Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.
1. Barwienie przeciwciałami melanocytów łuskowych
- Uzupełnić bufor PO4 80 ml 0,1M Na2HPO4 i 20 ml 0,1 M NaH2PO4. Upewnij się, że pH wynosi 7,3. Uzupełnić 2x bufor utrwalający zawierający 8,0 g sacharozy, 0,15 ml 0,2 M CaCl2 i 90 ml 0,2 M buforu PO4 o pH 7,3. W razie potrzeby dostosować pH do 7,3 za pomocą NaOH lub HCl, a następnie uzupełnić do 100 ml buforem PO4
.
- Odważyć do 300 mg stałego PFA i dodać do probówki do mikrowirówki. Dodać 5 mM NaOH do objętości równej 4,5 x masie PFA w mg (np. 450 ul 5 mM NaOH do 100 mg PFA). Ogrzewać w temperaturze 60-70 °C, od czasu do czasu wstrząsając, aż do rozpuszczenia PFA. Odkręć pozostałe cząstki i odzyskaj 20% supernatantu PFA. Spraw, aby za każdym razem był świeży.
- Przygotować roztwór utrwalający zawierający 1x bufor utrwalający i 4% PFA.
- Znieczulić ryby w 0,17 mg/ml tricainy.
- Używając padającego światła pod mikroskopem preparacyjnym, wyrwij łuski grzbietowe za pomocą ostrych kleszczy z cienką końcówką, uważając, aby nie uszkodzić połowy łuski zawierającej melanocyty (ryc. 1A). Umieść łuski bezpośrednio z kleszczyków w 1 ml roztworu utrwalającego i inkubuj w temperaturze pokojowej, obracając, przez ≥ 2 godziny. Przenieś rybę do wody dla ryb i monitoruj ryby, aby potwierdzić pomyślne wyzdrowienie.
- Aby wybielić pigmentowane melanocyty, umyj utrwalone łuski w PBST (1x PBS pH 7,4, 0,1% Triton X-100) 2 razy przez 5 minut w temperaturze pokojowej. Dodaj 1 ml świeżo przygotowanego roztworu wybielacza zawierającego 0,4 ml 10% KOH i 0,15 ml 30% H2O2 w 5 ml z dH2O. Załóż parafilm lub zamki nasadkowe, aby zapobiec rozerwaniu probówek przez gaz. Kontynuuj wybielanie, aż pigment zniknie (zazwyczaj 10 minut) (Rysunek 1B, C). Prać w PBST cztery razy przez 5 minut w temperaturze pokojowej.
- Blokować przez co najmniej 30 minut w roztworze blokowym składającym się z 1x PBS pH 7,4, 0,2% Triton X-100, 2 mg / ml BSA, 1% DMSO, 0,02% NaN3 i 2% surowicy jagnięcej. Pomiń NaN3, jeśli rozwija się z reakcją HRP.
- Inkubować z przeciwciałem pierwszorzędowym w roztworze blokowym przez noc w temperaturze pokojowej. Musisz mieć co najmniej 400 μl roztworu na próbkach, aby były zanurzone.
- Umyj wagę 3 razy przez 30 minut w PBST w temperaturze pokojowej.
- Inkubować z przeciwciałami drugorzędowymi przez 2 godziny do nocy w roztworze blokowym w temperaturze pokojowej.
- Barwienie przez 10 minut za pomocą PBST + 0,1 μM DAPI.
- Umyć 3 razy przez 5 minut za pomocą PBST.
- Zamontuj wagę na szkiełku podstawowym w kropli vectashield tak, aby wklęsła strona wagi była skierowana w dół w kierunku szkiełka i umieść na nich szkiełko zakrywające. Uszczelnij krawędzie szkiełka przezroczystym lakierem do paznokci i obserwuj szkiełka pod mikroskopem fluorescencyjnym (ryc. 1D, E, F, G).