Name: Protocollen voor microapplicator-geassisteerde Infectie van lepidoptera Larven met Baculovirus (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-08-23T13:32:00.000+00:00
Duration: 10 min 40 s
Description: Leer microapplicator-technieken voor het infecteren van lepidoptera-larven met baculovirus. Deze methoden omvatten directe injectie van budded virus en orale inoculatie van polyhedra voor bioassays.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ga naar <a href="http://www.springerprotocols.com/Abstract/doi/10.1007/978-1-59745-457-5_18">Springer Protocols</a> voor meer informatie over de engineering baculovirus als een insecidical agent en de microapplicator technieken die in deze test.

De auteurs hebben niets te melden.

protocollen voor microapplicator-geassisteerde infectie van lepidoptera larven met baculovirus

Protocols for Microapplicator-assisted Infection of Lepidopteran Larvae with Baculovirus

Baculovirussen worden op grote schaal gebruikt als eiwit-expressievectoren en als insecten ongediertebestrijding agenten. . Deze video laat zien hoe lepidoptera larven kunnen besmet zijn met microapplicator technieken in de darm met baculovirus veelvlakken en in de hemolymfe met geoculeerd virus. Dit begeleidende Springer Protocols gedeelte geeft een overzicht van de baculovirus levenscyclus en het gebruik van baculovirussen als insecticide agenten. Formulering en toepassing van baculovirussen voor plaagbestrijding die doeleinden zijn elders beschreven.

In deze video, tonen we twee microapplicator technieken die worden gebruikt om infecteren van lepidoptera larven met baculovirus om insecten efficiency te bepalen.

Protocollen voor microapplicator-geassisteerde Infectie van lepidoptera Larven met Baculovirus

Baculovirussen worden op grote schaal gebruikt, zowel als eiwitexpressievectoren als voor de bestrijding van insectenplagen. Deze video laat zien hoe lepidoptera-larven kunnen worden...

