Method Article

Gradientowe urządzenie mikroprzepływowe do biologii komórki

DOI:

10.3791/271

August 30th, 2007

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Opisujemy protokół mikrowytwarzania urządzenia mikroprzepływowego generującego gradienty, które może generować gradienty przestrzenne i czasowe w dobrze zdefiniowanym mikrośrodowisku. W tym podejściu urządzenie mikroprzepływowe generujące gradient może być wykorzystywane do badania ukierunkowanej migracji komórek, embriogenezy, gojenia się ran i przerzutów raka.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Opisano wytwarzanie i działanie generującego gradient urządzenia mikroprzepływowego do badania zachowania komórek. Platforma mikroprzepływowa jest narzędziem eksperymentalnym, ponieważ może precyzyjnie manipulować przepływami płynów, umożliwiać eksperymenty o wysokiej przepustowości i generować stabilne rozpuszczalne gradienty stężeń. W porównaniu z konwencjonalnymi generatorami gradientów, urządzenia mikroprzepływowe oparte na poli(dimetylosiloksanach) (PDMS) mogą generować stabilne gradienty stężeń czynników wzrostu o dobrze zdefiniowanych profilach. W tym przypadku opracowaliśmy proste urządzenia mikroprzepływowe generujące gradient z trzema oddzielnymi wlotami. Trzy mikrokanały połączone w jeden mikrokanał w celu wygenerowania gradientów stężeń. Stabilność i kształt gradientów czynników wzrostu potwierdzono za pomocą izotiocyjanianu fluoresceiny (FITC)-dekstranu o masie cząsteczkowej zbliżonej do naskórkowego czynnika wzrostu (EGF). Za pomocą tego urządzenia mikroprzepływowego wykazaliśmy, że fibroblasty wystawione na gradienty stężeń EGF migrowały w kierunku wyższych stężeń. Kierunkową orientację migracji komórek i ruchliwość migrujących komórek oceniono ilościowo za pomocą analizy śledzenia komórek. Tak więc to generujące gradient urządzenie mikroprzepływowe może być przydatne do badania i analizowania zachowania migrujących komórek.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

A. Mikrofabrykacja urządzenia mikroprzepływowego generującego gradient

  1. Wafel krzemowy jest traktowany reaktywną plazmą tlenową (5 min przy 30 W, Harrick Scientific, NY).
  2. Fotorezystor ujemny (SU-8 50, Microchem, MA) jest powlekany wirowo z prędkością 1000 obr./min przez 1 minutę na płytce Si.
  3. Wafelek piecze się na miękko w temperaturze 65°C przez 10 minut, a następnie w temperaturze 95°C przez 30 minut na płycie grzewczej.
  4. Wafel jest wystawiany na działanie światła UV (200 W) przez 3 minuty przez przezroczystą maskę o minimalnym rozmiarze elementu 30 μm.
  5. Wafel jest wypiekany w temperaturze 65°C przez 1 min i w temperaturze 95°C przez 10 min.
  6. Forma główna Si z kanałami o grubości 100 μm została opracowana przy użyciu wywoływacza fotorezystu SU-8.
  7. Wafel zawierający mikrokanaliki umieszcza się na szalce Petriego.
  8. Formy z poli(dimetylosiloksanu) (PDMS) (Sylgard 184) są wytwarzane przez zmieszanie elastomeru silikonowego i utwardzacza (stosunek 10:1).
  9. Mieszaninę PDMS wylewa się na formę główną Si.
  10. Formę wzorcową Si umieszcza się na eksykatorze próżniowym w celu usunięcia pęcherzyków na 10 minut.
  11. PDMS utwardza się w temperaturze 70 °C przez 1 ~ 2 godziny.
  12. Formy PDMS są odklejane od formy głównej Si.

