1. Śródoperacyjna multispektralna kamera fluorescencyjna
- Dedykowany system kamer został opracowany w Instytucie Obrazowania Biologicznego i Medycznego (IBMI, Technical University / Helmholtz Zentrum, Monachium, Niemcy) w ścisłej współpracy z firmą SurgOptix (SurgOptix Inc, Redwood Shores, CA, USA). Konfiguracja śródoperacyjnego wielospektralnego systemu kamer fluorescencyjnych przedstawiona jest na Rysunku 2.
- Światło przechodzi przez układ optyczny i zostaje rozdzielone na światło widzialne, światło w pasmie długości fali emisji (fluorescencji) oraz światło w pasmie długości fali wzbudzenia. Wiązki te są rejestrowane przez kamery CCD (CCD) (Rysunek 2). Sygnały wielospektralne ze wszystkich kamer są przetwarzane w celu korekcji artefaktów i uzyskania rzeczywistego ilościowego rozkładu bio-dystrybucji fluorochromu. Sygnały barwne i fluorescencyjne mogą być wyświetlane jako oddzielne obrazy na zewnętrznych monitorach lub nałożone na siebie w jednym obrazie.
- Filtry wzbudzenia i emisji kamery zostały w niniejszym pomiarze ustawione odpowiednio na zbieranie sygnału przy 750 nm i 800 ±20 nm.
2. Przygotowanie optycznego środka kontrastowego
- Fluorescencyjny środek kontrastowy zieleń indocyjaninowa (ICG, Pulsion AG, Monachium, Niemcy) jest przygotowywany w warunkach sterylnych. Stosuje się stężenie 0,5 mg/mL. Ważne jest użycie sterylnej wody destylowanej, a nie chlorku sodu (NaCl), ponieważ ten drugi spowodowałby agregację ICG.
- Po przygotowaniu roztwór należy przechowywać w ciemnym i chłodnym miejscu, aby uniknąć szybkiego pogorszenia intensywności fluorescencji wskutek fotoblaknięcia. Uwaga: od tego momentu należy chronić ICG przed światłem.
3. Obrazowanie śródoperacyjne – przygotowanie i wstrzyknięcie ICG
- Kamera zostaje ustawiona i uruchomiona w sali operacyjnej przed zabiegiem, aby zminimalizować zakłócenia standardowej procedury chirurgicznej, a następnie podłączona do ekranów wysokiej rozdzielczości (Rysunek 2B).
- Kamera zostaje przykryta standardowymi jałowymi obłożeniami (Carl Zeiss Vision BV, Sliedrecht, Holandia, OPMI Drape REF 306071) przez badacza w sterylnej odzieży operacyjnej.
- Uwaga: należy zadbać o stosowanie wyłącznie bezbarwnych środków dezynfekcyjnych, ponieważ kolorowe środki dezynfekcyjne są często autofluorescencyjne i mogą zakłócać proces obrazowania. Ponadto jałowe obłożenia i markery chirurgiczne mogą wykazywać autofluorescencję. Zaleca się przetestowanie wszystkich materiałów używanych w sali operacyjnej i w polu operacyjnym pod kątem autofluorescencji przed zabiegiem.
- Fluorescencyjny środek kontrastowy, zieleń indocyjaninowa (ICG), jest przygotowywana w warunkach sterylnych. Stosuje się stężenie 0,5 mg/mL. Ważne jest użycie sterylnej wody destylowanej, a nie NaCl, ponieważ ten drugi spowodowałby agregację ICG. Po przygotowaniu roztwór musi być przechowywany w ciemnym i chłodnym miejscu, aby uniknąć szybkiego spadku intensywności fluorescencji. Uwaga: zaleca się zmianę rękawiczek po przygotowaniu ICG, ponieważ nawet niewielka ilość rozlanego ICG może wpłynąć na jakość obrazu.
- Procedura obrazowania rozpoczyna się po otwarciu jamy brzusznej. Po odsłonięciu obszaru zainteresowania kamera jest wprowadzana do pola operacyjnego. Zoom i ostrość są regulowane w warunkach sterylnych. Światła w sali operacyjnej zostają wyłączone w celu lepszej detekcji sygnału fluorescencyjnego.
