Wszystkie procedury z udziałem ludzi zostały przeprowadzone zgodnie z instytucjonalnymi, krajowymi i międzynarodowymi wytycznymi dotyczącymi dobrostanu ludzi i zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję rewizyjną.
1. Oczyszczanie krążącego cfDNA z 1 ml osocza
UWAGA: Ten krok jest wykonywany za pomocą zestawu komercyjnego (patrz Tabela materiałów). Wszystkie zderzaki są dostarczane z zestawem.
- Przygotowanie i odczynników
ostrożność: Nie dodawać kwaśnych roztworów ani wybielaczy bezpośrednio do odpadów z przygotowania próbki. Sole guanidyny obecne w buforze do lizy, buforze wiążącym i buforze płuczącym-1 w połączeniu z wybielaczem lub kwasami mogą wytwarzać wysoce reaktywne związki.
- Bufor wiążący: Wymieszaj 300 ml koncentratu buforu wiążącego z 200 ml 100% izopropanolu, aby uzyskać 500 ml roboczego buforu wiążącego. Przechowywać w temperaturze pokojowej.
nuta: Bufor wiążący umożliwia optymalne wiązanie krążących kwasów nukleinowych z błoną krzemionkową. 500 ml buforu wiążącego wystarcza do przetworzenia 276, 138, 92, 69 lub 55 próbek odpowiednio 1, 2, 3, 4 lub 5 ml osocza i jest stabilne przez 1 rok w temperaturze pokojowej.
- Wash Buffer-1: Wymieszaj 19 ml koncentratu Wash Buffer-1 z 25 ml 96-100% etanolu, aby uzyskać 44 ml działającego Wash Buffer-1. Przechowywać w temperaturze pokojowej.
nuta: Wash Buffer-1 eliminuje zanieczyszczenia związane z membraną krzemionkową. 44 ml roboczego buforu do płukania-1 wystarcza do przetworzenia 73 próbek 1/2/3/4/5 ml osocza i jest stabilny przez 1 rok w temperaturze pokojowej.
- Wash Buffer-2: Dobrze wymieszaj 13 ml koncentratu Wash Buffer-2 z 30 ml 96-100% etanolu, aby uzyskać 43 ml działającego Wash Buffer-2. Przechowywać w temperaturze pokojowej.
nuta: Wash Buffer-2 eliminuje zanieczyszczenia związane z membraną krzemionkową. 43 ml działającego buforu do płukania-2 wystarcza do przetworzenia ~56 próbek 1/2/3/4/5 ml osocza i jest stabilny przez 1 rok w temperaturze pokojowej.
- Do probówki zawierającej 310 μg liofilizowanego nośnika RNA dodać 1,550 μl buforu elucyjnego, aby przygotować roztwór nośnego RNA o stężeniu 0,2 μg/μl. Po dokładnym rozpuszczeniu nośnego RNA, podzielić roztwór na odpowiednie podwielokrotności i przechowywać w temperaturze od -30 °C do -15 °C. Nie zamrażaj i nie rozmrażaj tych porcji więcej niż 3 razy. Do buforu do lizy, jak pokazano w tabeli 1, dodać odtworzony nośnikowy RNA rozpuszczony w buforze elucyjnym.
nuta: Ponieważ nośnik RNA nie rozpuszcza się bezpośrednio w buforze Lysis, musi zostać rozpuszczony najpierw w buforze elucyjnym, a następnie w buforze Lysis. Po pierwsze, wiązanie błony krzemionkowej z kwasami nukleinowymi jest wzmocnione, gdy w próbce znajduje się bardzo mało cząsteczek docelowych. Po drugie, ryzyko degradacji RNA jest zmniejszone ze względu na obecność dużych ilości nośnego RNA.
- Przed rozpoczęciem izolacji należy doprowadzić kolumny i próbki do temperatury pokojowej i w razie potrzeby dostosować objętość próbki do 1 ml za pomocą sterylnego roztworu soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS). Podgrzej 2 łaźnie wodne lub bloki grzewcze, które zawierają 50 ml probówek wirówkowych i 2 ml probówek zbiorczych, odpowiednio do 60 °C i 56 °C.
- Do probówki wirówkowej o pojemności 50 ml dodaj 100 μl proteinazy K, 1 ml osocza i 0,8 ml buforu do lizy zawierającego 1,0 μg nośnego RNA (przygotowanego w kroku 1.1.4). Zamknąć probówkę wirówkową nakrętką i mieszać zawartość przez wirowanie impulsowe przez 30 s, zapewniając jednocześnie widoczny wir w probówce. Dokładne wymieszanie zawartości jest ważne dla efektywnej lizy.
nuta: Natychmiast po wirowaniu przejdź do kroku 1.4 bez zwłoki.
- Inkubować roztwór w temperaturze 60 °C przez 30 minut.