Hoewel het arthropoden-specifieke baculovirus wordt gebruikt als standaard onderzoeksinstrument voor eukaryote eiwitexpressiesystemen, wordt het ook ontwikkeld als een milieuvriendelijk insecticide dat herbivore insecten, zoals lepidoptera in de natuur, kan doden. Lepidoptera-larven raken geïnfecteerd met baculovirussen wanneer zij geïnfecteerd loof eten. De larven of rupsen nemen het baculovirus op in een vorm die bekend staat als een polyhederon, wat een complex is van viruspartikels verpakt in een grote kristallijne proteïnestructuur die het virus beschermt tegen uitdroging.Zodra de larve is geïnfecteerd, verspreidt het virus de infectie binnen het insect. Het virus kaapt het machinerie voor de synthese van nucleïnezuren en eiwitten van de gastheer om meer virus en polyhedra te produceren. Uiteindelijk raken de larven zo grondig geïnfecteerd met het virus dat ze oplossen in een stroperige massa van polyhedra die op plantoppervlakken druppelt die door het insect worden gegeten, waarna de cyclus opnieuw begint om de insecticide effectiviteit van een specifieke Baca te bepalen.Technieken voor micro-applicatoren van virusstammen en bioassays kunnen worden gecombineerd. Leid-larven kunnen worden geïnfecteerd door injectie van het virus direct in de hemosol of de lichaamsholte, waarna de mortaliteitspercentages kunnen worden beoordeeld. Daarnaast kunnen larven worden geïnfecteerd met polyhedra via orale injectie met behulp van een micro-applicator, waarbij de timing van de infectie van de darm en andere weefsels kan worden geanalyseerd.Hallo, ik ben Wendy Sparks uit het laboratorium van Brian E. Boning van de afdeling Entomologie aan de Iowa State University, en ik ben ook verbonden aan Boning Lab. Vandaag laten we u twee procedures zien voor het infecteren van lab-kweek-Drosophila met het baculovirus. Beide methoden maken gebruik van een micro-applicator.Ten eerste laat ik u zien hoe u een micro-applicator gebruikt om het lichaamsvirus via de prole in de heni brengt. Vervolgens laat ik u zien hoe u de micro-applicator gebruikt om de polyheader via de mouse in de mid guard brengt. Laten we beginnen.Wanneer ze worden ontwikkeld voor insecticide doeleinden, bevatten balo-virussen gewoonlijk het polyedergen om orale infectie van plaaglarven te vergemakkelijken. Er zijn echter soms redenen om een polyeder-negatief baccula-virus te testen op potentiële insecticide effecten of om de darmen van een insect te omzeilen. In dat geval kan injectie van het gebudde virus met behulp van een micro-applicator worden uitgevoerd om de larven te infecteren voordat de assay wordt gestart.De titer van de werkvoorraad van het gebutte virus moet worden bepaald met behulp van een plaque-assay of endpoint-verdunningsassays. Voor fysiologische experimenten zouden injecties van five times 10 to the fourth PFU per vijfde instar H VNS typisch zijn. Om deze bioassay te starten, wordt elke verdunning van het gebutte virus geladen in een plastic one cc to hercule spuit met een scherpe naaldpunt van 28,5 of 32 gauge.Meestal kunnen één tot drie microliter van een verdunde virusoplossing, met een titer van 10⁷ tot 10⁸ per milliliter, per larve worden gebruikt, waardoor het laden van 300 tot 500 microliter in de spuit voor de meeste doeleinden voldoende is. Drijf vervolgens luchtbellen uit de spuit door deze rechtop te houden zodat de lucht naar de naaldpunt beweegt, en doseer deze.Bevestig vervolgens de spuit aan de ondersteuningsbuis voor de spuit. Stel nu het volume in op 1,0 microliter. Kalibreer voor elke druppel eerst de microprocessor-besturingseenheid van de micro-applicator om te garanderen dat het juiste volume wordt gedoseerd; de snelheid waarmee de druppel wordt gedoseerd kan worden ingesteld op een schaal van nul tot negen.Er wordt gewoonlijk een bereik van nul tot één gebruikt. Druk op de voetpedaal om te controleren of de oplossing correct wordt gedoseerd. Houd er rekening mee dat wanneer er te veel oplossing wordt gedoseerd of als de toediening te traag verloopt, de volume- en snelheidsinstellingen kunnen worden aangepast totdat het juiste volume oplossing met de juiste snelheid wordt toegediend.Ik ben nu klaar om te beginnen met de injectie voor H VNS-infectie. Larven in het vroege vijfde stadium worden doorgaans geïnjecteerd, aangezien de grotere omvang van de latere stadia het injectieproces vergemakkelijkt. Steek de naaldpunt door de plana van een van de prolegs en in de lichaamsholte.Let op: wanneer de naaldpunt in de prole wordt ingebracht, verandert de positie van het larvenlichaam. Druk nu vier