Artykuł metodologiczny

Mysi model przerzutów do mózgu: metoda generowania mysiego modelu przerzutów do mózgu przez wstrzyknięcie komórek raka szyjnego

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Zhang, C. et al. Wstrzyknięcie komórek raka tętnicy szyjnej w celu wytworzenia mysich modeli przerzutów do mózgu. J. Vis. Exp. (2017)

Ten film demonstruje stworzenie mysiego modelu przerzutów do mózgu poprzez wstrzyknięcie do tętnicy szyjnej fluorescencyjnie znakowanych komórek rakowych. Model mysi może być wykorzystany do badania efektów nowych terapii i leżących u ich podstaw mechanizmów fizjologicznych.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Przygotowanie myszy do wstrzyknięcia komórek nowotworowych

  1. Znieczulić mysz przez dootrzewnowe (i.p.) wstrzyknięcie koktajlu ketamina/ksylazyna (ketamina 100 mg/kg, ksylazyna 10 mg/kg).
  2. Potwierdź pełne znieczulenie, szczypiąc stopy zwierzęcia i obserwuj brak odpowiedzi.
  3. Umieść mysz na szklanej płytce (używanej do odlewania żeli białkowych) i zabezpiecz gumkami.
  4. W razie potrzeby usuń włosy z szyi, goląc się lub nakładając niewielką ilość produktu do depilacji i wycierając włosy ręcznikiem papierowym.
    nuta: Jeśli używasz nagich myszy, pomiń ten krok, ponieważ nie mają one włosów na ciele.
  5. Oczyść skórę szyi, stosując powidon-jod i 70% alkoholu.
  6. Umieść mysz na stoliku mikroskopu preparacyjnego
  7. Wykonać nacięcie w skórze o długości ~1 cm za pomocą skalpela chirurgicznego.
  8. Tępo wypreparuj mięsień za pomocą ząbkowanych kleszczy, aby odsłonić tętnicę szyjną pod spodem.
  9. Oddziel tętnicę szyjną od sąsiedniego nerwu błędnego za pomocą kleszczy chirurgicznych.
  10. Za pomocą kleszczy chirurgicznych oddziel trochę bawełny od wacika, zwilż i ułóż w mniejszy wacik. Umieścić ten nawilżony buforem wacik pod tętnicą szyjną w zamierzonym miejscu wstrzyknięcia.
  11. Umieść szew dystalnie i proksymalnie do wacika i zrób luźne węzły. Zacisnąć węzeł proksymalny, aby zablokować przepływ krwi do miejsca wstrzyknięcia.
  12. Kontynuuj wstrzyknięcie komórki rakowej, jeśli tętnica szyjna na waciku wydaje się być pod pełnym ciśnieniem ze świeżą czerwoną krwią.

2. Wstrzyknięcie komórek rakowych do tętnicy szyjnej

  1. Wykonać wir i pobrać 100 μl komórek rakowych do strzykawki.
  2. Pod mikroskopem preparacyjnym powoli włóż igłę 31G (skosem do góry) do światła tętnicy szyjnej znajdującej się na wierzchu wacika.
  3. Powoli wstrzyknąć komórki ze strzykawki do tętnicy szyjnej. Udane wstrzyknięcie można zaobserwować pod mikroskopem po zmianie koloru pobliskich naczyń krwionośnych i mięśni, gdy buforowane komórki rakowe są wpychane do krążenia.
  4. Po zakończeniu wstrzykiwania całej objętości należy delikatnie unieść dystalną tętnicę szyjną, aby zapobiec niedomykalności.
  5. Szybko zaciśnij węzeł dystalny, aby zakończyć proces wstrzykiwania.
  6. Po zakończeniu iniekcji należy zacisnąć ligatury i przyciąć nadmiar jedwabnego szwu za pomocą mikronożyczek pod mikroskopem preparacyjnym. Cofnij oddzielony mięsień, aby zakryć miejsce rany. Zamknij skórę dwoma zszywkami.

3. Rekonwalescencja chirurgiczna

  1. Przenieś operowane zwierzę na poduszkę grzewczą w celu odzyskania zdrowia. Odzyskanie przytomności przez zwierzęta może zająć 30–60 minut. W międzyczasie należy podawać buprenorfinę (0,05 mg/kg) we wstrzyknięciu podskórnym jako znieruchoność pooperacyjną.
    nuta: Analgezja powinna być zapewniona zgodnie z lokalnym protokołem zatwierdzonym przez IACUC.
  2. Gdy zwierzęta się obudzą i powrócą do swojego normalnego zachowania, przywróć myszy do ich miejsca zamieszkania. Zapewnij myszom żelowy pokarm przez kilka dni po operacji. Prowadź dokumentację chirurgiczną i przechowuj ją w pokoju.

4. Nieinwazyjne obrazowanie in vivo

  1. W przypadku komórek znakowanych konstruktami reporterowymi lucyferazy zmierz skuteczność wstrzykiwania komórek rakowych za pomocą systemu obrazowania in vivo.
    nuta: Obrazowania nie wykonuje się w dniu wstrzyknięcia, aby uniknąć nadmiernego stresu u zwierząt badawczych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Roztwór chlorowodorku ketaminy/chlorowodorku ksylazynySigma-AldrichZobacz materiał K113
Rutynowy mikroskop stereoskopowy Leica M50Księga LeicaZobacz materiał M50Mikroskop jest modułowy i wysoce konfigurowalny, aby dopasować się do konkretnych wymagań przestrzennych
Chirurgiczny kombinezon jednorazowegoIntegra Miltex4-410Do wykonywania nacięć skóry
Kleszczyki do tkanek - 1 x 2 zębyNarzędzia naukoweNumer katalogowy 11021-12Aby dosadnie rozciąć mięśnie
Dumont #5 - Kleszcze do lustrzanego wykończeniaNarzędzia naukoweRozdział 11252-23Aby oddzielić i przygotować tętnicę szyjną do wstrzyknięcia
Nożyczki sprężynoweNarzędzia naukoweNumer katalogowy 15025-10Do przecinania szwów
Zestaw klipsów EZStoelting (Stoelting)Numer katalogowy 59020Do zamykania ran
Strzykawka do insuliny BDBecton Dickinson328438Do wstrzykiwania komórek
System obrazowania in vivo IVIS SpectrumPerkinElmer powiedział:124262
użytku szt. powiedział:

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Rozwarstwienie t tnicy szyjnejzawiesina kom rek nowotworowychkom rki nowotworowe znakowane GFPchirurgiczne w z y szewskieznieczulenie ketamin i ksylazynpooperacyjna analgezjaformowanie guza w m zguustanowienie modelu przerzut w

Powiązane artykuły