- Zdejmij nakrętkę, dodaj 1,8 ml buforu wiążącego do probówki i dokładnie mieszaj z wirowaniem pulsacyjnym przez 15–30 s po umieszczeniu nakrętki.
- Powstałą mieszaninę inkubować przez 5 minut na lodzie i włożyć kolumnę z membraną krzemionkową do aparatu próżniowego podłączonego do pompy próżniowej. Następnie mocno włóż przedłużacz probówki o pojemności 20 ml do otwartej kolumny, aby zapobiec wyciekowi próbki.
- Ostrożnie wlej inkubowaną mieszaninę do przedłużacza rurki kolumny i włącz pompę próżniową. Po całkowitym przejściu mieszaniny lizatu przez kolumny, wyłącz pompę próżniową, zwolnij ciśnienie do 0 mbar, a następnie wyjmij i wyrzuć przedłużacz rurki.
nuta: Aby uniknąć zanieczyszczenia krzyżowego, przedłużacz rurki należy ostrożnie wyrzucić, aby zapobiec jego rozprzestrzenianiu się po sąsiednich kolumnach.
- Wyjąć kolumnę z aparatu próżniowego, włożyć do probówki zbiorczej i odwirować przy 11 000 x g przez 30 s w temperaturze pokojowej, aby usunąć resztki lizatu. Odrzuć przepływ.
- Dodać 600 μl buforu do płukania-1 do kolumny, odwirować przy 11 000 x g przez 1 minutę w temperaturze pokojowej, odrzucić przepływ.
- Dodać 750 μl buforu do płukania-2 do kolumny, odwirować przy 11 000 x g przez 1 minutę w temperaturze pokojowej i odrzucić przepływ.
- Dodać 750 μl etanolu (96–100%) do kolumny, odwirować przy 11 000 x g przez 1 minutę w temperaturze pokojowej i odrzucić przepływ.
- Odwirować kolumnę o stężeniu 20 000 x g przez 3 minuty, umieszczając ją w czystej probówce zbiorczej o pojemności 2 ml.
- Całkowicie wysuszyć zespół kolumny membranowej, umieszczając go w nowej probówce zbiorczej o pojemności 2 ml z otwartą pokrywą i inkubując w temperaturze 56 °C przez 10 minut.
- Umieścić kolumnę w czystej probówce elucyjnej o pojemności 1,5 ml. Na środek membrany kolumny nanieść 20–150 μl buforu elucyjnego i inkubować w temperaturze pokojowej przez 3 minuty przy zamkniętej pokrywie.
nuta: Upewnij się, że bufor elucyjny jest zrównoważony do temperatury pokojowej. W przypadku stosowania buforu elucyjnego o objętości mniejszej niż 50 μl, należy upewnić się, że jest on ostrożnie dozowany na środek membrany. Pomaga to w całkowitej elucji związanego DNA. Jednak objętość elucji nie jest stała i można ją zmieniać zgodnie z dalszymi aplikacjami. Odzyskany eluat może wynosić do 5 μl, a na pewno mniej niż objętość elucji zastosowana do kolumny.
- Odzyskany eluat odwirować w mikrowirówce o sile 20 000 x g przez 1 minutę w celu wymycia kwasów nukleinowych i przechowywać w temperaturze -20 °C.
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
Rozdział
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
pkt.
| Numer próby | Bufor do lizy (ml) | Nośnik RNA w buforze elucyjnym (μL) |
| 1 | 0,9 | 5,6 |
| cyfra arabska | 1.8 | Rozdział 11.3 |
| 3 | 2.6 | Rozdział 16,9 |
| 4 | 3,5 | 22,5 |
| 5 | 4.4 | Rozdział 28,1 |
| 6 | 5.3 | 33,8 |
| 7 | 6.2 | 39,4 |
| 8 | 7 | Rozdział 45 |
| 9 | 7,9 | 50,6 |
| 10 | 8,8 | 56,3 |
| 11 | Pytanie 9,7 | 61,9 |
| 12 | Rozdział 10.6 | 67,5 |
| 13 | Pytanie 11,4 | 73,1 |
| 14 | Rozdział 12.3 | 78,8 |
| 15 | Rozdział 13,2 | 84,4 |
| 16 | Rozdział 14,1 | 90 |
| 17 | 15 | 95,6 |
| Rozdział 18 | Rozdział 15,8 | 101,3 |
| Rozdział 19 | Rozdział 16,7 | 106,9 |
| 20 | Rozdział 17,6 | 112,5 pkt. |
| 21 | 18,5 | 118,1 |
| 22 Rozdział 22 | Rozdział 19,4 | 123,8 |
| 23 | Rozdział 20,2 | 129,4 |
| 24 | Dnia 21,1 | 135 Rozdział 135 |
Tabela 1. Objętości buforu do lizy i nośnego RNA (rozpuszczonego w buforze elucyjnym) wymagane do przetworzenia 1 ml próbek osocza.