keer op de voetschakelaar om vier µL van de virusoplossing in de hemo seal te injecteren, om beschadiging van het darmkanaal en de lichaamswand te voorkomen. Plaats na voltooiing van de injecties alle larven terug in de incubator op 28 °C. Controleer regelmatig op dode larven en zorg ervoor dat er voldoende voedsel beschikbaar is voor de overlevende larven.Hoewel late stadia niet sterven door beschadiging van de cuticula als gevolg van de injectie, moeten de larven 24 uur na injectie nog steeds worden gecontroleerd op beschadiging van het darmkanaal, wat het gevolg kan zijn van een bacteriële infectie. Deze vroege mortaliteit moet worden uitgesloten van de data-analyse. Indien de met een micro-applicator ondersteunde bioassay met gebutteerd virus wordt gebruikt voor bioassays voor de letale concentratie, moet de bioassay drie of vier keer op verschillende tijdstippen worden herhaald.Gebruik 30 individuen per dosis voor elke virusbehandeling of controlebehandeling. Gebruik een geschikt programma voor probit-analyse, zoals polo of SAS, om de lc 50-waarden, 95%-betrouwbaarheidsintervallen en de relevante statistieken te berekenen. Deze bioassay kan ook worden gebruikt om ST 50-overlevingstijdwaarden te bepalen na inoculatie met een vaste dosis virus.In dit geval wordt de mortaliteit van de larven elke vier tot acht uur gescoord, met frequentere observaties. Indien de mortaliteitssnelheid hoog is, worden de mediane overlevingstijden binnen de 95% betrouwbaarheidsgrenzen berekend met de Kaplan-Meier-estimator via een S-plus- of SAS-programma. Nu Harran u de bioassay met behulp van een micro-applicator met het butted virus heeft voorgedaan.Ik zal u de assay laten zien. Bij het gebruik van polyhedra wordt orale inoculatie van polyhedra direct in het darmkanaal van het insect toegepast wanneer de exacte timing van de infectie kritiek is. Bijvoorbeeld bij het monitoren van hoe het virus zich binnen het insect verspreidt. Om deze assay te starten, suspendeert u polyhedra in een neutraal drijvende oplossing van glycerine en water in een verhouding van 3:2, met een concentratie van 10 tot 300.Polyhedra kunnen bijvoorbeeld worden gebruikt voor het vierde stadium van h ance. Laad deze oplossing vervolgens in een plastic of glazen tuberculinespuit van 1 CC met een stompe naald van 32 gauge. Plaats de spuit op de steunbuis van de micro-applicator terwijl u door een microscoop kijkt.Houd de sterlarve in het vierde of vijfde stadium vast, steek de naald door de mond in het voorste gedeelte van de middendarm en breng vervolgens de polyhedra in. Deze techniek vereist enige oefening. Ten eerste kan het lastig zijn om de larven met handschoenen vast te houden zonder ze te pletten.Ten tweede is er enige oefening nodig om de naald langs de monddelen te manoeuvreren. Wij raden aan om te oefenen met het inoculeren van ongeveer 30 larven met PBS. Mocht u per ongeluk de darm doorprikken, dan is dit duidelijk zichtbaar omdat de larven snel melaniseren en zwart worden.Omdat orale inoculatie met behulp van een micro-applicator het exacte tijdstip van infectie vastlegt, is deze methode het meest nuttig voor experimenten waarbij het infectietijdstip van belang is om te bepalen hoe het virus zich in het insect verspreidt. Bijvoorbeeld, virussen die bèta-galactosidase tot expressie brengen, kunnen oraal worden geïnoculeerd in larven, die vervolgens op verschillende tijdstippen worden gedisseceerd om te bepalen welke weefsels geïnfecteerd raken. We tonen u twee methoden voor infectie met behulp van een micro-applicator in insecten met virus. De eerste is directe inoculatie via de proleg van het insect met het virus, wat het mogelijk maakt om de darmfysiologie te omzeilen en de letaliteit en de dodelijke tijd van het virus waarin u geïnteresseerd bent, te beoordelen.De tweede techniek was directe inoculatie in de middendarm met behulp van polyhedra. Hiermee kan een zeer precieze dosis rechtstreeks in de middendarm worden toegediend, terwijl er ook een zeer nauwkeurige controle over het tijdstip van de gebeurtenis mogelijk is. Vervolgens kunnen de mortaliteit en andere fenotypen van het virus worden bestudeerd.Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om te onthouden dat de door het cadavers baula-virus gedode larven doorgaans fragiel zijn en gemakkelijk kunnen scheuren, waarbij het virus vrijkomt. Steriliseer daarom de werkoppervlakken en voer besmette handschoenen en wegwerpmaterialen op een passende wijze af om contaminatie te voorkomen. Dat is alles.Bedankt voor het kijken. Veel succes met uw experiment.

