$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Śródoperacyjna wielospektralna kamera fluorescencyjna
- W Instytucie Obrazowania Biologicznego i Medycznego (IBMI, Uniwersytet Techniczny / Helmholtz Zentrum, Monachium, Niemcy) w ścisłej współpracy z SurgOptix (SurgOptix Inc, Redwood Shores, CA, USA) opracowano niestandardowy system kamer. Ustawienie śródoperacyjnego systemu wielospektralnej kamery fluorescencyjnej przedstawiono na rysunku 2.
- Światło przechodzi przez układ optyczny i jest rozdzielane na światło widzialne, światło w paśmie długości fali emisji (fluorescencji) i światło w paśmie długości fali wzbudzenia. Wiązki te są wykrywane przez kamery CCD (CCD) (rysunek 2). Sygnały wielospektralne ze wszystkich kamer są przetwarzane w celu skorygowania artefaktów i uzyskania prawdziwej ilościowej biodystrybucji fluorochromu. Sygnały barwne i fluorescencyjne mogą być wyświetlane jako osobne obrazy na monitorach zewnętrznych lub nakładane na jeden obraz.
- Filtry wzbudzenia i emisji kamery są ustawione w niniejszym pomiarze na zbieranie odpowiednio 750 nm i 800 ±20 nm.
2. Przygotowanie optycznego środka kontrastowego
- Fluorescencyjny środek kontrastowy w kolorze zieleni indocyjaninowej (ICG, Pulsion AG, Monachium, Niemcy) przygotowuje się w sterylnych warunkach. Stosuje się stężenie 0,5 mg/ml. Ważne jest, aby używać sterylnej wody destylowanej, a nie chlorku sodu (NaCl), ponieważ ten ostatni spowoduje agregację ICG.
- Po przygotowaniu roztwór należy przechowywać w ciemnym, chłodnym miejscu, aby uniknąć szybkiego pogorszenia intensywności fluorescencji przez wybielanie. Uwaga: od tego momentu należy chronić ICG przed światłem.
3. Obrazowanie śródoperacyjne - Konfiguracja i wstrzyknięcie ICG
- Kamera jest umieszczana i uruchamiana na sali operacyjnej przed operacją w celu zminimalizowania zakłóceń w standardowej procedurze chirurgicznej i podłączona do ekranów o wysokiej rozdzielczości (ryc. 2B).
- Kamera jest pokryta standardowymi sterylnymi obłożami (Carl Zeiss Vision BV, Sliedrecht, Holandia, OPMI Drape REF 306071) przez badacza w sterylnej odzieży operacyjnej.
- Uwaga: należy zachować ostrożność, aby używać wyłącznie przezroczystych środków dezynfekujących, ponieważ kolorowe środki dezynfekujące często są autofluorescencyjne i mogą zakłócać procedurę obrazowania. Ponadto sterylne serwety i markery chirurgiczne mogą być autofluorescencyjne. Zaleca się przetestowanie wszystkich materiałów używanych na sali operacyjnej i polu operacyjnym pod kątem autofluorescencji przed zabiegiem.
- Fluorescencyjny środek kontrastowy zieleń indocyjaninowa (ICG) jest przygotowywany w sterylnych warunkach. Stosuje się stężenie 0,5 mg/ml. Ważne jest, aby używać sterylnej wody destylowanej, a nie NaCl, ponieważ ten ostatni spowoduje agregację ICG. Po przygotowaniu roztwór należy przechowywać w ciemnym, chłodnym miejscu, aby uniknąć szybkiego pogorszenia intensywności fluorescencji. Uwaga: zaleca się zmianę rękawic po przygotowaniu ICG, ponieważ nawet niewielka ilość rozlanego ICG może wpłynąć na jakość obrazu.
