Artykuł metodologiczny

Izolowanie naczyń mózgowych myszy: protokół izolowania nienaruszonych naczyń z próbki mózgu myszy

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Boulay, A. C. et al. Oczyszczanie naczyń mózgowych myszy. J. Vis. Exp. (2015)

Ten film pokazuje izolację nienaruszonych naczyń z mózgu myszy, które tworzą barierę krew-mózg (BBB) wraz z neuronami i komórkami glejowymi. Wyizolowane naczynia mogą być wykorzystane jako model in vitro do zbadania ich roli w utrzymaniu homeostazy mózgu.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Sekcja

UWAGA: Sterylne warunki nie są wymagane, chyba że naczynia są używane do hodowli komórek. Przygotować roztwory naczyń izolacyjnych: B1, dodać 1,5 ml HEPES 1M do 150 ml HBSS; B2, dodać 3,6 g dekstranu do 20 ml witaminy B1; B3, dodać 1 g BSA do 100 ml witaminy B1.

  1. Przygotować zlewkę o pojemności 150 ml z 20 ml witaminy B1. Przechowywać na lodzie i przykryć parafilmem, aby uniknąć zanieczyszczenia powietrza.
  2. Głęboko znieczul mysz pod kapturem za pomocą małego ręcznika papierowego nasączonego 1 ml czystego izofluranu, który dodaje się do klatki. Znieczulenie weryfikuje się brakiem reakcji na uszczypnięcie palca u nogi. Zabij mysz przez zwichnięcie szyjki macicy.
    nuta: Kroki te są realizowane zgodnie z przepisami krajowymi i instytucjonalnymi.
  3. Opcjonalnie: Wykonaj perfuzję dosercową z 20 ml PBS 1x, aby wyeliminować zawartość krwi.
  4. Przekrój skórę skalpelem od szyi do nosa i odciągnij ją. Usuń wszystkie zanieczyszczające włoski za pomocą PBS 1x.
  5. Aby otworzyć czaszkę, najpierw włóż nożyczki z przodu do opuszki węchowej i otwórz nożyczki, aby rozerwać czaszkę na dwie części.
  6. Ostrożnie usuń mózg za pomocą szpatułki do mózgu. Wypreparuj splot naczyniówkowy z komór bocznych, ponieważ mogłyby one zanieczyścić preparat naczyń krwionośnych.
    nuta: Opcjonalnie: Końcowe przygotowanie będzie zawierało naczynia miąższowe i opony mózgowe. Jeśli nie jest to pożądane, opony można odkleić.
  7. Przenieś mózg do zlewki zawierającej roztwór B1 na lodzie. Jednocześnie można leczyć do 8 mózgów.

2. Homogenizacja tkanki mózgowej

  1. Za pomocą dwóch skalpeli ręcznie i energicznie ubij mózg w roztworze B1, uzyskując następnie małe kawałki o wielkości około 2 mm.
  2. Homogenizuj preparat za pomocą automatycznego homogenizatora Dounce, wykonując 20 uderzeń przy 400 obr./min. Upewnij się, że szklana rurka jest utrzymywana w lodzie i że górna część leżaczka jest w roztworze podczas poruszania się w górę iw dół, aby zapobiec tworzeniu się kieszeni powietrznych. Jeśli przygotowanych jest kilka próbek, umyj leżaczek wodą jonizowaną między każdą homogenizacją.

