Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Badania przesiewowe śmierci komórki za pomocą barwienia DAPI: metoda szybkiego badania przesiewowego klonogennej śmierci komórek wywołanej podczerwienią w liniach komórek nowotworowych

4.8K wyświetleń

30 kwietnia 2023

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Kobayashi, D. et al. Jednoetapowy protokół oceny sposobu śmierci komórek klonogennych wywołanej promieniowaniem za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej. J. Vis. Exp. (2017)

Ten film demonstruje metodologię badania głównych profili śmierci komórek w liniach komórek nowotworowych wywołanych promieniowaniem jonizującym (IR) za pomocą testu barwienia DAPI. Jądra barwione DAPI komórek docelowych przechodzących śmierć komórkową wykazują odrębną morfologię i można je łatwo zidentyfikować za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej.

Protokół

1. Przygotowanie materiałów

  1. Szkiełka nakrywkowe w autoklawie
    1. Umieść szkiełka nakrywkowe w szklanej zlewce.
    2. Przykryj szklaną zlewkę folią.
    3. Autoklaw w temperaturze 121 °C przy ciśnieniu 15 psi przez 20 min.
    4. Suszyć w temperaturze 50 °C. Przechowywać w temperaturze pokojowej w okapie hodowlanym.
  2. Przygotuj roztwór utrwalający: 3% paraformaldehydu + 2% sacharozy w soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS)
    1. Do szklanej butelki o pojemności 1 000 ml dodaj 700 ml PBS i 30 g paraformaldehydu.
      ostrożność: Paraformaldehyd jest, należy nosić odpowiednie rękawice.
    2. Całkowicie rozpuść paraformaldehyd, ogrzewając go do temperatury 80 °C za pomocą kuchenki mikrofalowej.
      ostrożność: Opary paraformaldehydu są toksyczne, noś maskę.
    3. Pozostaw na noc w temperaturze pokojowej.
    4. Dodaj 20 g sacharozy.
    5. Dodaj PBS, aby całkowita objętość wynosiła 1 l.
    6. Podwielokrotność w probówkach o pojemności 50 ml. Roztwór utrwalający może być przechowywany przez 3 lata w temperaturze -20 °C lub przez 3 miesiące w temperaturze 4 °C.

2. Napromieniowanie

UWAGA: Z promiennikiem rentgenowskim należy obchodzić się ostrożnie, zgodnie z instrukcjami producenta.

  1. Zbadaj komórki pod mikroskopem z odwróconymi fazami. Upewnij się, że komórki są przymocowane do szkiełka nakrywkowego i żywe.
  2. Naświetlić czaszę promieniami rentgenowskimi 6 Gy (1,4 Gy/min, 300 KVP, 20 mA).
  3. Inkubować przez 72 godziny w temperaturze 37 °C w atmosferze zawierającej 5%CO2,
    nuta: Czas inkubacji można modyfikować zgodnie z projektem eksperymentalnym

3. Fiksacja

  1. Odessać pożywkę hodowlaną z naczynia.
  2. Za pomocą nożyczek odetnij końcówkę końcówki mikropipety o pojemności 1 000 μl w odległości 5 mm od końca.
    nuta: Wycięta końcówka pomaga płynnie nałożyć roztwór utrwalający.
  3. Za pomocą odciętej końcówki dodaj 1 ml roztworu utrwalającego (przygotowanego w kroku 1.2) do naczynia ze ściany bocznej naczynia.
    nuta: Ten etap jest zależny od czasu i dlatego powinien być wykonywany bez wymiany końcówek mikropipet w przypadku pracy z wieloma próbkami. Nałożenie roztworu utrwalającego bezpośrednio na dno naczynia może uszkodzić komórki.
  4. Umieść naczynie w kwadratowym naczyniu do hodowli. Delikatnie potrząśnij kwadratowym naczyniem hodowlanym, aby równomiernie rozprowadzić roztwór utrwalający na szkiełku nakrywkowym.
  5. Inkubować przez 10 minut w temperaturze pokojowej.
  6. Odessać roztwór utrwalający z naczynia.
  7. Dodaj 2 ml PBS do naczynia ze ścianki bocznej naczynia.
    nuta: Nałożenie PBS bezpośrednio na dno naczynia może uszkodzić komórki.
  8. Odessać PBS z naczynia.
  9. Powtórz kroki 3.7 i 3.8 dwa razy.
    nuta: Danie można przechowywać przez 1 tydzień w temperaturze 4 °C, a szkiełka nakrywkowe są skąpane w 2 ml PBS.

4. Barwienie DAPI

  1. Na szkiełko podstawowe nanieść 5 μl 1 μg/ml odczynnika barwiącego DAPI.
    nuta: Odczynnik barwiący DAPI jest stabilny przez 6 miesięcy, jeśli jest przechowywany w sposób chroniony przed światłem w temperaturze -20 °C lub niższej.
  2. Za pomocą skalpela usuń szkiełko nakrywkowe z naczynia.
  3. Odciągnij nadmiar PBS z szkiełka nakrywkowego, dotykając krawędzi szkiełka nakrywkowego ręcznikiem papierowym.
  4. Zamontuj szkiełko nakrywkowe do góry nogami na kropli odczynnika barwiącego DAPI na szkiełku podstawowym tak, aby komórki były wystawione na działanie odczynnika barwiącego DAPI.
    nuta: Ten krok jest wrażliwy na czas. Wysuszenie odczynnika barwiącego DAPI może prowadzić do nieoptymalnego barwienia.
  5. Próbki można przechowywać przez 1 rok w temperaturze -20 °C.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Szkiełko nakrywkowe MatsunamiC013001
Paraformaldehyd Sigma-Aldrich Zobacz materiał P6148-1KG
sacharoza Sigma-Aldrich84097-250G
Sól fizjologiczna buforowana fosforanami Cosmo BioNumer katalogowy: 16232000
skalpel Kai MedycznyNr 20, 520-A
Naczynie do hodowli komórkowych 35 mm sokół353001
mikroskop z odwróconymi fazami Shimazu114-909
Promiennik promieniowania rentgenowskiego Faksitron BiopticsFaks RX-650
kwadratowe naczynie hodowlane CorningNumer katalogowy: 431110
szkło przesuwne MatsunamiZawody Pro-11
Odczynnik do barwienia DAPI Sygnalizacja komórkowa Zobacz materiał 8961S
Mikroskop fluorescencyjny Nikon ZAĆMIENIE Ni
mikroskop fluorescencyjny filtr DAPI NikonU-FUW, BP340-390, BA420IF, DM410
soczewka mikroskopu fluorescencyjnego (20×) NikonPlan Apo λ 20X/0.75
soczewka mikroskopu fluorescencyjnego (60×, olej) NikonOlej Plan Apo λ 60X/1.40
olej OlympusN5218600
Kamera CCD NikonDS-Qi2
oprogramowanie do akwizycji obrazów cyfrowych NikonDokument dotyczący elementów bezpieczeństwa
środek do czyszczenia soczewek Olympus OT0552 (Kanał OT0552
chloroform WakoNumer katalogowy: 035-02616
powiedział: powiedział: i informacji )

Tagi

Promieniowanie jonizującemikroskopia fluorescencyjnadetekcja apoptozykatastrofa mitotycznaanaliza starzenia się komóreklinie komórkowe nowotworówprotokół fiksacji