Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Test organizacji cytoszkieletu i adhezji ogniskowej: metoda oparta na immunofluorescencji do badania adhezji komórek i rozprzestrzeniania się na podłożach

2.2K wyświetleń

30 kwietnia 2023

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Ali, M. Y et al., Izolacja pierwotnych komórek nowotworowych jelita grubego u człowieka z tkanek chirurgicznych i hodowla ich bezpośrednio na miękkich elastycznych podłożach do cytometrii trakcyjnej. J. Vis. Exp. (2015)

Ten film opisuje technikę badania cytoszkieletu i ogniskowych zrostów w pierwotnych komórkach ludzkiego raka jelita grubego, aby zrozumieć jego zmiany w zależności od sztywności podłoża. Ta hodowla komórek rakowych na miękkich i twardych podłożach umożliwia różne dalsze pomiary biofizyczne w celu prognozowania raka.

Protokół

1. Testy mikroskopii immunofluorescencyjnej

  1. Pobrać podłoża z komórkami, które mają być wybarwione immunologicznie, do okapu laminarnego i usunąć pożywkę hodowlaną.
  2. Przepłukać podłoża PBS i utrwalić komórki 4% paraformaldehydem w PBS przez 20 minut w temperaturze pokojowej.
  3. Umyć podłoża PBS trzykrotnie (za każdym razem 5 minut). W związku z tym inkubować podłoża z 500 μl wzmacniacza sygnału przez 30 minut i płukać PBS.
  4. Inkubować komórki z przeciwciałem monoklonalnym anty-winkulinowym w rozcieńczeniu 1:250 w PBS przez 45 minut w temperaturze pokojowej. Następnie należy przemyć podłoża PBS 3 razy (za każdym razem 5 min).
  5. Inkubować próbki z przeciwciałem drugorzędowym Alexa Fluor 488 kozie przeciwciało anty-mysie IgG w rozcieńczeniu 1:200 w PBS w temperaturze pokojowej przez 30 minut. Przemyć podłoża PBS 3 razy (za każdym razem 5 minut).
  6. Aby uwidocznić strukturę F-aktyny, inkubuj komórki z koniugatami falloidyny TRITC w stężeniu 50 μg/ml przez 45 minut w temperaturze pokojowej. Następnie należy przemyć podłoża PBS 3 razy (za każdym razem 5 min).
  7. Zobrazuj próbki za pomocą konfokalnego skaningowego mikroskopu laserowego (rysunek 1A-1D).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1
Rysunek 1. Barwienie immunofluorescencyjne F-aktyny i winkuliny na miękkich podłożach żelowych i twardych polistyrenowych.Brak błonnika aktynowego w mniej rozpowszechnionej (A1) komórce nowotworowej lub (A2) normalnej komórce na miękkich żelach 2 kPa. Jednak punktowe zrosty ogniskowe zawierające winkulinę są obecne na miękkich żelach (B1-B2

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Odczynniki
Pbs Lonza 17-516F
Paraformaldehyd Nauki o mikroskopii elektronowejRT15710
Wzmacniacz sygnałuTechnologie życiowe I36933
Przeciwciało monoklonalne anty winkuliny Sigma-AldrichZobacz materiał V9131
Alexa Fluor 488 kozia anty-mysia IgG Technologie życioweA11001
Koniugaty falloidyny TRITC Sigma-AldrichZobacz materiał P1951
Materiałów
Szkiełka nakrywkowe 12 mm2 Corning2865-12
powiedział:

Tagi

Organizacja cytoszkieletutest immunofluorescencjisztywność podłożabarwienie winkulinyfilamenty aktynowemikroskopia konfokalnafiksacja paraformaldehydemkoniugaty faloidyny