3. Oczyszczanie naczynia

  1. Przenieść homogenat do plastikowej probówki o pojemności 50 ml i przystąpić do wirowania przy 2 000 x g przez 10 minut w temperaturze 4 °C. Na górze osadu naczynia utworzy się duży biały interfejs (głównie mielina) (czerwony, jeśli nie przeprowadzono perfuzji).
  2. Odrzucić supernatant. Osad naczynia i biały interfejs pozostaną ze sobą połączone. Dodaj 20 ml lodowatego roztworu witaminy B2 i potrząsaj probówką ręcznie i energicznie przez 1 minutę.
  3. Przejść do drugiego wirowania przy 4 400 x g przez 15 minut w temperaturze 4 °C. Mielina utworzy teraz gęstą białą warstwę na powierzchni supernatantu.
  4. Ostrożnie oderwij warstwę mieliny od ścianek rurki, przytrzymując rurkę i powoli ją obracając, aby supernatant mógł przejść wzdłuż ścianek. Odrzucić mielinę z supernatantem. Osad zawierający naczynia pozostaje przymocowany na dnie tuby.
  5. Osusz wewnętrzną ściankę probówki chłonnym papierem owiniętym wokół plastikowej pipety o pojemności 5 ml i usuń wszystkie pozostałe płyny, unikając dotykania osadu w naczyniu. Trzymaj probówkę do góry nogami na chłonnym papierze, aby spuścić pozostały płyn.
  6. Zawiesić osad w 1 ml lodowatego roztworu witaminy B3, pipetując w górę i w dół za pomocą końcówek o niskim stopniu wiązania, utrzymując probówkę na lodzie, a następnie dodać kolejne 5 ml roztworu witaminy B3. Upewnij się, że naczynia są jak najbardziej rozproszone i nie tworzą agregatów.

4. Filtracja

  1. Przygotować zlewkę na lodzie z 30 ml lodowatego roztworu witaminy B3. Przykryj parafilmem, aby uniknąć zanieczyszczenia powietrza.
  2. Umieścić filtr o siatkowej siatce 20 μm na zmodyfikowanym uchwycie filtra na górze kolby Beckera i zrównoważyć, nakładając 10 ml lodowatego roztworu B3
  3. .
  4. Wylej preparat naczyniowy na filtr i przepłucz naczynia 40 ml lodowatego roztworu B3.
  5. Odzyskać filtr za pomocą czystych kleszczyków i natychmiast zanurzyć go w zlewce zawierającej roztwór B3. Odłącz naczynia od filtra, delikatnie nim potrząsając.
  6. Wlać zawartość zlewki do plastikowej probówki o pojemności 50 ml i odwirować przy 2 000 x g przez 5 minut w temperaturze 4°C.
    nuta: Alternatywnie, zawiesinę naczyń mózgowych z kroku 3.6 można przefiltrować do filtra o siatce 100 μm. W tym przypadku większe naczynia są preferencyjnie zatrzymywane na filtrze, podczas gdy przepływowy zawiera mikronaczynia (głównie kapilary), które są następnie filtrowane na filtrze o siatce 20 μm, jak powyżej.
  7. Zawiesić osad z mikronaczyń w 1 ml lodowatego roztworu B3 i przenieść go pipetując do 1,5 ml probówki Eppendorfa. Wirować przy 2 000 x g przez 5 minut w temperaturze 4 °C.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Młynek do tkanek rozmiar C Thomas naukowy 3431E25
Wirówka 5415 R Eppendorf
Wirówka 5810 R Eppendorf 5811000320
Wysokowydajny, modułowy mikroskop stereoskopowyLeica MZ6
Końcówki o niskim wiązaniu (P1000) Sorenson BioScience 14200T
Uchwyt filtra Swinnex 47 mm PP 8/PkMilipory SX0004700
Tarcza filtracyjna z siatki nylonowej hydrofilowa 20 μm 47 mm 100/PkMilipory NY2004700
Tarcza filtracyjna z siatki nylonowej hydrofilowa 100 μm 47 mm 100/PkMilipory NY1H04700
PARAFILM M (rozmiar rolki 4 cale × 125 stóp)SigmaZobacz materiał P7793-1EA
HBSS, bez wapnia, bez magnezu, bez czerwieni fenolowejTechnologia życiowaNr kat. 14175-129
HEPESY (1M) Technologia życiowa15630056
Dekstran z Leuconostoc spp. Pan ~70 000Sigma Numer katalogowy: 31390
Albumina surowicy bydlęcej Sigma Certyfikat A2153
10 kanałów PBSTargi EuromedexET330

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Vessel IsolationBrain Tissue HomogenizationDensity Gradient CentrifugationMyelin RemovalNylon Mesh FiltrationBlood Brain BarrierEndothelial CellsPericytes AstrocytesChoroid Plexus Dissection

Powiązane artykuły