1. Przygotowanie komórek (dla 10 myszy)
UWAGA: Komórki powinny być zaszczepione w ciągu 1 godziny po odłączeniu od naczynia, aby uniknąć spadku żywotności komórek. W szczególności zawiesinę komórkową należy wymieszać z galaretowatą mieszaniną białek w ciągu 15 minut po odłączeniu komórek od naczynia, aby zachować ich żywotność.
- Hodowla komórek 4T1-luc2, linii komórkowej gruczolakoraka sutka myszy wykazującej ekspresję lucyferazy, w pożywce RPMI 1640 z 10% FBS w wilgotnym inkubatorze w temperaturze 37 °C w 5% CO2 .
- Przemyć przylegające komórki 4T1-luc2 w 10-centymetrowym naczyniu z solą fizjologiczną buforowaną fosforanami (PBS) za pomocą pipety serologicznej o pojemności 10 ml. Dodać 1 ml 0,25% trypsyny za pomocą pipety P1000, a następnie inkubować próbkę w temperaturze 37 °C przez 5 minut. Następnie dodać 4 ml pożywki wzrostowej (RPMI-1640 z 10% FBS) za pomocą pipety serologicznej o pojemności 5 ml i przenieść zawiesinę komórek do stożkowej probówki o pojemności 15 ml w kapturze do hodowli tkankowej. Odwirować zawiesinę komórkową o sile 180 x g przez 5 minut.
- Odessać supernatant i ponownie zawiesić komórki w 2 ml PBS, a następnie policzyć komórki za pomocą hemocytometru.
- Zawiesić 2 x 106 komórek 4T1-luc2 w 40 μl zimnego PBS (pH 7,4, 4 °C) w kapturze do hodowli tkankowej.
- Wymieszać 40 μl zawiesiny komórek z 360 μl galaretowatej mieszaniny białek w probówce mikrowirówkowej o pojemności 1,5 ml na lodzie w kapturze do hodowli tkankowych.
UWAGA: Końcowe stężenie wynosi 1 x 105/20 μL (1:9 PBS: galaretowata mieszanina białek). W przypadku modelu ortotopowego (bez mastektomii) użyto 1 x 104/20 μL końcowego stężenia, aby uniknąć osiągnięcia kryteriów eutanazji (wielkość guza > 2 cm) w ciągu dwóch tygodni.
2. Inokulacja komórek rakowych
- Umieść myszy w komorze indukcyjnej znieczulenia z 2-4% izofluranem i przepływem tlenu 0,2 l/min, aż myszy będą spokojnie oddychać (2-3 min).
- Chwycić mysz i wstrzyknąć podskórnie 0,05 mg/kg buprenorfiny w jej ramię.
- Potwierdź odpowiednie znieczulenie poprzez brak reakcji na uszczypnięcie palca u nogi. Włóż nos myszy do otworu maski myszy, która umożliwia znieczulenie wziewne z 2-4% izofluranem i przepływem tlenu 2 l/min podłączonym do kanistra z węglem drzewnym.
- Unieruchomij kończyny myszy za pomocą taśmy laboratoryjnej i wysterylizuj jej skórę za pomocą chlorheksydyny, jodu i 75% etanolu, używając bawełnianych wacików.
- Wykonaj 5-milimetrowe nacięcie skóry na środku przedniej ściany klatki piersiowej za pomocą sterylnych nożyczek do mikrodysekcji, podnieś skórę po prawej stronie obok nacięcia i odłącz skórę od ściany klatki piersiowej za pomocą nożyczek, a następnie odwróć skórę, aby odsłonić prawą poduszkę tłuszczową sutka #2.
- Ostrożnie wstrzyknąć 20 μl zawiesiny komórek rakowych za pomocą strzykawki insulinowej o pojemności 1 ml z igłą 28,5 G do poduszeczki tłuszczowej w bezpośrednim polu widzenia przez ranę.
UWAGA: Igła przechodzi przez ranę, a nie przez skórę. Trzymaj igłę w poduszce tłuszczowej przez 5 sekund przed jej wyciągnięciem, co daje czas na zestalenie się galaretowatej mieszanki białek.
- Zamknij nacięcia skóry poprzez zszycie, używając sterylnych niewchłanialnych szwów 5-0.
- Po operacji należy umieścić zwierzęta z powrotem w czystej klatce i monitorować je do czasu, aż wyzdrowieją i będą się swobodnie poruszać (po ~1-2 minutach). Jeśli zwierzę nie wydaje się być w dobrym stanie zdrowia w ciągu 24 godzin od zabiegu, należy podać buprenorfinę (0,2 mg/kg).
- Usunąć szwy w znieczuleniu (patrz krok 2.1) 7 dni po zabiegu.