Method Article

Stymulacja plasterków mózgu za pomocą sieci mikroprzepływowej i standardowej komory perfuzyjnej

DOI:

10.3791/302

October 1st, 2007

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pokazujemy produkcję prostego urządzenia mikroprzepływowego, które można zintegrować ze standardowymi ustawieniami elektrofizjologii, aby w dobrze kontrolowany sposób wystawić powierzchnie mikroskalowe wycinka mózgu na działanie różnych neuroprzekaźników.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pokazaliśmy produkcję dwupoziomowego urządzenia mikroprzepływowego, które można łatwo zintegrować z istniejącymi ustawieniami elektrofizjologii. Dwupoziomowe urządzenie mikroprzepływowe jest wytwarzane przy użyciu dwuetapowego standardowego procesu litografii o ujemnym rezyście 1. Pierwszy poziom zawiera mikrokanaliki z portami wlotowymi i wylotowymi na każdym końcu. Drugi poziom zawiera okrągłe otwory w mikroskali znajdujące się w połowie długości kanału i wyśrodkowane wraz z szerokością kanału. Metoda pompowania pasywnego służy do pompowania płynów z portu wlotowego do portu wylotowego 2. Urządzenie mikroprzepływowe jest zintegrowane z gotowymi komorami perfuzyjnymi i umożliwia bezproblemową integrację z układem elektrofizjologicznym. Płyny wprowadzone do portów wlotowych przepływają przez mikrokanaliki w kierunku portów wylotowych, a także wydostają się przez okrągłe otwory znajdujące się na górze mikrokanalików do kąpieli perfuzyjnej. W ten sposób dolna powierzchnia wycinka mózgu umieszczonego w kąpieli w komorze perfuzyjnej i nad urządzeniem mikroprzepływowym może być narażona na działanie różnych neuroprzekaźników. Grubość urządzenia mikroprzepływowego w mikroskali i przezroczystość materiałów [szklane szkiełko nakrywkowe i PDMS (polidimetylosiloksan)] użytych do wykonania urządzenia mikroprzepływowego umożliwiają mikroskopię wycinka mózgu. Urządzenie mikroprzepływowe umożliwia modulację (zarówno przestrzenną, jak i czasową) bodźców chemicznych wprowadzanych do mikrośrodowisk wycinków mózgu.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Produkcja form SU-8

Przygotowanie do mistrzostwa

  1. Wzorzec SU-8 na podłożu z płytki krzemowej jest przygotowywany przy użyciu dwuetapowego standardowego procesu litografii o ujemnym oporze.
  2. Ślady wyrównania na płytce krzemowej są usuwane za pomocą żyletki, ponieważ wysokość tych struktur (znajdujących się wzdłuż zewnętrznego obwodu płytki) jest większa niż rzeczywiste struktury urządzenia.
  3. Wafel krzemowy jest następnie czyszczony za pomocą alkoholu izopropylowego i suszony w strumieniuN2. Słupki nośne wykonane z taśmy o grubości mniejszej niż najwyższa konstrukcja urządzenia zastępują znaczniki wyrównania....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Istniejące komory perfuzyjne w skali makro lub mikro są ograniczone pod względem rozdzielczości przestrzennej, jaką zapewniają w celu naświetlenia wycinków mózgu neuroprzekaźnikami. Zademonstrowana tutaj technologia urządzeń mikroprzepływowych pozwala przezwyciężyć to ograniczenie za pomocą prostych technik bioMEMS. Przewiduje się, że prostota wykonania urządzenia mikroprzepływowego i łatwość jego integracji z istniejącymi układami elektrofizjologicznymi pozwoli na szerokie zastosowanie zademonstrowanej technologii urząd.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy są otwarci na współpracę obejmującą zademonstrowaną technologię mikroprzepływową z różnymi dziedzinami biologii.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Finansowanie zostało zapewnione przez NIH MH-64611 i NARSAD Young Investigator Award. Autorzy pragną również podziękować Adamowi Beagleyowi, Markowi Dikopfowi i Benowi Smithowi za ich pomoc techniczną.

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
RC-26GPLToolWarner InstrumentsW2-64-0236Niskoprofilowa duża wanna RC-26GLP Komora nagrywająca
SHD-26GH/10ToolWarner InstrumentsW2-64-0253Docisk ze stali nierdzewnej do RC-26G, rozstaw gwintów 1,0 mm
Odczynnik PDMS (polidimetylosiloksan)Dow CorningSylgard 184Zestaw elastomerów silikonowych
Plazma Preen-II 862ToolPlasmatic Systems, Inc.Mikrofalowy system plazmowy
Model P-1ToolWarner InstrumentsW2-64-0277Seria 20 Zwykła platforma, Model P-1
SA-NIKToolWarner InstrumentsW2-64-0291Adapter do Nikon Diaphot/TE200/TE2000, SA-NIK
Natleniony, podgrzewany ACSF (Sztuczny płyn mózgowo-rdzeniowy)OdczynnikDokładny skład będzie się różnić w zależności od zastosowania

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Blake, A. J., Pearce, T. M., Rao, N. S., Johnson, S. M., Williams, J. C. Multilayer PDMS microfluidic chamber for controlling brain slice microenvironment. Lab on a Chip. 7, 842-849 (2007).
  2. Walker, G. M., Beebe, D. J. A passive pumping method for microfluidic devices. Lab on a....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Microfluidic DeviceBrain Slice StimulationPassive Pumping MethodPDMS MembranePerfusion Chamber IntegrationPlasma Treatment ProcessVia Openings FormationSpatial Temporal ControlElectrophysiology SetupFluorescent Dye Visualization

Related Articles