- Procedura obrazowania rozpoczyna się po otwarciu jamy brzusznej. Gdy obszar zainteresowania jest naświetlony, kamera jest manewrowana w polu operacyjnym. Zoom i ostrość są regulowane w sterylnych warunkach. Światła na sali operacyjnej są wyłączone w celu lepszego wykrywania sygnału fluorescencji.
- 1,0 ml 0,5 mg / ml ICG miesza się z 1,0 ml standardowego niebieskiego barwnika (patent blue / bleu patenté, Guerbet, Francja) w jednej strzykawce. Chirurg wstrzykuje środek kontrastowy w czterech kwadrantach wokół guza pierwotnego, zapobiegając rozlaniu środka. Uwaga: w przypadku rozlania ICG na rękawice chirurgiczne konieczna jest zmiana rękawic. Uzyskuje się zdjęcia lub filmy w czasie rzeczywistym dotyczące przepływu limfy i wyglądu fluorescencyjnego węzła wartowniczego (ryc. 3). Wszystkie zdjęcia i filmy są zapisywane bezpośrednio na komputerze.
- Oprócz fluorescencji, SLN jest również wykrywany zgodnie ze standardowym protokołem, za pomocą sondy gamma lub poprzez oględziny pod kątem niebieskiego przebarwienia, lub obu. Znacznik radioaktywny jest zwykle podawany na jeden dzień przed zabiegiem chirurgicznym, po czym wykonuje się limfoscintigram w celu wykrycia radioaktywnego SLN. Jest to część standardowej procedury i nie ma na nią miejsca w protokole obrazowania fluorescencyjnego.
- Wycięcie SLN w czasie rzeczywistym odbywa się zarówno przez fluorescencję, jak i niebieskie przebarwienia węzłów chłonnych. Funkcja czasu rzeczywistego kamery pomaga wykrywać wszelkie pozostałości fluorescencji lub nieoczekiwane lokalizacje węzłów fluorescencyjnych.
- Po wycięciu SLN uzyskuje się obrazy ex vivo wszystkich wyciętych węzłów chłonnych pod kątem obecności sygnału fluorescencyjnego. Czas naświetlania można wydłużyć, aby uzyskać wyższą rozdzielczość podczas robienia zdjęć (rysunek 4).
- Badanie histopatologiczne węzłów chłonnych ujawnia obecność lub brak komórek nowotworowych w węźle wartowniczym
.
4. Reprezentatywne wyniki
Fluorescencyjne węzły chłonne mogą być wykrywane z wysokim stosunkiem sygnału do tła. Ponadto przepływ ICG przez naczynia limfatyczne może być monitorowany, co pozwala na mapowanie węzłów chłonnych w czasie rzeczywistym. Na wyniki może mieć wpływ rosnąca głębokość węzła, co może wymagać różnych procedur oświetlenia w celu osiągnięcia detekcji. Przyszłe zastosowanie specyficznych środków fluorescencyjnych ukierunkowanych na nowotwór może zapewnić śródoperacyjne wykrywanie dodatniego SLN z komórkami rakowymi przy użyciu tej technologii.

Rysunek 1. Teoria wartowniczego węzła chłonnego (SLN). SLN jest pierwszym węzłem chłonnym drenującym z guza.

Rysunek 2. Schematyczny obraz systemu wielospektralnej kamery fluorescencyjnej (A). Podstawowa konfiguracja systemu kamer na sali operacyjnej (B).

Rysunek 3. Wielospektralne obrazowanie fluorescencyjne węzła chłonnego w raku sromu. Kolorowy obraz węzła chłonnego in vivo (A). Obraz fluorescencyjny tego samego węzła chłonnego, in vivo (B). Obraz fluorescencji pseudokolorowej nałożony na obraz kolorowy (C).

Rysunek 4. Wielospektralne obrazowanie fluorescencyjne węzła chłonnego ex vivo w raku szyjki macicy. Kolorowy obraz węzła chłonnego ex vivo (A). Obraz fluorescencyjny tego samego węzła chłonnego, ex vivo (B). Obraz fluorescencji pseudokolorowej nałożony na obraz kolorowy (C).