protocols-for-microapplicator-assisted-infection-lepidopteran-larvae

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

In deze video, tonen we aan orale infectie technieken van lepidoptera larven met baculovirus om insecten efficiency te bepalen.

Protocollen voor orale infectie van lepidoptera Larven met Baculovirus

De hier beschreven methode maakt gebruik van directe injectie van entomopathogene bacteriën in de hemocoel...

Opfok en Injectie van<em&gt; Manduca sexta</em&gt; Larven naar bacteriële virulentie beoordelen

This video demonstrates a method to establish a Mycobacterium bovis infection model in the larvae of the greater wax moth, Galleria mellonella. A bioluminescent strain of Mycobacterium bovis BCG is injected into the hemolymph of the larva to establish infection, and the bioluminescence is measured at predefined intervals to study the progress of infection.

A Technique to Establish a Bacterial Infection Model in Insect Larvae

This video showcases the in vivo bacterial burden measurement using Bacillus Calmette-Guérin, BCG, lux-infected insect larvae. The process involves larval homogenization, treatment with a luciferase substrate, and bioluminescence measurement to determine relative light units that correlate with bacterial burden.

Measurement of the In Vivo Burden of Bacteria Expressing Luciferase in an Insect Larva

De mediterrane fruitvlieg (Ceratitis capitata) (Diptera: Tephritidae) is een wereldwijde plaag in de landbouw. Een dieper begrip van zijn biologie is cruciaal voor het beheersen van fruitvliegpopulaties en daarmee het verminderen van de economische impact. Micro-injectie van embryo's is een fundamenteel hulpmiddel dat zowel transformatie van de kiemlijn als reverse genetica studies in deze soort mogelijk maakt.

Levering van nucleïnezuren door middel van Embryo micro-injectie in de Worldwide Landbouw Pest Insect,<em&gt; Middellandse-Zeevlieg</em

Dit protocol beschrijft een warmte schok-geïnduceerde proteïne expressie systeem (pDHsp/V5-zijne/sf9 cel), die kan worden gebruikt voor het uitdrukken van vreemde proteïnen of evaluatie van de anti-apoptotic activiteit van potentiële buitenlandse eiwitten en hun afgeknotte amino zuren in insect cellen.

Voorbijgaande expressie van buitenlandse genen in Insect cellen (sf9) voor eiwit functionele Assay

In dit protocol is baculovirus geproduceerd door voorbijgaande transfectie van baculovirus plasmide in Sf9 cellen en versterkt in een serumvrij schorsing cultuur. De bovendrijvende substantie is gezuiverd door de chromatografie van de affiniteit van heparine en verder geconcentreerd door ultracentrifugatie. Dit protocol is handig voor de productie en zuivering van baculovirus voor gen-therapie-toepassing.

Productie en zuivering van Baculovirus voor toepassing van de gentherapie

Hier presenteren we een protocol om te produceren huis vliegen carboxylesterase eiwitten in vitro met een baculovirus gemedieerde insect cel expressie systeem en later functioneel karakteriseren van hun rollen in metaboliseringssysteem permethrin, daarmee overdracht van pyrethroïde weerstand door het uitvoeren van cel-gebaseerde MTT assay en in vitro metabole studies.

Functionele karakterisering van Carboxylesterases in Insecticide resistente huis vliegt, Musca Domestica

Hier presenteren we de protocollen voor het gebruik van het insect cel en baculovirus eiwit expressie systeem voor de productie van grote hoeveelheden uitgescheiden eiwithoudende gewassen voor eiwit kristallisatie. Een vector baculovirus expressie is gewijzigd met GP67 of insect hemolin signaal peptide voor plant secretie eiwituitdrukking in insect cellen.

Wijzigen Baculovirus expressievectoren voor de productie van plantaardige eiwitten in Insect cellen uitgescheiden

Het baculovirus expressie vectorsysteem (BEVS) is een robuust platform voor expressiescreening en productie van eiwit arginine methyltransferases (PRMT's) voor biochemische, biofysische en structurele studies. Milligram hoeveelheden materiaal kunnen worden geproduceerd voor de meerderheid van PRMT's en andere eiwitten van belang die een eukaryotische expressie platform vereisen.

Productie van recombinante PRMT-eiwitten met behulp van het Baculovirus Expression Vector System

Structurele en biochemische studies van menselijke membraantransporters vereisen milligramhoeveelheden stabiel, intact en homogeen eiwit. Hier beschrijven we schaalbare methoden om transporteurs van menselijke opgeloste stoffen te screenen, tot expressie te brengen en te zuiveren met behulp van codon-geoptimaliseerde genen.

High-Throughput expressie en zuivering van menselijke opgeloste stoffen voor structurele en biochemische studies

Leer microapplicator-technieken voor het infecteren van lepidoptera-larven met baculovirus. Deze methoden omvatten directe injectie van budded virus en orale inoculatie van polyhedra voor bioassays.

Protocollen voor microapplicator-geassisteerde Infectie van lepidoptera Larven met Baculovirus

Meer video's verkennen