Wszystkie procedury z udziałem ludzi zostały przeprowadzone zgodnie z instytucjonalnymi, krajowymi i międzynarodowymi wytycznymi dotyczącymi dobrobytu ludzi i zostały sprawdzone przez lokalną komisję rewizyjną instytucji.
1. Izolacja keratynocytów od ludzkiej skóry
- Zacznij od przygotowania następujących roztworów: 50 ml roztworu 0,25% trypsyny i 0,1% glukozy w DPBS. Wymieszać i przefiltrować, wysterylizować (0,2 μm) roztwór. Przygotuj 10 ml RPMI-1640 + 2% roztworu FBS, 50 ml DPBS i pożywki bez keratynocytów (KSFM). Dodaj suplementy KSFM i 250 μl gentamycyny do 500 ml KSFM. Przed użyciem podgrzej roztwory do temperatury 37 °C.
- Zbieraj skórę od zdrowych dorosłych ochotników poddawanych operacji plastycznej. Użyte próbki skóry mają wymiary około 10 cm x 15 cm, ale mogą różnić się wielkością. Utrzymuj skórę w chłodzie podczas transportu, transportując próbki skóry w styropianowym pudełku zawierającym element chłodzący. W razie potrzeby próbka skóry może być przechowywana przez noc w temperaturze 4 °C.
- Usuń tłuszcz spod skóry za pomocą wysterylizowanych nożyczek, skalpeli i kleszczy.
- Zapiąć część skóry (około 10 cm x 15 cm) na sterylnej osłonie na wierzchu płytki za pomocą igieł. Najpierw oczyść skórę suchym, wysterylizowanym gazikiem. Następnie oczyść skórę za pomocą wysterylizowanego gazika z 70% etanolem.
- Za pomocą strugarki nożnej odetnij górną warstwę (naskórek) części skóry i umieść ją na szalce Petriego o średnicy 9 cm. Następnie natychmiast dodaj 25 ml roztworu DPBS/trypsyna/glukozy (przygotowanego w kroku 1.1) do szalki Petriego. Inkubować przez 30 minut w temperaturze 37 °C.
- Za pomocą pipety usuń roztwór DPBS/trypsyny/glukozy z szalki Petriego i dodaj 10 ml RPMI-1640 + 2% FBS, aby dezaktywować trypsynę.
- Za pomocą dwóch kleszczy uwolnij teraz komórki naskórka do podłoża, delikatnie zeskrobując i mieszając zarówno naskórek, jak i przedział skórny części skóry.
- Przefiltruj zawiesinę komórek naskórka przez metalowy filtr (otwór o średnicy 1 mm) i zbierz w probówce o pojemności 50 ml. Dodaj pozostałe skrawki skóry do probówki o pojemności 50 ml zawierającej 10 ml RPMI-1640 bez FBS i wiruj przez 10 sekund. Przefiltrować zawiesinę przez metalowy filtr do probówki o pojemności 50 ml zawierającej zawiesinę komórek naskórka. Dodaj DPBS do całkowitej objętości 50 ml.
- Odwirować zawiesinę komórkową przez 10 minut przy 450 x g w temperaturze pokojowej.
- Usunąć supernatant i ponownie zawiesić osad komórek naskórka w około 10 ml KSFM o temperaturze 37 °C, w zależności od wielkości osadu komórkowego. Policz komórki za pomocą metody barwienia błękitem trypanowym pod mikroskopem. Liczba komórek uzyskanych z wycinka skóry o wymiarach 10 cm x 15 cm wynosi około 50-100 x 106 komórek. Do każdej kolby hodowlanejo długości 75 cm2 przenieść 8 x 106 komórek wraz z 12 ml KSFM o temperaturze 37 °C. Delikatnie wstrząsnąć kolbami hodowlanymi, aby zapewnić równomierne rozprowadzenie komórek.
- Inkubować keratynocyty w inkubatorze o temperaturze 37 °C przy wilgotności 100% i 5% CO2 . Zmień podłoże po 2 dniach i trzy razy w tygodniu. Pasaż komórek, gdy hodowla jest w 70-80% zlewna, co trwa około 2 tygodni w zależności od szybkości proliferacji keratynocytów.