Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami i komisję rewizyjną Jove Veterinary Review Board.
1. Izolacja komórek groniastych
- Poświęć mysz poprzez indukcję CO 2 i wykonaj zwichnięcie szyjki macicy. Natychmiast wypreparuj trzustkę. Aby wypreparować trzustkę, najpierw przypnij łapy myszy do polistyrenowej pokrywy, ustaw mysz tak, aby ogon był skierowany w stronę badacza i spryskaj brzuch 70% etanolem.
nuta: Mysz użyta w reprezentatywnych wynikach była 12-tygodniową nietransgeniczną samicą o pochodzeniu C57BL/6. Wybór myszy jest bardziej szczegółowo omówiony w sekcji dyskusji.
- Używając zestawu autoklawowanych nożyczek i kleszczy, podnieś futro/skórę kleszczami na linii środkowej i użyj nożyczek, aby wykonać nacięcie przez futro i skórę od otworu cewki moczowej do obszaru przepony/klatki piersiowej.
- Wykonaj dodatkowe nacięcia po lewej i prawej stronie, tak aby futro/skóra została odcięta, aby uzyskać wyraźny widok jamy brzusznej. Następnie wciąć w błonę śluzową otrzewnej (w dół pośrodku oraz w prawo i w lewo) i odciągnąć ją od narządów, tak jak to miało miejsce w przypadku futra/skóry.
- Podnieś jelita kleszczami i połóż je po lewej stronie myszy, tworząc przestrzeń, aby zobaczyć trzustkę, która jest koloru jasnoróżowego i przyczepiona do śledziony, która jest ciemnoczerwonym owalem. Tkanka trzustki wyróżnia się miękką, gąbczastą teksturą. Wytnij trzustkę, która będzie biegła wzdłuż żołądka i przeplatała się z jelitami.
- Oddziel śledzionę od trzustki. Następnie umieść trzustkę w probówce o pojemności 50 ml zawierającej 10 ml HBSS z 1x penicyliną-streptomycyną i przynieś ją do okapu z przepływem laminarnym.
nuta: Pozostałe etapy protokołu powinny być wykonane przy użyciu sterylnej techniki w okapie z przepływem laminarnym.
- Wlej trzustkę i HBSS (z penicyliną-streptomycyną) do pustej łodzi wagowej i za pomocą kleszczy umyj trzustkę, obracając ją. Następnie przenieś trzustkę z kleszczami do drugiej łodzi ważącej zawierającej HBSS (z penicyliną-streptomycyną). Ponownie umyj trzustkę, obracając.
- Przenieść trzustkę do trzeciej łodzi wagowej zawierającej HBSS (z penicyliną-streptomycyną) i rozpocząć cięcie trzustki na małe kawałki o średnicy 5 mm lub mniejszej. Następnie wlej kawałki trzustki i HBSS do pustej probówki o pojemności 50 ml.
- Aby to zrobić, użyj kleszczy, aby przesunąć kawałki trzustki do płynu podczas przechylania łodzi wagowej. Wlej, gdy wszystkie kawałki nie są już przymocowane do łodzi wagowej. Zebrać wszystkie pozostałe kawałki za pomocą kleszczyków i umyć kleszcze w 50 ml probówce zawierającej trzustkę w HBSS z penicyliną-streptomycyną.
- Wirować przy 931 x g przez 2 minuty w temperaturze 4 °C, a następnie usunąć HBSS (i wszelki tłuszcz, który się unosi), pipetując go pipetą o pojemności 5 ml.
- Dodaj 5 ml kolagenazy (Przygotuj 40 ml HBSS + 5% FBS, 20 ml HBSS + 30% FBS i 5 ml kolagenazy 2 mg/ml w HBSS. Wysterylizuj kolagenazę przez filtrację (pory 0,22 μm) i przechowuj w temperaturze pokojowej. Trzymaj każdy z roztworów HBSS na lodzie) do trzustki. Owijając probówkę o pojemności 50 ml plastikową folią parafinową, należy upewnić się, że jest szczelnie zamknięta, a następnie umieścić ją w inkubatorze, wstrząsając z prędkością 220 obr./min przez 20 minut w temperaturze 37 °C.
nuta: Czas trawienia kolagenazy może się różnić, jak zauważono w dyskusji. Pod koniec inkubacji nie powinny pozostać żadne duże kawałki tkanki.
- Aby zatrzymać dysocjację, umieść rurkę zawierającą trzustkę na lodzie i dodaj 5 ml zimnego HBSS + 5% FBS. Wirować przy 931 x g przez 2 minuty w temperaturze 4 °C, a następnie odpipetować supernatant za pomocą pipety o pojemności 5 ml.
- Zawiesić w 10 ml HBSS + 5% FBS i odwirować przy 931 x g przez 2 minuty w temperaturze 4 °C. Odpipetować supernatant za pomocą pipety o pojemności 5 ml i powtórzyć ten krok z kolejnymi 10 ml HBSS + 5% FBS.
- Zawiesić ponownie w 5 ml HBSS + 5% FBS i za pomocą P1000 przenieść 1 ml na raz przez siatkę 500 μm do probówki o pojemności 50 ml. Dodaj dodatkowe 5 ml HBSS + 5% FBS przez siatkę z P1000, aby przemyć pozostałe komórki trzustki przez siatkę.
- Zawiesinę komórek z siatki 500 μm przepuścić przez siatkę 105 μm, pipetując po 1 ml za pomocą P1000. Następnie delikatnie odpipetować zawiesinę komórkową do probówki zawierającej HBSS + 30% FBS. Na górze utworzy się warstwa zawiesiny komórkowej; Po odwirowaniu komórki groniaste opadną, tworząc osad.
- Wirować przy 233 x g przez 2 minuty w temperaturze 4 °C. Usunąć supernatant i ponownie zawiesić osad w 1x kompletnym pożywce Waymouth.
- W przypadku bezpośredniego osadzania komórek w kolagenie lub macierzy błony podstawnej, należy ponownie zawiesić w objętości 7 ml na trzustkę. W przypadku zakażenia adenowirusowego lub lentiwirusowego należy ponownie zawiesić w 4 ml na trzustkę.