Method Article

Metoda osadzania kolonii drożdży

DOI:

10.3791/2510

March 22nd, 2011

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Metoda osadzania kolonii drożdży pozwalająca na sekcje dla mikroskopii świetlnej i elektronowej. Protokół ten umożliwia określenie rozmieszczenia komórek zarodnikowych i komórek pseudostrzępkowych w koloniach, zapewniając nowe narzędzie do zrozumienia organizacji typów komórek w społeczności grzybów.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tworzenie różnych typów komórek w zarodkach jest kluczowym mechanizmem w rozwoju metazoanów. Społeczności mikroorganizmów, takie jak kolonie i biofilmy, również wykazują wzorce typów komórek. Na przykład u drożdży S. cerevisiae komórki zarodnikowe i komórki pseudostrzępkowe nie są równomiernie rozmieszczone w koloniach. Funkcjonalne znaczenie wzorców i mechanizmy molekularne, które leżą u podstaw tych wzorców, są nadal słabo poznane.

Jednym wyzwaniem związanym z badaniem wzorców typów komórek w koloniach grzybów jest to, że w przeciwieństwie do tkanki metazoan, komórki w koloniach są stosunkowo słabo połączone ze sobą. W szczególności kolonie grzybów nie zawierają tak rozległego poziomu macierzy zewnątrzkomórkowej, jak w większości tkanek . W tym artykule przedstawiamy metodę osadzania i dzielenia kolonii drożdży, która ujawnia wewnętrzne wzorce typów komórek w tych koloniach. Metoda może być stosowana do przygotowania grubych skrawków (0,5 μ) przydatnych w mikroskopii świetlnej oraz cienkich skrawków (0,1 μ) nadających się do transmisyjnej mikroskopii elektronowej. Komórki workowe i pseudostrzępkowe można łatwo odróżnić od jajowatych komórek drożdży za pomocą mikroskopii świetlnej , podczas gdy wewnętrzną strukturę tych komórek można uwidocznić za pomocą EM.

Metoda opiera się na otoczeniu kolonii agarem, infiltracji ich pożywką Spurra, a następnie dzieleniu na sekcje. Do tego protokołu nadają się kolonie o średnicy w zakresie 1-2 mm. Oprócz wizualizacji wnętrza kolonii, metoda umożliwia wizualizację regionu kolonii, który atakuje leżący pod spodem agar.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Izolacja i utrwalenie kolonii

  1. Inkubować 300 kolonii na podłożu agarowym przez wskazany czas (izolowana kolonia powinna mieć średnicę 1-2 mm).
  2. Usuń kolonię (przodem do góry) i podłoże za pomocą wąskiej szpatułki.
  3. Umieść kilka kropli 2% agaru w temperaturze 42°C na szkiełku mikroskopowym za pomocą końcówki pipetmana o pojemności 1 ml i natychmiast umieść kolonię na agarze stroną do góry, zanim stwardnieje.
  4. Umieść kilka kropli 2% agaru w temperaturze 42°C na kolonii i pozostaw do zestalenia.
  5. Nosić rękawice na wszystkich etapach pozostałej części tego protokołu
  6. Przycinaj blok żyletką i umieść go w 3,5 ml fiolki z ....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przedstawiona metoda odsłania wewnętrzne struktury kolonii. Ponieważ metoda ta jest skuteczna w określaniu wzorców typów komórek w szeregu szczepów S. cerevisiae o różnej morfologii kolonii, a także w pokrewnym gatunku S. paradoxus 5, metoda ta prawdopodobnie będzie również działać na szerokim zakresie grzybów i innych mikroorganizmów.

Jednym z kluczowych kroków dla powodzenia metody jest zapewnienie, że cała kolonia, w tym wierzchołek kolonii, jest otoczona agarem przez .......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badania zostały sfinansowane przez NIH 1R15GM094770.

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Tetratlenek osmuMikroskopia elektronowa SciencesRT 19152
Formy do zatapiania silikonuFisher ScientificNC 9975029
Cykloalifatyczny żywica epoksydowaMikroskopia elektronowa NaukiRT 15004ERL 4221
Żywica epoksydowaMikroskopia elektronowa NaukiRT 13000DER 736
BezwodniknonenylobursztynowyMikroskopia elektronowa NaukiRT 19050NSA
2-dimetyloamina– tanolMikroskopia elektronowa SciencesRT 13300DMAE
Media montażoweKPL Inc71-00-16
Kołoobrotowe Ted Pella, Inc.Pelco 1055
MikrotomLeica MicrosystemsUltracut S

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kimmel, A. R., Firtel, R. A. Breaking symmetries: regulation of Dictyostelium development through chemoattractant and morphogen signal-response. Curr Opin Genet Dev. 14, 540-540 (2004).
  2. Palkova, Z., Vachova, L. Life within a c....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Yeast Colony EmbeddingAgar EmbeddingSpurrs Resin InfiltrationLight MicroscopyElectron MicroscopyColony SectioningFungal Colony AnalysisSporulated Cell DistributionPseudohyphal Cell PatterningAgar Invasion Visualization

Related Articles