- 1,0 mL ICG o stężeniu 0,5 mg/mL miesza się z 1,0 mL standardowego barwnika niebieskiego (patent blue / bleu patenté, Guerbet, Francja) w jednej strzykawce. Chirurg wstrzykuje środek kontrastowy w czterech kwadrantach wokół guza pierwotnego, zapobiegając rozlaniu środka. Uwaga: w przypadku rozlania ICG na rękawiczki chirurgiczne konieczna jest zmiana rękawiczek. Wykonuje się statyczne obrazy lub nagrania wideo w czasie rzeczywistym z przepływu limfy i pojawienia się fluorescencyjnego węzła chłonnego wartowniczego (Rysunek 3). Wszystkie obrazy i filmy są zapisywane bezpośrednio na komputerze.
- Oprócz fluorescencji, SLN jest również wykrywany zgodnie ze standardowym protokołem, przy użyciu sondy gamma, poprzez inspekcję wizualną w celu stwierdzenia niebieskiego zabarwienia lub obiema tymi metodami. Tracer radioaktywny jest zazwyczaj podawany na jeden dzień przed operacją, po czym wykonuje się lymphoscintygrafię w celu wykrycia radioaktywnego SLN. Jest to część standardowej procedury i nie wchodzi w skład protokołu obrazowania fluorescencyjnego.
- Wycięcie SLN w czasie rzeczywistym jest prowadzone zarówno na podstawie fluorescencji, jak i niebieskiego zabarwienia węzłów chłonnych. Funkcja obrazowania w czasie rzeczywistym kamery pomaga wykryć wszelką pozostałą fluorescencję lub nieoczekiwane lokalizacje fluorescencyjnych węzłów.
- Po wycięciu SLN wykonuje się obrazy ex vivo wszystkich wyciętych węzłów chłonnych w celu sprawdzenia obecności sygnału fluorescencyjnego. Czas ekspozycji może zostać wydłużony dla uzyskania wyższej rozdzielczości podczas przechwytywania statycznych obrazów (Rysunek 4).
- Badanie histopatologiczne węzłów chłonnych pozwala stwierdzić obecność lub brak komórek nowotworowych w węźle chłonnym wartowniczym.
4. Reprezentatywne wyniki
Fluorescencyjne węzły chłonne mogą być wykrywane z wysokim stosunkiem sygnału do tła. Możliwe jest również monitorowanie przepływu ICG przez naczynia limfatyczne, co pozwala na mapowanie węzłów chłonnych w czasie rzeczywistym. Wyniki mogą być zależne od zwiększającej się głębokości położenia węzła, co może wymagać zastosowania innych procedur oświetlenia w celu uzyskania detekcji. Przyszłe zastosowanie specyficznych fluorescencyjnych czynników celujących w guzy może umożliwić śródoperacyjne wykrywanie dodatniego SLN z komórkami nowotworowymi przy użyciu tej technologii.

Rysunek 1. Teoria węzła chłonnego wartowniczego (SLN). SLN to pierwszy drenujący węzeł (lub węzły) chłonny z guza.

Rycina 2. Schematyczny obraz wielospektralnego systemu kamery fluorescencyjnej (A). Podstawowy układ systemu kamery w sali operacyjnej (B).

Rysunek 3. Wielospektralne obrazowanie fluorescencyjne węzła chłonnego w raku sromu. Kolorowy obraz węzła chłonnego in vivo (A). Obraz fluorescencyjny tego samego węzła chłonnego, in vivo (B). Pseudokolorowy obraz fluorescencyjny nałożony na obraz kolorowy (C).

Rycina 4. Wielospektralne obrazowanie fluorescencyjne węzła chłonnego ex vivo w raku szyjki macicy. Obraz kolorowy węzła chłonnego ex vivo (A). Obraz fluorescencyjny tego samego węzła chłonnego, ex vivo (B). Pseudokolorowy obraz fluorescencyjny nałożony na obraz kolorowy (C).