Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Generowanie mysiego modelu raka jelita grubego PDOX: badanie progresji raka jelita grubego w modelu mysim

2.3K wyświetleń

30 kwietnia 2023

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Moret, R. et al. Ortotopowe modele ksenoprzeszczepów pobrane od pacjenta dla ludzkiego raka urotelialnego i raka jelita grubego, wzrostu guza i spontanicznych przerzutów. J. Vis. Exp. (2019).

Ten film opisuje protokół generowania mysiego modelu ortotopowego ksenoprzeszczepu jelita grubego pochodzącego od pacjenta do badania progresji komórek raka jelita grubego u myszy bez otyłości z cukrzycą/ciężkim złożonym niedoborem odporności (NOD/SCID). Ten mysi model pomaga w zrozumieniu wzorca wzrostu guza pierwotnego i przerzutów.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt zostały sprawdzone przez lokalny komitet ds. opieki nad zwierzętami oraz komisję weterynaryjną JoVE.

1. Hodowla linii komórkowych

  1. Hoduj komórki HK w kompletnym pożywce RPMI-1640 uzupełnionej 10% płodową surowicą bydlęcą, 2 nM glutaminą, 100 U/ml penicyliny G i 100 mg/ml streptomycyny w temperaturze 37 °C w 5% nawilżanym inkubatorzeCO2.
    nuta: Komórki HK są normalnymi ludzkimi pęcherzykowymi komórkami dendrytycznymi i mogą być hodowane i namnażane przez ≤ 15 pasaży in vitro.

2. Znakowanie i wzbogacanie guzów znakowanych lucyferazy

  1. Wszczepić guzy bezpośrednio w lewą i prawą flankę 6-8 tygodniowych samic myszy NOD / SCID.
  2. Mierz wzrost guza co dwa tygodnie za pomocą suwmiarki cyfrowej.
  3. Przy średnicy 1 cm transdukować guz. Bezpośrednio wstrzyknąć do guza pojedynczą dawkę lentiwirusa Luc/czerwonego białka fluorescencyjnego (RFP) (50 μl/guz, rozcieńczenie 1:30 ze skoncentrowanego lentiwirusa o wysokim mianie) za pomocą strzykawki o pojemności 1 cm3 z igłą 27 G.
    nuta: Guz pacjenta zwykle osiąga 1 cm średnicy w ciągu 1-2 miesięcy. Jednak tempo wzrostu jest niezwykle zmienne i opiera się na wielu czynnikach, w tym stopniu zaawansowania i rodzaju guza.

3. Model myszy CRC

  1. Znieczulij sześcio- do ośmiotygodniowego samca myszy NOD/SCID izofluranem (2,5% w 100% tlenu, 1 l/min) w komorze indukcyjnej. Potwierdź sedację szczyptą palca u nogi.
  2. Umieść znieczuloną mysz w pozycji leżącej pod mikroskopem preparacyjnym, upewniając się, że jej pysk jest przymocowany do stożka nosowego izofluranu, a przednie kończyny taśmą zapewniającą stabilność.
    nuta: Lupy mogą być używane zamiast mikroskopu preparacyjnego. Mały przedmiot może być użyty do poprawy widoczności i kąta po umieszczeniu pod podstawą ogona, podnosząc odbyt. Zazwyczaj małe odcinki gazy są zwijane w kształt walca o średnicy 1 cala.
  3. Rozszerz kanał odbytu za pomocą zakrzywionych, nasmarowanych, tępo zakończonych kleszczy, aby odsłonić dystalną błonę śluzową odbytu i odbytnicy. Usuń kał.
  4. Użyj sterylnej wyjmowanej igły 30 G na szklanej strzykawce o pojemności 50 μl, aby wstrzyknąć 10 μl komórek nowotworowych znakowanych lucyferazy i komórek HK (ponownie zawiesić 10 μl komórek nowotworowych na mysz dla modelu CRC w kompletnym pożywce RPMI) do dystalnej tylnej tylnej błony podśluzowej odbytnicy, 1 do 2 mm powyżej kanału odbytu. Skos igły powinien być pokryty błoną śluzową. Uważaj, aby nie dostać się do jamy miednicy.
  5. Wyjmij mysz ze stożka nosowego izofluranu. Obserwuj go przez 1 godzinę po zabiegu. Szukaj oznak niepokoju, np. zgarbionych pleców, ciężkiego oddychania itp.

