Method Article

Modyfikacja genetyczna pierwotnych ludzkich keratynocytów: metoda genetycznej manipulacji keratynocytami przy użyciu rekombinowanych retrowirusów

April 30th, 2023

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Li, J. et al. Generacja genetycznie modyfikowanych organotypowych kultur skóry przy użyciu zdewitalizowanej ludzkiej skóry właściwej. J. Vis. Exp. (2015)

Ten film opisuje szczegółowy protokół produkcji genetycznie modyfikowanych pierwotnych rekombinowanych retrowirusów ludzkich keratynocytów. Metoda ta może być stosowana do manipulowania ekspresją genów w keratynocytach.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury z udziałem ludzi zostały przeprowadzone zgodnie z instytucjonalnymi, krajowymi i międzynarodowymi wytycznymi dotyczącymi dobrobytu ludzi i zostały sprawdzone przez lokalną komisję rewizyjną instytucji.

1. Genetycznie modyfikowane pierwotne ludzkie keratynocyty

UWAGA: Użyj amfotropowych komórek feniksa hodowanych na kompletnych pożywkach DMEM [DMEM + 10% płodowej surowicy bydlęcej (FBS) + długopis/paciorkowca] do produkcji wirusów do infekowania pierwotnych ludzkich keratynocytów. Geny pakowania wirusów, które kodują białka, takie jak gag-pol i otoczka, są stabilnie zintegrowane z genomem komórki feniksa, co pozwala na produkcję wirusa po transfekcji wektorem retrowirusowym. Komórki Phoenix mogą być transfekowane z wysoką wydajnością, co pozwala na wysoką produkcję miana wirusa. Wirusy wytwarzane z tej linii pakującej mogą również infekować wiele różnych komórek ssaków, w tym ludzi.

  1. Dzień 1: Dzień przed transfekcją wysiewaj komórki feniksa na 6-dołkowej płytce o gęstości 800 000 komórek na dołek w kompletnym pożywce DMEM.
  2. Dzień 2: W dniu transfekcji należy użyć 3 μg wektorów retrowirusowych na studzienkę. Podwielokrotność 3 μg wektora retrowirusowego do probówki o pojemności 1,5 ml. Użyj mieszaniny 100 μl DMEM plus 6 μl odczynnika do transfekcji na każde 3 μg wektora. Wymieszać 6 μl odczynnika do transfekcji ze 100 μl DMEM w probówce o pojemności 1,5 ml. (Stosowane wektory retrowirusowe są wymienione w tabeli sprzętu/materiałów)
    1. Inkubować przez 5 minut i dodać mieszaninę o objętości 106 μl do wstępnie porcjowanej probówki zawierającej 3 μg wektora retrowirusowego. Mieszać i inkubować w temperaturze pokojowej przez 30 minut. Dodaj całą tę mieszaninę kroplami do każdej studzienki komórek feniksa.
  3. Dzień 3: Dzień po transfekcji usuń pożywkę z komórek feniksa i dodaj 2 ml świeżej, kompletnej pożywki DMEM. Tego samego dnia wysiewaj pierwotne ludzkie keratynocyty na 6-dołkowe płytki o gęstości 75 000 komórek na dołek. Utrzymuj keratynocyty w pożywce wolnej od keratynocytów w surowicy (KCSFM) z antybiotykami (pen/strep).
    nuta: Zakupiono pierwotne keratynocyty ludzkie. Ogniwa można kupić u różnych dostawców (wymienionych w tabeli Materiały).
  4. Dzień 4: Zbierz pożywkę z transfekowanych komórek feniksa, które teraz zawierają cząsteczki wirusa. Przepuść pożywkę przez filtr 0,45 μm za pomocą strzykawki (w celu usunięcia wszelkich zanieczyszczających komórek feniksa) i umieść 2 ml na keratynocytach (posianych w 75 000 komórek/dołek poprzedniego dnia). Dodać bromek heksadimetryny (5 μg/ml) do pożywki, aby pomóc w pośredniczeniu w procesie infekcji. Miana wirusów wynoszą ~1 x 107 TU/mL.
    1. Wirować 6-dołkowe płytki w wirówce o sile 200 x g przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Po wirowaniu usuń pożywkę zawierającą wirusa i umyj komórki raz 1x PBS przed dodaniem KCSFM.
  5. Dzień 5: Ponownie należy zainfekować tę samą partię keratynocytów, co w 1,4, używając 2 ml przefiltrowanej pożywki zawierającej bromek heksadimetryny (5 μg/ml). Wirować z prędkością 200 x g przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej, aby usunąć nośnik zawierający wirusa i przemyć 1x PBS, a następnie dodać KCSFM.
    nuta: Wybierz keratynocyty za pomocą leku, jeśli na wektorze retrowirusowym znajduje się możliwy do wyboru marker i rozwiń do wykorzystania w dalszej analizie lub zastosowaniach, takich jak hodowle organotypowe.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Amfotropowe linie komórkowe feniksaKontroler ATCC (Kontroler TCRL-3213
Odczynnik do transfekcji FUGENE 6Preparat PromegaE2691
Pożywka keratynocytowe (KCSFM)Technologie życiowe17005042
DMEM (DMEM)GIBCO (Przedsiębiorstwo GIBCO)Numer katalogowy: 11995
ludzkie keratynocyty noworodkoweKontroler ATCC (Kontroler TCzytnik PCS-200-010
ludzkie keratynocyty noworodkoweZastosowania komórkowe102K-05N
Wektor retrowirusowy MSCVClontech634401
Wektor retrowirusowy LZRSAddgene powiedział:
pSuper.Retro.Puro Retroviral
wektor
OligosilnikVEC-PRT-0002
Bromek heksadimetrynySigmaZobacz materiał H9268-5G
FBS (Sieć UsługowaGIBCO (Przedsiębiorstwo GIBCO)Numer katalogowy: 10437-028
DŁUGOPIS/PACIORKOWIECGIBCO (Przedsiębiorstwo GIBCO)Rozdział 15140-122
powiedział:

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Genetic ModificationPrimary Human KeratinocytesRetroviral TransfectionPhoenix CellsRetroviral VectorsTransfection ReagentCationic PolymerHexadimethrine BromideViral PackagingGene Expression

Related Articles