Kooperacyjne przejścia allosteryczne mogą zachodzić w białkach multimerycznych, w których każda podjednostka białka ma swoje własne miejsce wiązania ligandu. Kiedy ligand wiąże się z którąkolwiek z tych podjednostek, wyzwala zmianę konformacyjną, która wpływa na miejsca wiązania w innych podjednostkach; Może to zmienić powinowactwo innych miejsc do ich odpowiednich ligandów. Zdolność białka do zmiany kształtu miejsca wiązania przypisuje się obecności w strukturze mieszanki elastycznych i stabilnych segmentów. Cząsteczka, która wyzwala tę zmianę, jest znana jako modulator.
Do wyjaśnienia kooperatywności białek multimerycznych często stosuje się dwa modele: model uzgodniony i sekwencyjny. Model uzgodniony, znany również jako model “wszystko albo nic”, zakłada, że wszystkie podjednostki białka multimerycznego przełączają się jednocześnie między konformacjami “włączonymi” i “wyłączonymi”. W formie “włączonej” miejsca wiązania mają wysokie powinowactwo do odpowiednich ligandów, a w formie “wyłączonej” miejsca wiązania mają niskie powinowactwo. Kiedy ligand wiąże się z którąkolwiek z podjednostek, sprzyja konwersji do formy o wysokim powinowactwie, jednocześnie zmieniając konformację wszystkich innych miejsc wiązania białka. Chociaż ligand może wiązać się z dowolną formą, łatwiej jest mu się związać, gdy jest w formie o wysokim powinowactwie.
Model sekwencyjny zakłada, że każda podjednostka białka multimerycznego może istnieć niezależnie w konformacji “włączonej” lub “wyłączonej”, czyli w formie o niskim lub wysokim powinowactwie, niezależnie od stanu innych podjednostek. Wiązanie liganda z podjednostką zmienia równowagę między formami o niskim i wysokim powinowactwie, tak że bardziej prawdopodobne jest, że podjednostka będzie w formie o wysokim powinowactwie. Dodatkowo, Wiązanie liganda na jednej podjednostce przesuwa równowagę dla innych podjednostek w białku. Zwiększa to prawdopodobieństwo, że gdy jeden ligand zostanie związany, inny ligand zwiąże się z inną podjednostką. Ta kooperatywność zwiększa wrażliwość białka na stężenie liganda. Wiązanie liganda w jednym miejscu może zmienić powinowactwo do całej cząsteczki białka, umożliwiając w ten sposób szybką reakcję przy niskich stężeniach.
Wiele białek ma wiele podjednostek, z których każda zawiera oddzielne miejsce wiązania liganda.
Kiedy cząsteczka, znana jako modulator, wiąże się z jedną z podjednostek, wyzwala zmianę konformacyjną w miejscach wiązania innych podjednostek, zmieniając ich powinowactwo do odpowiednich ligandów. Nazywa się to kooperatywnym przejściem allosterycznym i można je wyjaśnić za pomocą kilku modeli teoretycznych.
Model uzgodniony lub “wszystko albo nic” zakłada, że wszystkie podjednostki istnieją razem w konformacji “wyłączonej” lub “włączonej”.
Wiązanie może wystąpić w dowolnej formie, jednak stan “włączony” ma większe powinowactwo do liganda niż stan “wyłączony”. Kiedy ligand wiąże się w którejkolwiek z podjednostek, sprzyja jednoczesnej transformacji wszystkich miejsc wiązania do formy o wysokim powinowactwie.
Kooperatywność można również wyjaśnić za pomocą modelu sekwencyjnego, który zakłada, że każda podjednostka może istnieć niezależnie w stanie wysokiego lub niskiego powinowactwa, ale bardziej prawdopodobne jest, że będzie w stanie wysokiego powinowactwa, gdy ligand jest związany z którąkolwiek z podjednostek.
Miejsca wiązania białek allosterycznych są zwykle mieszanką elastycznych i stałych segmentów łańcucha aminokwasowego. Kiedy ligand się wiąże, te niestabilne części są stabilizowane w określonej konformacji, a to wpływa na kształt miejsc wiązania na innych podjednostkach.
Hemoglobina jest przykładem białka tetramerycznego, które ulega kooperatywnemu przejściu allosterycznym, gdy wiąże się tlen.
Każda podjednostka hemoglobiny ma pojedyncze miejsce wiązania. Kiedy jedna cząsteczka tlenu wiąże się z pojedynczą podjednostką, kooperatywność zwiększa powinowactwo do tlenu w pozostałych miejscach wiązania, ułatwiając tlenowi wiązanie się z cząsteczką hemoglobiny, która jest już związana z tlenem.
Related Videos
Protein Function
12.6K Wyświetlenia
Protein Function
12.4K Wyświetlenia
Protein Function
4.1K Wyświetlenia
Protein Function
12.7K Wyświetlenia
Protein Function
7.2K Wyświetlenia
Protein Function
13.9K Wyświetlenia
Protein Function
4.7K Wyświetlenia
Protein Function
7.8K Wyświetlenia
Protein Function
5.9K Wyświetlenia
Protein Function
13.0K Wyświetlenia
Protein Function
8.2K Wyświetlenia
Protein Function
6.7K Wyświetlenia
Protein Function
2.5K Wyświetlenia
Protein Function
4.9K Wyświetlenia
Protein Function
27.2K Wyświetlenia
Protein Function
3.9K Wyświetlenia
Protein Function
5.6K Wyświetlenia