4. Obrazowanie bioluminescencyjne

  1. Monitoruj co tydzień pierwotne obciążenie przerzutami do wątroby i płuc za pomocą bioluminescencyjnego systemu obrazowania pod kątem aktywności lucyferazy.
    1. Zdobądź eksperyment CRC na myszy i zważ. Wstrzyknąć dootrzewnowo 150 mg/kg lucyferyny i odczekać 5 minut, aż substrat zacznie krążyć w organizmie myszy.
    2. Znieczulić mysz 2,5% izofluranem w 100% tlenie, 1 l/min w komorze indukcyjnej.
    3. Umieść mysz w maszynie do obrazowania BLI z nosem zamocowanym w stożku nosowym. Podczas naświetlania obrazu upewnij się, że obszar zainteresowania jest skierowany w stronę aparatu. W przypadku iniekcji CRC strona brzuszna powinna być skierowana w stronę kamery dla każdego obrazu. Wyobraź sobie mysz w pozycji leżącej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
RPMI-1640 ŚredniKolekcja kultur typu amerykańskiego110636
IzofluranHenry Schein Zdrowie zwierząt108333
D-lucyferyna (150 mg/kg)Perkin Elmer122796
glutamina (2 nM)Fisher Naukowy35050061
Luc/RFP-lentiwirusOd naszych współpracowników. Patrz odniesienie 13: Gills, J. et al. Ortotopowy model ksenoprzeszczepu uzyskany od pacjenta umożliwiający implantację, wzrost, angiogenezę i przerzuty ludzkiego raka urotelialnego o wysokim stopniu złośliwości guza pęcherza moczowego. Oncotarget. 9, 32718-32729, doi:10.18632/ oncotarget.26024 (2018).
penicylina/streptomycyna 100 ml (100 j./ml)Fisher NaukowyRozdział 15140-122
gaz
100% tlenuAirgas IncOX USP200
100% emisjiCO2Airgas IncPłyta CD USPE
Myszy
6-8 tygodniowe myszy NOD/SCID (samica)Laboratorium Jacksona1303
Narzędzia
Rurka stożkowa 15 mlSarstedtNumer katalogowy: 11799
Naczynie do hodowli tkankowych 150 mmUSA Scientific IncCC7682-3614
KleszczeSymetria chirurgiczna IncNumer katalogowy: 06-0011
Nożyczki chirurgiczneSymetria chirurgiczna Inc02--2011
sprzęt
Inkubator nawilżany 5% CO2Thermo ScientificNumer katalogowy: 3110
Maszyna do obrazowania bioluminescencyjnego (BLI)Perkin ElmerCLS136334
Oprogramowanie maszyny do obrazowania BLIPerkin ElmerCLS136335
Suwmiarka cyfrowaNarzędzia i instrumenty Fowler54-115-330
Mikroskop preparacyjnyInstrumenty precyzyjne Sp. z o.oTel. 504) 228-0076
Komora indukcyjna izofluranuPerkin Elmer119038
szt. powiedział: powiedział: .

Tagi

Ortotopowy ksenograft pochodzący od pacjentamodel raka jelita grubegomysz NOD SCIDobrazowanie bioluminescencyjnekomórki znakowane lucyferaząkomórki dendrytyczne mieszkowewstrzyknięcie podśluzówkowe do odbytnicyanaliza przerzutówbadanie wzrostu guzaimmunokompromitowany model mysi