protein-bound RNA in Mouse Testes

SILAC immunoprecipitatie experimenten vormen een krachtig middel voor het ontdekken van nieuwe eiwit: eiwit interacties. Doordat de nauwkeurige relatieve kwantificering van eiwitgehalte in zowel controle monsters, waar interacties gemakkelijk kan worden onderscheiden van experimenteel verontreinigingen en lage affiniteit interacties bewaard door het gebruik van minder stringente buffer omstandigheden.

Identificatie van eiwit interacties Partners in zoogdiercellen behulp SILAC-immunoprecipitaties Kwantitatieve Proteomics

Luminofore identificatie van functionele elementen in 3’ niet-getransleerde gebieden (3’UTR's) (3’LIFE) is een techniek om functionele regulatie in 3’UTR's door miRNA's of andere regulerende factoren te identificeren. Dit protocol maakt gebruik van high-throughput methodologie zoals 96-well transfectie en luciferase assays om honderden vermeende interacties voor functionele repressie te screenen.

Detectie van miRNA Doelen in High-throughput Met de 3&#39;LIFE Assay

We hebben een werkwijze voor het zuiveren van eiwitten mederegulerende interactie met de LC-MS / MS systeem.

Een eiwit Bereidingswijze voor de High-throughput identificatie van eiwitten Interactie met een nucleair Cofactor Met behulp van LC-MS / MS Analysis

Deze RNA pull-down methode kunt identificeren van de RNA-doelstellingen van een lang niet-coderende RNA (lncRNA). Gebaseerd op de kruising van zelfgemaakte, ontworpen anti-zin DNA oligonucleotide sondes specifiek voor deze lncRNA in een passende vaste weefsel of cellijn, hierdoor efficiënt de opname van alle RNA doelen met de lncRNA.

RNA Pull-down te identificeren van RNA doelen van een lang niet-coderende RNA Procedure

Dit verslag wordt een snelle en betrouwbare methode voor het valideren van mRNA doelstellingen van cellulaire miRNAs beschreven. Het gebruik van de methode synthetische biotinyleerd vergrendeld nucleïnezuur LNA gebaseerde miRNA bootst te vangen target mRNA. Vervolgens daar beklede magnetische kralen pulldown worden gebruikt de doelstelling mRNA voor kwantificering van qPCR polymerase-kettingreactie.

Biotine gebaseerde Pulldown Assay te valideren mRNA doelstellingen van cellulaire miRNAs

Hier presenteren we een eCLIP protocol om de belangrijkste RNA doelen van RBP kandidaten in testis te bepalen.

Verbeterde crosslinking Immunoprecipitation (eCLIP) methode voor efficiënte identificatie van proteïne-verbindend RNA in muis testis

Nanjing Medical University.  Een UV-gebaseerde ChIRP-methode om directe interacties tussen lncRNA en eiwitten te identificeren.

Een UV-gebaseerde ChIRP-methode voor de verifieerbare identificatie van eiwitten die direct interageren met LncRNA: van gekweekte cellen tot muistestikels

Meer video's verkennen