B. Konfiguracja eksperymentalna

  1. Wlot, wylot i wlot komórki urządzenia mikroprzepływowego opartego na PDMS jest wykrawany za pomocą ostrych dziurkaczy.
  2. Urządzenie i szklane szkiełko (2×3 cala) są nieodwracalnie połączone przez reaktywną plazmę tlenową (5 min przy 30 W, Harrick Scientific, NY).
  3. Rurka polietylenowa (PE 20, Becton Dickinon, MD) jest wkładana do wlotów infuzji urządzenia mikroprzepływowego, a następnie podłączana do pompy strzykawkowej.
  4. Izotiocyjanian fluoresceiny (FITC)-dekstran (MW = 10 kD, 10 μM, Sigma) i bufor (PBS, Invitrogen, CA) są podawane do urządzenia mikroprzepływowego w celu potwierdzenia stabilnych gradientów wewnątrz urządzenia fluidycznego.
  5. Macierz zewnątrzkomórkowa (ECM) (tj. fibronektyna) jest powlekana wewnątrz urządzenia mikroprzepływowego przez 1 godzinę w inkubatorze (37°C).
  6. Komórki fibroblastów NIH 3T3 są trypsynizowane i dysocjowane.
  7. Zdysocjowane komórki są ładowane do urządzenia mikroprzepływowego (o szerokości 800 μm) o gęstości komórek 2×106 komórek/ml.
  8. 2 ml pożywki i 50 ng/ml naskórkowego czynnika wzrostu (EGF) wprowadza się do urządzenia mikroprzepływowego w celu generowania rozpuszczalnych gradientów za pomocą pompy strzykawkowej (0,05 μl/min).
  9. Komórki są monitorowane w czasie rzeczywistym co 5 minut za pomocą odwróconego mikroskopu (Nikon TE 2000).

 

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Komórki wystawione na działanie stabilnych gradientów stężeń EGF w urządzeniu mikroprzepływowym migrowały w kierunku wyższych stężeń. Kierunkową orientację migracji komórek, indeks chemotaktologiczny, ruchliwość migrujących komórek badano za pomocą analizy śledzenia komórek. Dlatego ta generująca gradient platforma mikroprzepływowa może być przydatna do badania przerzutów raka, embriogenezy i przewodnictwa aksonów.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Odczynnik Dextran-FITCSigma-AldrichFD10SIzotiocyjanian fluoresceiny (FITC) sprzężony dekstran (10kD)
hr-EGFInvitrogen13247-051ludzki rekombinowany naskórkowy czynnik wzrostu
PDMSKR Anderson Co.2065622Poli(dimetylosiloksan) (PDMS), Dow Corning Sylgard 184 (8,6 funta)
Ujemny fotorezystor MicroChem Corp.SU-8 50
Si wafelsilikonowy, 4-calowe
szalki
Rurki BD BiosciencesPE 20
PBSInvitrogen
Fibronectin
NIH 3T3 liniaKomórki fibroblastów
odwróconyNikon InstrumentsTE 2000
Petriego polietylenowe komórkowaMikroskop

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Jeon, N. L., Baskaran, H., Dertinger, S. K. W., Whitesides, G. M., Van de Water, L., Toner, M. Neutrophil chemotaxis in linear and complex gradients of interleukin-8 formed in a microfabricated device. Nat. Biotechnol. 20, 826-830 (2002).
  2. Lin, F., Nguyen, C. M., Wang, S. J., Saadi, W., Gross, S. P., Jeon, N. L. Effective neutrophil chemotaxis is strongly influenced by mean IL-8 concentration. Biochem. Biophys. Res. Commun. 319, 576-581 (2004).
  3. Chung, B. G., Flanagan, L. A., Rhee, S. W., Schwartz, P. H., Lee, A. P., Monuki, E. S., Jeon, N. L. Human neural stem cell growth and differentiation in a gradient-generating microfluidic device. Lab Chip. 5, 401-406 (2005).
  4. Saadi, W., Wang, S. J., Lin, F., Jeon, N. L. A parallel-gradient microfluidic chamber for quantitative analysis of breast cancer cell chemotaxis. Biomed. Microdevices. 8, 109-118 (2007).
  5. Chung, B. G., Park, J. W., Hu, J. S., Huang, C., Monuki, E. S., Jeon, N. L. A hybrid microfluidic-vacuum device for interfacing with conventional cell culture platform. BMC Biotechnol. 7, (2007).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Microfluidic DeviceGradient GenerationPDMS FabricationCell MigrationEGF ConcentrationFITC DextranPlasma BondingCell TrackingMicrochannel DesignSoluble Gradients

Related Articles